ОЦЕНКА ПРОАПОПТОТИЧЕСКОЙ АКТИВНОСТИ ЛИПОПОЛИСАХАРИДА В ИЗОЛИРОВАННЫХ СУБПОПУЛЯЦИЯХ Т-ЛИМФОЦИТОВ ЧЕЛОВЕКА
- Авторы: Филатова Е.Н.1, Анисенкова Е.В.2, Преснякова Н.Б.2, Неумоина Н.В.2, Сычева Т.Д.3, Уткин О.В.3
-
Учреждения:
- ФБУН Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. акад. И.Н. Блохиной Роспотребнадзора, г. Нижний Новгород, Россия 603950, Россия, г. Нижний Новгород, ул. Малая Ямская, 71, ГОУ ВПО НижГМА МЗ РФ. Тел.: 8 (831) 469-79-46, 8 (906) 368-37-22. Факс: 8 (831) 469-79-20
- ФБУН Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. акад. И.Н. Блохиной Роспотребнадзора, г. Нижний Новгород, Россия
- ГБОУ ВПО Нижегородская государственная медицинская академия МЗ РФ, г. Нижний Новгород, Россия
- Выпуск: Том 4, № 4 (2014)
- Страницы: 347-352
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ
- Дата подачи: 03.02.2015
- Дата принятия к публикации: 03.02.2015
- Дата публикации: 03.12.2014
- URL: https://iimmun.ru/iimm/article/view/245
- DOI: https://doi.org/10.15789/2220-7619-2014-4-347-352
- ID: 245
Цитировать
Полный текст
Аннотация
При in vitro моделировании инфекционных процессов липополисахарид (ЛПС) применяется как активатор и индуктор апоптоза иммунокомпетентных клеток. На данный момент неясно, является ли ЛПС прямым индуктором апоптоза в Т-клетках человека. Субпопуляции эффекторных и наивных CD4+ Т-хелперов и СD8+ цитотоксических Т-лимфоцитов периферической крови человека были изолированы и культивировались раздельно в присутствии ЛПС. Показано, что ЛПС не является индуктором апоптоза в изученных субпопуляциях Т-клеток.
Ключевые слова
Об авторах
Е. Н. Филатова
ФБУН Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. акад. И.Н. Блохиной Роспотребнадзора, г. Нижний Новгород, Россия 603950, Россия, г. Нижний Новгород, ул. Малая Ямская, 71, ГОУ ВПО НижГМА МЗ РФ. Тел.: 8 (831) 469-79-46, 8 (906) 368-37-22. Факс: 8 (831) 469-79-20
Автор, ответственный за переписку.
Email: el.filatova83@gmail.com
к.б.н., ведущий научный сотрудник лаборатории молекулярной биологии и биотехнологии ФБУН НИИ эпидемиологии и микробиологии им. акад. И.Н. Блохиной Роспотребнадзора, г. Нижний Новгород, Россия
РоссияЕ. В. Анисенкова
ФБУН Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. акад. И.Н. Блохиной Роспотребнадзора, г. Нижний Новгород, Россия
Email: fake@neicon.ru
младший научный сотрудник лаборатории молекулярной биологии и биотехнологии ФБУН НИИ эпидемиологии и микробиологии им. акад. И.Н. Блохиной Роспотребнадзора, г. Нижний Новгород, Россия
РоссияН. Б. Преснякова
ФБУН Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. акад. И.Н. Блохиной Роспотребнадзора, г. Нижний Новгород, Россия
Email: fake@neicon.ru
научный сотрудник лаборатории молекулярной биологии и биотехнологии ФБУН НИИ эпидемиологии и микробиологии им. акад. И.Н. Блохиной Роспотребнадзора, г. Нижний Новгород, Россия
РоссияН. В. Неумоина
ФБУН Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. акад. И.Н. Блохиной Роспотребнадзора, г. Нижний Новгород, Россия
Email: fake@neicon.ru
к.м.н., главный врач клиники инфекционных болезней ФБУН НИИ эпидемиологии и микробиологии им. акад. И.Н. Блохиной Роспотребнадзора, г. Нижний Новгород, Россия
РоссияТ. Д. Сычева
ГБОУ ВПО Нижегородская государственная медицинская академия МЗ РФ, г. Нижний Новгород, Россия
Email: fake@neicon.ru
ординатор кафедры детских болезней ГБОУ ВПО Нижегородская государственная медицинская академия МЗ РФ, г. Нижний Новгород, Россия
РоссияО. В. Уткин
ГБОУ ВПО Нижегородская государственная медицинская академия МЗ РФ, г. Нижний Новгород, Россия
Email: fake@neicon.ru
к.б.н., зав. лабораторией молекулярной биологии и биотехнологии ФБУН НИИ эпидемиологии и микробиологии им. акад. И.Н. Блохиной Роспотребнадзора, доцент кафедры микробиологии и иммунологии ГБОУ ВПО Нижегородская государственная медицинская академия МЗ РФ, г. Нижний Новгород, Россия
РоссияСписок литературы
- Akashi S., Shimazu R., Ogata H., Nagai Y., Takeda K., Kimoto M., Miyake K. Cutting edge: cell surface e 1. xpression and lipopolysaccharide signaling via the Toll-like receptor 4-MD-2 complex on mouse peritoneal macrophages. J. Immunol., 2000, vol. 164, no. 7, pp. 3471–3475.
- Beutler B. TLR4: central component of the sole mammalian LPS sensor. Curr. Opin. Immunol., 2000, vol. 12, no. 3, pp. 20–26.
- Caramalho I., Lopes-Carvalho T., Ostler D., Zelenay S., Haury M., Demengeot J. Regulatory T cells selectively express Toll-like receptors and are activated by lipopolysaccharide. J. Exp. Med., 2003, vol. 197, no. 4, pp. 403–411.
- Crellin N.K., Garcia R.V., Hadisfar O., Allan S.E., Steiner T.S., Levings M.K. Human CD4+ T cells express TLR5 and its ligand flagellin enhances the suppressive capacity and expression of FOXP3 in CD4+CD25+ T regulatory cells. J. Immunol., 2005, vol. 175, no. 12, pp. 8051–8059.
- Da Silva C.J., Soldau K., Christen U., Tobias P.S., Ulevitch R.J. Lipopolysaccharide is in close proximity to each of the proteins in its membrane receptor complex transfer from CD14 to TLR4 and MD-2. J. Biol. Chem., 2001, vol. 276, no. 24, pp. 21129–21135.
- Gelman A.E., Zhang J., Choi Y., Turka L.A. Toll-like receptor ligands directly promote activated CD4+T cell survival. J. Immunol., 2004, vol. 172, no. 10, pp. 6065–6073.
- Gonzalez-Navaias J.M., Fine S., Law J., Data S.K., Nguyen K.P., Yu M., Corr M., Katakura K., Eckman L., Lee J., Raz E. TLR4 signaling in effector CD4+ T cells regulates TCR activation and experimental colitis in mice. J. Clin. Invest., 2010, vol. 120, no. 2, pp. 570–581.
- Gupta S., Gollapudi S. Susceptibility of naive and subsets of memory T cells to apoptosis via multiple signaling pathways. Autoimmune Rev., 2007, vol. 6, no. 7, pp. 476–481.
- Hornung V., Rothenfusser S., Britsch S., Krug A., Jahrsdorfer B., Giese T., Endres S., Hartman G. Quantitative expression of tolllike receptor 1–10 mRNA in cellular subsets of human peripheral blood mononuclear cells and sensitivity to CpG oligodeoxynucleotides. J. Immunol., 2002, vol. 168, no. 9, pp. 4531–4537.
- Kaisho T., Akira S. Dendritic-cell function in toll-like receptor- and MyD88-knockout mice. Trends Immunol., 2001, vol. 22, no. 2, pp. 78–83.
- Komai-Koma M., Jones L., Ogg G.S., Xu D., Liew F.Y. TLR2 is expressed on activated T cells as a costimulatory receptor. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2004, vol. 101, no. 9, pp. 3029–3034.
- Komai-Koma M., Gilchrist D.S., Xu D. Direct recognition of LPS by human but not murine CD8+ T cells via TLR4 complex. Eur. J. Immunol., 2009, vol. 39, no. 6, pp. 1564–1572.
- Liew F.Y., Xu D., Brint E.K., O’Neill L.A. Negative regulation of toll-like receptor-mediated immune responses. Nat. Rev. Immunol., 2005, vol. 5, pp. 446–458.
- Mburu S., Marnewick J.L., Abayomi A., Ipp H. Modulation of LPS-induced CD4+ T-cell activation and apoptosis by antioxidants in untreated asymptomatic HIV infected participants: an in vitro study. Clin. Dev. Immunol., 2013, vol. 2013, 9 p. Available at: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3856122.
- Medzhitov R., Preston-Hurlburt P., Janeway С.А. Jr. A human homologue of the Drosophila Toll protein signals activation of adaptive immunity. Nature, 1997, vol. 388, no. 6640, pp. 394–397.
- Muzio M., Polentarutti N., Bosisio D., Prahladan M.K., Mantovani A. Toll-like receptor family (TLT) and signaling pathway. Eur. Cytokine Netw., 2000, vol. 11, no. 3, pp. 489–490.
- Nielsen J.S., Larsson A., Brix-Christensen V., Nvengaard J.R., Ledet T., Tonnesen E. Endotoxemia-induced lymphocyte apoptosis is augmented by a hyperinsulinemic-euglycemic clamp. J. Anesthesiology, 2005, vol. 102, no. 4, pp. 768–773.
- Nielsen J.S., Larsson A., Ledet T., Turina M., Tonnesen E., Krog J. Rough-form lipopolysaccharide increases apoptosis in human CD4+ and CD8+ T lymphocytes. Scand. J. Immunol., 2011, vol. 75, pp. 193–202.
- Perl M., Chung C.S., Swan R., Ayala A. Role of programmed cell death in the immunopathogenesis of sepsis. Drug. Discov. Today Dis. Mech., 2007, vol. 4, no. 4, pp. 223–320.
- Raetz C.R. Biochemistry of endotoxins. Annu. Rev. Biochem., 1990, vol. 59, pp. 129–170.
- Schromm A.B., Lien E., Henneke P., Chow J.C., Yoshimura A., Heine H., Latz E., Monks B.G., Schwartz D.A., Miyake K., Golenbock D.T. Molecular genetic analysis of an endotoxin nonresponder mutant cell line: a point mutation in a conserved region of MD-2 abolishes endotoxin-induced signaling. J. Exp. Med., 2001, vol. 194, no. 1, pp. 79–88.
- Sutmuller R.P., den Brok M.H., Kramer M., Bennink E.J., Toonen L.W., Kullberg B.J., Joosten L.A., Akira S., Netea M.G., Adema G.J. Toll-like receptor 2 controls expansion and function of regulatory T cells. J. Clin. Invest., 2006, vol. 116, no. 2, pp. 485–494.
- Takeda K., Kaisho T., Akira S. Toll-like receptors. Annu. Rev. Immunol., 2003, vol. 21, pp. 335–376.
- Tian J., Zekzer D., Hanssen L., lu Y., Olcott A., Kaufman D.L. Lipopolysaccharide-activated B cells down-regulate Th1 immunity and prevent autoimmune diabetes in nonobese diabetic mice. J. Immunol., 2001, vol. 167, no. 2, pp. 1081–1089.
- Ulevitch R.J., Tobias P.S. Receptor-dependent mechanisms of cell stimulation by bacterial endotoxin. Annu. Rev. Immunol., 1995, vol. 13, pp. 437–457.
- Zarember K.A., Godowski P.J. Tissue expression of human Toll-like receptors and differential regulation of Toll-like receptor mRNAs in leukocytes in response to microbes, their products, and cytokines. J. Immunol., 2002, vol. 168, no. 2, pp. 554–561.