ЛИКВОР-СЫВОРОТОЧНЫЕ ИНДЕКСЫ: СОВРЕМЕННЫЙ ПОДХОД К ОЦЕНКЕ ИНТРАТЕКАЛЬНОГО ВОСПАЛЕНИЯ



Цитировать

Полный текст

Аннотация

Резюме

Ликвор-сывороточные индексы - отношение одноименных белковых концентрации между спинномозговой жидкостью и сывороткой крови - метод, дающий объективную оценку количества и происхождения белка в ликворе. Белковый состав ликвора включает протеины, прошедшие из крови через гемато-энцефалический барьер, и синтезированные в пределах центральной нервной системы — интратекально. Выявление в цереброспинальной жидкости повышенных значений белков, таких как специфические антитела к инфекционным возбудителям или аутоантител, не всегда соответствует их интратекальному происхождению и/или наличию патологического процесса в интратекальном пространстве. Зачастую высокие концентрации белка в ликворе обусловлены его повышенным притоком из крови. Определить источник белка: интратекальный или гематогенный — можно при помощи ликвор-сывороточных индексов, рассчитанных по методу, разработанному немецким ликворологом Hansotto Reiber. Этот метод признан актуальным для разграничения гематогенных и интратекальных фракций белков немецким обществом ликвородиагностики и нейрохимии (Deutsche Gesellschaft für Liquordiagnostik und Klinische Neurochemie e.V.). В настоящем литературном обзоре, подготовленном на основании анализа  научной литературы, представленной в основных базах данных (PubMed, CyberLeninka, Google Scholar,  Scopus) с использованием последних зарубежных изданий по ликвородиагностике, описана методика расчёта ликвор-сывороточных индексов для общих классов иммуноглобулинов, антительных индексов для специфических антител, рассмотрена структура Райберграмм (диаграмм зависимости альбуминового индекса Qalb от ликвор-сывороточного индекса общих иммуноглобулинов). В статье приведены классификация интратекального воспаления, описаны характерные паттерны интратекального синтеза иммуноглобулинов для различных заболеваний центральной и периферической нервной системы. Таким образом, настоящий обзор литературы позволяет детально погрузиться в общие принципы современного подхода к оценке белкового состава спинномозговой жидкости и улучшить понимание интратекального гуморального ответа. Дополнительно в статье резюмированы данные последних исследований, посвященных особенностям интратекального иммунного ответа при рассеянном склерозе, заболеваниях спектра нейрооптикомиелита и энцефалитах, ассоциированных с анти-MOG, анти-NMDAR антителами, ревматологических заболеваниях с поражением ЦНС и нейроинфекциях.

Об авторах

Александра Михайловна Демкина

ИМД ФГАОУ ВО "Российский Национальный Исследовательский Медицинский Университет им. Н.И. Пирогова" Министерства здравоохранения Российской Федерации

Автор, ответственный за переписку.
Email: sasha.deomkina@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-2137-2749
SPIN-код: 4685-9220
Scopus Author ID: 58638733900

ассистент кафедры инфекционных болезней у детей ИМД 

Россия, 117513, Россия, Москва, ул. Островитянова, 1.

Руслан Фаридович Сайфуллин

ИМД ФГАОУ ВО "Российский Национальный Исследовательский Медицинский Университет им. Н.И. Пирогова" Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: ppsaifullin@rambler.ru
ORCID iD: 0000-0003-0191-3728
SPIN-код: 9701-3600
Scopus Author ID: 57216796584

кандидат медицинских наук, доцент кафедры инфекционных болезней у детей ИМД  

 

Россия, 117513, Россия, Москва, ул. Островитянова, 1.

Армен Каренович Шакарян

ИМД ФГАОУ ВО "Российский Национальный Исследовательский Медицинский Университет им. Н.И. Пирогова" Министерства здравоохранения Российской Федерации;
ФГАНУ "ФНЦИРИП им. М.П.Чумакова РАН" (Институт полиомиелита)

Email: armen2@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-3417-3631
SPIN-код: 9069-2474
Scopus Author ID: 55697513300

научный сотрудник клинического отдела; ассистент кафедры инфекционных болезней у детей ИМД 

Россия, 108819, Россия, Москва, поселение Московский, посёлок Института полиомиелита, домовладение 8, корп. 1; 117513, Россия, Москва, ул. Островитянова, 1.

Ольга Васильевна Шамшева

ИМД ФГАОУ ВО "Российский Национальный Исследовательский Медицинский Университет им. Н.И. Пирогова" Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: ch-infection@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-6033-6695
Scopus Author ID: 6507525958

доктор медицинских наук, профессор, заведующий кафедрой инфекционных болезней у детей ИМД 

Россия, 117513, Россия, Москва, ул. Островитянова, 1.

Список литературы

  1. Зверева Н. Н., Шакарян А.К., Сайфуллин Р.Ф., Россина А.Л., Ртищев А.Ю., Белялетдинова И.Х.
  2. Современное состояние проблемы иксодового клещевого боррелиоза (болезни Лайма) у детей. Детские инфекции, 2017, vol. 16, no. 1, pp. 27-31. Zvereva N.N., Shakaryan A.K., Sayfullin R.F., Rossina A.L., Rtishchev A.Yu., Belyaletdinovа I.Kh. Current State of Tick-borne Borreliosis (Lyme Disease) in Children. Detskie Infektsii=Children's Infections., 2017, vol. 16, no. 1, pp. 27-31 https://detinf.elpub.ru/jour/article/view/274
  3. [doi.org/10.22627/2072-8107-2017-16-1-27-31]
  4. Мошникова А.Н., Максимчук В.К., Лапин С.В., Назаров В.Д., Суркова Е.А., Новиков С.А., Макшаков Г.С., Крутецкая И.Ю., Краснов В.С., Кушнир Я.Б., Неофидов Н.А., Тотолян Н.А., Скоромец А.А., Евдошенко Е.П., Тотолян Арег А. Диагностическая значимость интратекального синтеза иммуноглобулинов против нейротропных вирусов (MRZ-реакция) в диагностике рассеянного склероза // Инфекция и иммунитет. 2019. Т. 9, No 5–6. С. 703–712. Moshnikova A.N., Maksimchuk V.K., Lapin S.V., Nazarov V.D., Surkova E.A., Novikov S.A., Makshakov G.S., Krutetskaya I.Yu., Krasnov V.S., Kushnir Ya.B., Neofidov N.A., Totolian N.A., Skoromets A.A., Evdoshenko E.P., Totolian Areg A. Diagnostic significance of intrathecally synthesized immunoglobulins against neurotropic viruses (MRZ-reaction) in diagnosis of multiple sclerosis // Russian Journal of Infection and Immunity = Infektsiya i immunitet, 2019, vol. 9, no. 5–6, pp. 703–712. https://iimmun.ru/iimm/article/view/754 [doi: 10.15789/2220-7619- 2019-5-6-703-712]
  5. Пономарева М.В., Левчик Н.К., Зильберберг Н.В.
  6. Неспецифический интратекальный синтез иммуноглобулинов у пациентов с cифилитической инфекцией // Инфекция и иммунитет. 2023. Т. 13, No 2. C. 309–318. Ponomareva M.V., Levchik N.K., Zilberberg N.V. Intrathecal nonspecific immunoglobulin synthesis in syphilitic infection // Russian Journal of Infection and Immunity = Infektsiya i immunitet, 2023, vol. 13, no. 2, pp. 309–318. https://iimmun.ru/iimm/article/view/2032 [doi: 10.15789/2220-7619-INI-2032]
  7. Alberto C., Deffert C., Lambeng N., Breville G., Gayet-Ageron A., Lalive P., Toutous Trellu L., Fontao, L. Intrathecal Synthesis Index of Specific Anti-Treponema IgG: a New Tool for the Diagnosis of Neurosyphilis. Microbiol Spectr., 2022, vol. 10, no. 1:e0147721. - https://journals.asm.org/doi/10.1128/spectrum.01477-21?url_ver=Z39.88-2003&rfr_id=ori:rid:crossref.org&rfr_dat=cr_pub 0pubmed [doi: 10.1128/spectrum.01477-21.]
  8. Armangue T., Capobianco M., de Chalus A., Laetitia G., Deiva K.; E.U. paediatric MOG consortium. E.U. paediatric MOG consortium consensus: Part 3 - Biomarkers of paediatric myelin oligodendrocyte glycoprotein antibody-associated disorders. Eur J Paediatr Neurol., 2020, vol. 29, pp. 22-31. - https://www.ejpn-journal.com/article/S1090-3798(20)30205-1/abstract [doi: 10.1016/j.ejpn.2020.11.001]
  9. Auer M., Hegen H., Zeileis A., Deisenhammer F. Quantitation of intrathecal immunoglobulin synthesis - a new empirical formula. Eur J Neurol., 2016, vol. 23, no. 4, pp. 713-721. - https://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/ene.12924 [doi: 10.1111/ene.12924]
  10. Banwell B., Bennett J.L., Marignier R., Kim H.J., Brilot F., Flanagan E.P., Ramanathan S., Waters P., Tenembaum S., Graves J.S., Chitnis T., Brandt A.U., Hemingway C., Neuteboom R., Pandit L., Reindl M., Saiz A., Sato D.K., Rostasy K., Paul F., Pittock S.J., Fujihara K., Palace J. Diagnosis of myelin oligodendrocyte glycoprotein antibody-associated disease: International MOGAD Panel proposed criteria. Lancet Neurol., 2023, vol. 22, no. 3, pp. 268-282. - https://www.thelancet.com/journals/laneur/article/PIIS1474-4422(22)00431-8/abstract [doi: 10.1016/S1474-4422(22)00431-8]
  11. Bertram D., Tsaktanis T., Berthele A., Korn T. The role of intrathecal free light chains kappa for the detection of autoimmune encephalitis in subacute onset neuropsychiatric syndromes. Sci Rep., 2023, vol. 13, no. 1:17224. - https://www.nature.com/articles/s41598-023-44427-6 [doi: 10.1038/s41598-023-44427-6]
  12. Castellazzi M., Candeloro R., Pugliatti M., Govoni M., Silvagni E., Bortoluzzi A. Cerebrospinal Fluid Analysis in Rheumatological Diseases with Neuropsychiatric Complications and Manifestations: A Narrative Review. Diagnostics (Basel)., 2024, vol. 14, no. 3:242. - https://www.mdpi.com/2075-4418/14/3/242 [doi: 10.3390/diagnostics14030242]
  13. Czarniak N., Kamińska J., Matowicka-Karna J., & Koper-Lenkiewicz O. M. Cerebrospinal Fluid-Basic Concepts Review. Biomedicines., 2023, vol. 11 no. 5:1461. - https://www.mdpi.com/2227-9059/11/5/1461 [doi: 10.3390/biomedicines11051461]
  14. Deisenhammer F., Bartos A., Egg R., Gilhus N.E., Giovannoni G., Rauer S., Sellebjerg F., & EFNS Task Force. Guidelines on routine cerebrospinal fluid analysis. Report from an EFNS task force. Eur J Neurol., 2006, vol. 13, no. 9, pp. 913-922. - https://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/j.1468-1331.2006.01493.x [doi: 10.1111/j.1468-1331.2006.01493.x]
  15. Dorta Contreras A.J. Intrathecal synthesis of immunoglobulins in Neisseria meningitidis and echovirus 6 meningoencephalitis. J Mol Neurosci., 1999, vol. 12, no. 2, pp. 81-87. - https://link.springer.com/article/10.1007/BF02736922 [doi: 10.1007/BF02736922]
  16. Dorta-Contreras A.J, Agüero-Valdés E., Escobar-Pérez X., Noris-García E., Ferrá-Valdés M. Respuesta inmune humoral intratecal en pacientes pediátricos con meningoencefalitis por Coxsackie B5. Rev Neurol, 1999, vol. 28, no. 8, pp. 739-741. Dorta-Contreras A.J, Agüero-Valdés E., Escobar-Pérez X., Noris-García E., Ferrá-Valdés M.
  17. Intrathecal humoral immune response in pediatric patients with meningoencephalitis due to Coxsackie B5. Rev Neurol, 1999, vol. 28, no. 8, pp. 739-741. https://www.imrpress.com/journal/RN/28/8/10.33588/rn.2808.99020 [https://doi.org/10.33588/rn.2808.99020]
  18. Dorta-Contreras A., Mieté F. A. Dysfunction of the blood-cerebrospinal fluid barrier in bacterial meningitis. Journal of tropical pediatrics, 1996, vol. 42, no. 6, pp. 372-373. - https://academic.oup.com/tropej/article-abstract/42/6/372/1679305?redirectedFrom=fulltext&login=false [doi: 10.1093/tropej/42.6.372]
  19. Feki S., Gargouri S., Mejdoub S., Dammak M., Hachicha H., Hadiji O., Feki L., Hammami A., Mhiri C., Karray H., Masmoudi H. The intrathecal polyspecific antiviral immune response (MRZ reaction): A potential cerebrospinal fluid marker for multiple sclerosis diagnosis. J Neuroimmunol., 2018, vol. 321, pp.66-71. - https://www.jni-journal.com/article/S0165-5728(18)30068-7/abstract [doi: 10.1016/j.jneuroim.2018.05.015]
  20. Felgenhauer K., Reiber H. The diagnostic significance of antibody specificity indices in multiple sclerosis and herpes virus induced diseases of the nervous system. Clin Investig., 1992, vol. 70, no. 1, pp. 28-37. - doi: 10.1007/BF00422934
  21. Hottenrott T., Dersch R., Berger B., Rauer S., Eckenweiler M., Huzly D., Stich, O. The intrathecal, polyspecific antiviral immune response in neurosarcoidosis, acute disseminated encephalomyelitis and autoimmune encephalitis compared to multiple sclerosis in a tertiary hospital cohort. Fluids Barriers CNS., 2015, vol. 12, no. 27. - https://fluidsbarrierscns.biomedcentral.com/articles/10.1186/s12987-015-0024-8 [doi: 10.1186/s12987-015-0024-8]
  22. Hümmert M.W., Jendretzky K.F., Fricke K., Gingele M., Ratuszny D., Möhn N., Trebst C., Skripuletz T., Gingele S., Sühs K.W. The relevance of NMDA receptor antibody-specific index for diagnosis and prognosis in patients with anti-NMDA receptor encephalitis. Sci Rep., 2023, vol. 13, no. 1:12696. - https://www.nature.com/articles/s41598-023-38462-6 [doi: 10.1038/s41598-023-38462-6]
  23. Jarius S., Aktas O., Ayzenberg I., Bellmann-Strobl J., Berthele A., Giglhuber K., Häußler V., Havla J., Hellwig K., Hümmert M.W., Kleiter I., Klotz L., Krumbholz M., Kümpfel T., Paul F., Ringelstein M., Ruprecht K., Senel M., Stellmann J.P., Bergh F.T., Tumani H., Wildemann B., Trebst C.; Neuromyelitis Optica Study Group (NEMOS). Update on the diagnosis and treatment of neuromyelits optica spectrum disorders (NMOSD) - revised recommendations of the Neuromyelitis Optica Study Group (NEMOS). Part I: Diagnosis and differential diagnosis. J Neurol., 2023, vol. 270, no. 7, pp. 3341-3368. - https://link.springer.com/article/10.1007/s00415-023-11634-0 [doi: 10.1007/s00415-023-11634-0]
  24. Jarius S., Eichhorn P., Franciotta D., Petereit H. F., Akman-Demir G., Wick M., Wildemann, B. The MRZ reaction as a highly specific marker of multiple sclerosis: re-evaluation and structured review of the literature. J Neurol., 2017, vol. 264, no. 3, pp. 453-466. - https://link.springer.com/article/10.1007/s00415-016-8360-4 [doi: 10.1007/s00415-016-8360-4]
  25. Jarius S., Franciotta D., Bergamaschi R., Rauer S., Wandinger K.P., Petereit H.F., Maurer M., Tumani H., Vincent A., Eichhorn P., Wildemann B., Wick M., Voltz R. Polyspecific, antiviral immune response distinguishes multiple sclerosis and neuromyelitis optica. J Neurol Neurosurg Psychiatry., 2008, vol. 79, no. 10, pp. 1134-1136. - https://jnnp.bmj.com/content/79/10/1134.long [doi: 10.1136/jnnp.2007.133330]
  26. Jarius S., Lechner C., Wendel E.M., Baumann M., Breu M., Schimmel M., Karenfort M., Marina A.D., Merkenschlager A., Thiels C., Blaschek A., Salandin M., Leiz S., Leypoldt F., Pschibul A., Hackenberg A., Hahn A., Syrbe S., Strautmanis J., Häusler M., Krieg P., Eisenkölbl A., Stoffels J., Eckenweiler M., Ayzenberg I., Haas J., Höftberger R., Kleiter I., Korporal-Kuhnke M., Ringelstein M., Ruprecht K., Siebert N., Schanda K., Aktas O., Paul F., Reindl M., Wildemann B., Rostásy K; in cooperation with the BIOMARKER study group and the Neuromyelitis optica Study Group (NEMOS). Cerebrospinal fluid findings in patients with myelin oligodendrocyte glycoprotein (MOG) antibodies. Part 2: Results from 108 lumbar punctures in 80 pediatric patients. J Neuroinflammation., 2020, vol. 17, no. 1:262. - https://jneuroinflammation.biomedcentral.com/articles/10.1186/s12974-020-01825-1 [doi: 10.1186/s12974-020-01825-1]
  27. Jarius S., Paul F., Franciotta D., Ruprecht K., Ringelstein M., Bergamaschi R., Rommer P., Kleiter I., Stich O., Reuss R., Rauer S., Zettl U.K., Wandinger K. P., Melms A., Aktas O., Kristoferitsch W., Wildemann B. Cerebrospinal fluid findings in aquaporin-4 antibody positive neuromyelitis optica: results from 211 lumbar punctures. J Neurol Sci., 2011, vol. 306, no.1-2, pp. 82-90. - https://www.jns-journal.com/article/S0022-510X(11)00169-9/abstract [doi: 10.1016/j.jns.2011.03.038]
  28. Jarius S., Ruprecht K., Kleiter I., Borisow N., Asgari N., Pitarokoili K., Pache F., Stich O., Beume L.A., Hümmert M.W., Trebst C., Ringelstein M., Aktas O., Winkelmann A., Buttmann M., Schwarz A., Zimmermann H., Brandt A.U., Franciotta D., Capobianco M., Kuchling J., Haas J., Korporal-Kuhnke M., Lillevang S.T., Fechner K., Schanda K., Paul F., Wildemann B., Reindl M.; in cooperation with the Neuromyelitis Optica Study Group (NEMOS). MOG-IgG in NMO and related disorders: a multicenter study of 50 patients. Part 1: Frequency, syndrome specificity, influence of disease activity, long-term course, association with AQP4-IgG, and origin. J Neuroinflammation., 2016, vol. 13, no. 1:279. - https://jneuroinflammation.biomedcentral.com/articles/10.1186/s12974-016-0717-1 [doi: 10.1186/s12974-016-0717-1]
  29. Jarius S., Wilken D., Haas J., Ruprecht K., Komorowski L., & Wildemann B. Parvovirus B19 and mumps virus antibodies are major constituents of the intrathecal immune response in European patients with MS and increase the diagnostic sensitivity and discriminatory power of the MRZ reaction. J Neurol., 2021, vol. 268, no. 10, pp. 3758-3765. - https://link.springer.com/article/10.1007/s00415-021-10471-3 [doi: 10.1007/s00415-021-10471-3]
  30. Kang Q., Liao H., Yang L., Fang H., Ning Z., Liao C., Gan S., Wu L. Clinical analysis of 173 pediatric patients with antibody-mediated autoimmune diseases of the central nervous system: a single-center cohort study. Front Immunol., 2023, vol. 14:1140872. - https://www.frontiersin.org/journals/immunology/articles/10.3389/fimmu.2023.1140872/full [doi: 10.3389/fimmu.2023.1140872]
  31. Knudtzen F.C., Nilsson A.C., Skarphedinsson S., Blaabjerg M. False-positive anti-NMDA receptor antibodies in severe case of Lyme neuroborreliosis. Neurol Sci., 2020, vol. 41, no. 1, pp. 197-199. - https://link.springer.com/article/10.1007/s10072-019-04004-0 [doi: 10.1007/s10072-019-04004-0]
  32. Naseri A., Nasiri E., Sahraian M.A., Daneshvar S., Talebi M. Clinical Features of Late-Onset Multiple Sclerosis: a Systematic Review and Meta-analysis. Mult Scler Relat Disord., 2021, no. 50:102816. - https://www.msard-journal.com/article/S2211-0348(21)00082-1/abstract [doi: 10.1016/j.msard.2021.102816]
  33. Pache F., Otto C., Wilken D., Lietzow T., Steinhagen K., Grage-Griebenow E., Schindler P., Niederschweiberer M., Wildemann B., Jarius S., Ruprecht K. Broad Analysis of Serum and Intrathecal Antimicrobial Antibodies in Multiple Sclerosis Underscores Unique Role of Epstein-Barr Virus. Neurol Neuroimmunol Neuroinflamm., 2025, vol. 12, no. 1:e200332. - https://www.neurology.org/doi/10.1212/NXI.0000000000200332?url_ver=Z39.88-2003&rfr_id=ori:rid:crossref.org&rfr_dat=cr_pub 0pubmed [doi: 10.1212/NXI.0000000000200332]
  34. Prüss H. Autoantibodies in neurological disease. Nat Rev Immunol., 2021, vol. 21, no. 12, pp. 798-813. https://www.nature.com/articles/s41577-021-00543-w [doi: 10.1038/s41577-021-00543-w]
  35. Reiber H. Blood-cerebrospinal fluid (CSF) barrier dysfunction means reduced CSF flow not barrier leakage - conclusions from CSF protein data. Arquivos de neuro-psiquiatria., 2021, vol. 79 no. 1, pp. 56-67. - https://www.scielo.br/j/anp/a/GZsLm57X7YtQTdpDhr4pXwG/?lang=en [doi: 10.1590/0004-282X-anp-2020-0094]
  36. Reiber H. Cerebrospinal fluid data compilation and knowledge-based interpretation of bacterial, viral, parasitic, oncological, chronic inflammatory and demyelinating diseases. Diagnostic patterns not to be missed in neurology and psychiatry. Arq Neuropsiquiatr., 2016, vol. 74, no. 4, pp. 337-350. - https://www.scielo.br/j/anp/a/nzjMq8tvsWsGcgBDSYzCNsb/?lang=en [doi: 10.1590/0004-282X20160044]
  37. Reiber H. Flow rate of cerebrospinal fluid (CSF) — a concept common to normal blood-CSF barrier function and to dysfunction in neurological diseases. J Neurol Sci., 1994, vol. 122, no. 2, pp. 189-203. - https://www.jns-journal.com/article/0022-510X(94)90298-4/abstract [doi: 10.1016/0022-510x(94)90298-4]
  38. Reiber H. Knowledge-base for interpretation of cerebrospinal fluid data patterns. Essentials in neurology and psychiatry. Arq Neuropsiquiatr., 2016, vol. 74, no. 6, pp. 501-512. - https://www.scielo.br/j/anp/a/HvJBrPySXmzb86JRcZXs8TD/?lang=en [doi: 10.1590/0004-282X20160066]
  39. Reiber H. Liquordiagnostik in der Neurologie: Paradigmenwechsel bei Hirn-Schranken, Immunsystem und chronischen Krankheiten (essentials). Berlin, Germany: Springer, 2023, pp. 9-13. Reiber H. Cerebrospinal fluid diagnostics in neurology: paradigm shift in brain barriers, immune system and chronic diseases (essentials). Berlin, Germany: Springer, 2023. pp. 9-13. https://doi.org/10.1007/978-3-662-68136-7
  40. Reiber H. Liquordiagnostik in der Neurologie: Paradigmenwechsel bei Hirn-Schranken, Immunsystem und chronischen Krankheiten (essentials). Berlin, Germany: Springer, 2023, pp. 14-16. Reiber H. Cerebrospinal fluid diagnostics in neurology: paradigm shift in brain barriers, immune system and chronic diseases (essentials). Berlin, Germany: Springer, 2023, pp. 14-16. https://doi.org/10.1007/978-3-662-68136-7
  41. Reiber H. Liquordiagnostik in der Neurologie: Paradigmenwechsel bei Hirn-Schranken, Immunsystem und chronischen Krankheiten (essentials). Berlin, Germany: Springer, 2023, pp. 21-23. Reiber H. Cerebrospinal fluid diagnostics in neurology: paradigm shift in brain barriers, immune system and chronic diseases (essentials). Berlin, Germany: Springer, 2023, pp. 21-23. https://doi.org/10.1007/978-3-662-68136-7
  42. Reiber H. Liquordiagnostik in der Neurologie: Paradigmenwechsel bei Hirn-Schranken, Immunsystem und chronischen Krankheiten (essentials). Berlin, Germany: Springer, 2023. pp. 23-27. Reiber H. Cerebrospinal fluid diagnostics in neurology: paradigm shift in brain barriers, immune system and chronic diseases (essentials). Berlin, Germany: Springer, 2023, pp. 23-27. https://doi.org/10.1007/978-3-662-68136-7
  43. Reiber H. Liquordiagnostik in der Neurologie: Paradigmenwechsel bei Hirn-Schranken, Immunsystem und chronischen Krankheiten (essentials). Berlin, Germany: Springer, 2023. pp. 29-33. Reiber H. Cerebrospinal fluid diagnostics in neurology: paradigm shift in brain barriers, immune system and chronic diseases (essentials). Berlin, Germany: Springer, 2023, pp. 29-33. https://doi.org/10.1007/978-3-662-68136-7
  44. Reiber H. Liquordiagnostik in der Neurologie: Paradigmenwechsel bei Hirn-Schranken, Immunsystem und chronischen Krankheiten (essentials). Berlin, Germany: Springer, 2023, pp. 67-71. Reiber H. Cerebrospinal fluid diagnostics in neurology: paradigm shift in brain barriers, immune system and chronic diseases (essentials). Berlin, Germany: Springer, 2023, pp. 67-71. https://doi.org/10.1007/978-3-662-68136-7
  45. Reiber H. Polyspecific antibodies without persisting antigen in multiple sclerosis, neurolupus and Guillain-Barré syndrome: immune network connectivity in chronic diseases. Arq Neuropsiquiatr., 2017, vol. 75, no. 8, pp.580-588. - https://www.scielo.br/j/anp/a/xnnBKNrpb9j6rxPzxDVJD8H/?lang=en [doi: 10.1590/0004-282X20170081]
  46. Reiber H., Felgenhauer K. Protein transfer at the blood cerebrospinal fluid barrier and the quantitation of the humoral immune response within the central nervous system. Clin Chim Acta., 1987, vol. 163, no. 3, pp.319-328. - https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/0009898187902506?via=ihub [doi: 10.1016/0009-8981(87)90250-6]
  47. Reiber H., & Peter J. B. Cerebrospinal fluid analysis: disease-related data patterns and evaluation programs. Journal of the neurological sciences., 2001, vol. 184, no. 2, pp. 101-122. - https://www.jns-journal.com/article/S0022-510X(00)00501-3/abstract [doi: 10.1016/s0022-510x(00)00501-3]
  48. Reiber H., Teut M., Pohl D., Rostasy K.M., Hanefeld F. Paediatric and adult multiple sclerosis: age-related differences and time course of the neuroimmunological response in cerebrospinal fluid. Mult Scler., 2009, vol. 15, no. 12, pp. 1466-1480. - https://journals.sagepub.com/doi/10.1177/1352458509348418?url_ver=Z39.88-2003&rfr_id=ori:rid:crossref.org&rfr_dat=cr_pub 0pubmed [doi: 10.1177/1352458509348418]
  49. Reiber H., Wick M. Ausgewählte Methoden der Liquordiagnostik und Klinischen Neurochemie. Germany: Deutsche Gesellschaft für Liquordiagnostik und Klinische Neurochemie e.V., 2020, pp. 20-25. Reiber H., Wick M. Selected Methods of Cerebrospinal Fluid Diagnostics and Clinical Neurochemistry. Germany: German Society for Cerebrospinal Fluid Diagnostics and Clinical Neurochemistry, 2020, pp. 20-25. https://www.dgln.de/methodenkatalog
  50. Reiber H., Wick M. Ausgewählte Methoden der Liquordiagnostik und Klinischen Neurochemie. Germany: Deutsche Gesellschaft für Liquordiagnostik und Klinische Neurochemie e.V., 2020, pp. 24-25. Reiber H., Wick M. Selected Methods of Cerebrospinal Fluid Diagnostics and Clinical Neurochemistry. Germany: German Society for Cerebrospinal Fluid Diagnostics and Clinical Neurochemistry, 2020, pp. 24-25. https://www.dgln.de/methodenkatalog
  51. Reiber H., Wick M. Ausgewählte Methoden der Liquordiagnostik und Klinischen Neurochemie. Germany: Deutsche Gesellschaft für Liquordiagnostik und Klinische Neurochemie e.V., 2020, pp. 33-35. Reiber H., Wick M. Selected Methods of Cerebrospinal Fluid Diagnostics and Clinical Neurochemistry. Germany: German Society for Cerebrospinal Fluid Diagnostics and Clinical Neurochemistry, 2020, pp. 33-35. https://www.dgln.de/methodenkatalog
  52. Reiber H., Zeman D., Kušnierová P., Mundwiler E., Bernasconi L. Diagnostic relevance of free light chains in cerebrospinal fluid - The hyperbolic reference range for reliable data interpretation in quotient diagrams. Clin Chim Acta., 2019, vol. 497, pp. 153-162. - https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0009898119319771?via=ihub [doi: 10.1016/j.cca.2019.07.027]
  53. Schäffler N., Köpke S., Winkler L., Schippling S., Inglese M., Fischer K., Heesen C. Accuracy of diagnostic tests in multiple sclerosis — a systematic review. Acta Neurol Scand., 2011, vol. 124, no. 3, pp. 151-164. - https://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/j.1600-0404.2010.01454.x [doi: 10.1111/j.1600-0404.2010.01454.x]
  54. Shamier M. C., Bogers S., Yusuf E., van Splunter M., Ten Berge J.C.E.M., Titulaer M., van Kampen J.J.A., GeurtsvanKessel C.H. The role of antibody indexes in clinical virology. Clin Microbiol Infect., 2021, vol. 27, no. 9, pp. 1207-1211. - https://www.clinicalmicrobiologyandinfection.com/article/S1198-743X(21)00150-6/fulltext [doi: 10.1016/j.cmi.2021.03.015]
  55. Venhoff N., Thiel J., Rizzi M., Venhoff A., Rauer S., Endres D., Hentze C., Staniek J., Huzly D., Voll R.E., Salzer U., Hottenrott T. The MRZ-Reaction and Specific Autoantibody Detection for Differentiation of ANA-Positive Multiple Sclerosis From Rheumatic Diseases With Cerebral Involvement. Front Immunol., 2019, vol. 10:514. - https://www.frontiersin.org/journals/immunology/articles/10.3389/fimmu.2019.00514/full [doi: 10.3389/fimmu.2019.00514]
  56. Vlad B., Neidhart S., Hilty M., Ziegler M., Jelcic I. Differentiating neurosarcoidosis from multiple sclerosis using combined analysis of basic CSF parameters and MRZ reaction. Front Neurol., 2023, vol. 14:1135392. - https://www.frontiersin.org/journals/neurology/articles/10.3389/fneur.2023.1135392/full [doi: 10.3389/fneur.2023.1135392]
  57. Vlad B., Reichen I., Neidhart S., Hilty M., Lekaditi D., Heuer C., Eisele A., Ziegler M., Reindl M., Lutterotti A., Regeniter A., Jelcic I. Basic CSF parameters and MRZ reaction help in differentiating MOG antibody-associated autoimmune disease versus multiple sclerosis. Front Immunol., 2023, vol. 14:1237149. - https://www.frontiersin.org/journals/immunology/articles/10.3389/fimmu.2023.1237149/full [doi: 10.3389/fimmu.2023.1237149]
  58. Wildemann B., Oschmann, P., Reiber H. Laboratory Diagnosis in Neurology. Stuttgart, Germany: Thieme, 2010, pp. 91-93. - https://www.thieme-connect.de/products/ebooks/lookinside/10.1055/b-0034-81225 [doi: 10.1055/b-0034-81225]
  59. Wildemann B., Oschmann, P., Reiber H. Laboratory Diagnosis in Neurology. Stuttgart, Germany: Thieme, 2010, pp. 96-102. - https://www.thieme-connect.de/products/ebooks/lookinside/10.1055/b-0034-81225 [doi: 10.1055/b-0034-81225]
  60. Wildemann B., Oschmann, P., Reiber H. Laboratory Diagnosis in Neurology. Stuttgart, Germany: Thieme, 2010, pp. 108-109. - https://www.thieme-connect.de/products/ebooks/lookinside/10.1055/b-0034-81225 [doi: 10.1055/b-0034-81225]
  61. Zhang X., Hao H., Jin T., Qiu W., Yang H., Xue Q., Yin J., Shi Z., Yu H., Ji X., Sun X., Zeng Q., Liu X., Wang J., Li H., He X., Yang J., Li Y., Liu S., Lau A.Y., Gao F., Hu S., Chu S., Ding D., Zhou H., Li H., Chen X. Cerebrospinal fluid oligoclonal bands in Chinese patients with multiple sclerosis: the prevalence and its association with clinical features. Front Immunol., 2023, vol. 14:1280020. - https://www.frontiersin.org/journals/immunology/articles/10.3389/fimmu.2023.1280020/full [doi: 10.3389/fimmu.2023.1280020]
  62. Zondra Revendova K., Svub K., Bunganic R., Pelisek O., Volny O., Ganesh A., Bar M., Zeman D., Kusnierova P. A comparison of measles-rubella-zoster reaction, oligoclonal IgG bands, oligoclonal kappa free light chains and kappa index in multiple sclerosis. Mult Scler Relat Disord., 2024, vol. 81:105125. - https://www.msard-journal.com/article/S2211-0348(23)00626-0/fulltext [doi: 10.1016/j.msard.2023.105125]

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Демкина А.М., Сайфуллин Р.Ф., Шакарян А.К., Шамшева О.В.,

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 64788 от 02.02.2016.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах