Генотипирование риккетсий, циркулирующих на территориях Республики Алтай и Хабаровского края

Обложка


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Цель — верификация возбудителя сибирского клещевого тифа (СКТ) при микст-инфицированности иксодовых клещей на территории Республики Алтай и Хабаровского края с применением комплексного молекулярно-биологического подхода. Материалы и методы. Материалом для исследования служили 304 имаго иксодовых клещей шести видов. Сбор клещей проводился на территории Республики Алтай и Хабаровского края в 2014–2022 гг. ДНК риккетсий идентифицировали методом двухраундовой ПЦР с использованием родо- и видоспецифических праймеров генов gltA и ompA с последующим секвенированием и с помощью ПЦР с использованием наборов реагентов «РеалБест ДНК R. sibirica/R. heilongjiangensis» (ЗАО «Вектор-Бест», Новосибирск). Результаты. Частота выявления ДНК риккетсий в иксодовых клещах в Республике Алтай составила 82,6% (ДИ: 69,1–96,1), в Хабаровском крае — 53,1% (ДИ: 44,9–61,3). Видовой состав риккетсий в различных видах иксодовых клещей на этих территориях, эндемичных по сибирскому клещевому тифу, характеризуется наличием микст-инфицированности. ДНК Rickettsia sibirica и R. raoultii удалось обнаружить в клещах Dermacentor nuttalli, Haemaphysalis concinna, D. silvarum. В клещах Ixodes persulcatus, I. pavlovskyi и в гибридах I. pavlovskyi/persulcatus выявлена ДНК только Candidatus R. tarasevichiae. ДНК R. heilongjiangensis обнаружена в клещах H. concinna в Хабаровском крае. В клещах D. nuttalli и H. concinna из Республики Алтай выявлена только ДНК Candidatus R. tarasevichiae. ДНК «классического» патогенного вида — R. sibirica выявлена в клещах D. nuttalli и H. concinna в Республике Алтай, клещах D. silvarum, H. concinna и H. japonica douglasi — в Хабаровском крае. Кроме того, в Хабаровском крае в клещах H. concinna обнаружена ДНК — R. heilongjiangensis, в клещах H. japonica douglasi выявлен фрагмент ДНК, общий для R. sibirica subsp. mongolitimonae и R. conorii, что требует дальнейшего изучения. ДНК Candidatus R. tarasevichiae детектирована в клещах рода Ixodes (I. persulcatus, I. pavlovskyi и их гибридах), в Республике Алтай — в клещах D. nuttalli и H. concinna. ДНК R. raoultii выявлена в клещах рода Dermacentor — D. nuttalli — в Республике Алтай и D. silvarum в Хабаровском крае. Выводы. При молекулярно-биологическом мониторинге риккетсий на эндемичных территориях выявление R. raoultii «маскирует» присутствие этиологического агента СКТ — R. sibirica. Этот феномен позволяет объяснить высокий уровень заболеваемости СКТ на изучаемых территориях при редкой выявляемости ДНК R. sibirica при молекулярно-биологическом скрининге в иксодовых клещах.

Полный текст

Введение

Впервые описанные случаи ранее неизвестного риккетсиального заболевания, возникающего на эндемичных территориях Азиатской части России после присасывания клещей и протекающего с высокой температурой, первичным аффектом, розеолезно-петехиальной сыпью, изменениями со стороны центральной нервной системы, выявлены практически одновременно (1934–1935 гг.) в Приморье — «клещевая лихорадка Приморья», в Хабаровском крае — «дальневосточная сыпная клещевая лихорадка», в Красноярском крае — «клещевая сыпная лихорадка» [6].

Планомерное изучение новой инфекции в 1937–1938 гг. в Красноярском крае под руководством М.К. Кронтовской позволило выделить клещевой сыпной тиф (в настоящее время регистрируют как сибирский клещевой тиф — СКТ) в самостоятельную нозологическую форму. Установлена риккетсиозная этиология заболевания (по современной номенклатуре Rickettsia sibirica subsp. sibirica), классический переносчик — клещи Dermacentor nuttalli Ol., основные эпидемиологические закономерности. В 1940 г. экспедицией, возглавляемой М.К. Кронтовской, в Хабаровском крае выделены штаммы риккетсий от больных, клещей Haemaphysalis concinna и Dermacentor silvarum [4].

В результате многолетних исследований выявлен широкий нозоареал СКТ с наибольшим эпидемическим потенциалом очагов на юге Сибири и Дальнего Востока России. Применительно к эндемичным территориям число эпидемически значимых переносчиков в очагах колеблется от одного-двух (D. nuttalli — горные степи Алтая, лесостепи Минусинской и Канской котловин, Тувы, Предбайкалья и Забайкалья; D. marginatus и в меньшей степени D. reticulatus — равнинные степные и лесостепные ландшафты Западно-Сибирской низменности, D. silvarum и H. concinna — лесостепи Салаира, Кузнецкой котловины, юга Дальнего Востока) до четырех видов (D. marginatus, H. concinna, D. silvarum, D. reticulatus — северная лесостепь Алтайского края, Северный Алтай) [7]. В Республике Алтай находятся наиболее эпидемически активные очаги СКТ и отмечается наиболее высокий уровень заболеваемости в России: среднемноголетний показатель заболеваемости достигает 72 на 100 тыс. населения, что примерно в 50 раз превышает аналогичный показатель по РФ [9].

Уже в первый период изучения клещевых риккетсиозов (КР) возникли вопросы об отличиях циркулирующих на очаговых территориях штаммов риккетсий. Удалось установить этиологию случаев КР на юге Хабаровского края как вызванных R. heilongjiangensis [2, 17]. Эта риккетсия выявлена в «пятнах» H. concinna в пределах нозоареала КР в Приморском, Хабаровском, Алтайском и Красноярском краях, в последнем — также в клещах D. nuttalli [18, 19]. В Хабаровском крае в клещах Ixodes persulcatus молекулярными методами выявляли Candidatus R. tarasevichiae, R. helvetica и R. heilongjiangensis [1, 3]

По современным представлениям, основанным на многолетнем изучении штаммов риккетсий из коллекции Омского НИИ природно-очаговых инфекций, на Дальнем Востоке России, наряду с классическим возбудителем СКТ R. sibirica subsp. sibirica, циркулируют R. heilongjiangensis и геновариант R. sibirica subsp. BJ-90 [5].

Целью данного исследования является верификация возбудителя СКТ при микст-инфицированности риккетсиями иксодовых клещей на территории Республики Алтай и Хабаровского края с применением комплексного молекулярно-биологического подхода.

Материалы и методы

Материалом для исследования служили 304 имаго клещей шести видов (D. nuttalli, D. silvarum, H. concinna, H. japonica douglasi, I. persulcatus, I. pavlovskyi, I. pavlovskyi/persulcatus). Сбор клещей проводился на флаг на территории Республики Алтай и Хабаровского края в 2014–2022 гг. (табл. 1). Идентификацию клещей осуществляли по морфологическим признакам по Филипповой [10]. Из клещей, полученных в 2014, 2018 и 2019 гг. готовили гомогенизированную суспензию, у клещей, собранных в 2022 г., для исследования забирали гемолимфу с последующим выделением ДНК.

 

Таблица 1. Характеристика исследованных клещей

Table 1. Characteristics of the studied ticks

Вид клещей

Species of ticks

Год сбора

Year of collection

Место сбора

Gathering place

Количество

Quantity

D. nuttalli

2014

Кош-Агачский р-н Р.А.*/Kosh-Agachsky district A.R.*

65

2019

Усть-Коксинский р-н Р.А./Ust-Koksinsky district A.R.

1

2022

Онгудайский р-н Р.А./Ongudai district A.R.

50

H. concinna

2019

Горно-Алтайский р-н Р.А./Gorno-Altaisky district A.R.

3

Майминский р-н Р.А./Maiminsky district A.R.

4

Чойский р-н Р.А./Choysky district A.R.

16

2018

Хабаровский р-н Х.К.**/Khabarovsk district Kh.K.**

18

I. persulcatus

2019

Чойский р-н Р.А./Choysky district A.R.

5

2018

Хабаровский р-н Х.К./Khabarovsk district Kh.K.

9

Р-н имени Лазо Х.К./Lazo District Kh.K.

2

H. japonica douglasi

2018

Хабаровский р-н Х.К./Khabarovsk district Kh.K.

23

I. pavlovskyi

2018

Хабаровский р-н Х.К./Khabarovsk district Kh.K.

63

Р-н имени Лазо Х.К./Lazo District Kh.K.

27

I. pavlovskyi/persulcatus

2018

Хабаровский р-н Х.К./Khabarovsk district Kh.K.

12

Р-н им. Лазо Х.К./Lazo District Kh.K.

4

D. silvarum

2018

Р-н им. Лазо Х.К./Lazo District Kh.K.

2

Примечание. *Республика Алтай; **Хабаровский Край.

Note. *Altai Republic; **Khabarovsk Krai.

 

Выделение нуклеиновых кислот проводили наборами «АмплиПрайм РИБО-преп» компании «ИнтерЛабСервис» (Москва, Россия) и набором реагентов «РеалБест экстракция 100» ЗАО «Вектор-Бест» (Новосибирск, Россия). ДНК риккетсий выявляли (табл. 2) методом двухраундовой ПЦР с использованием родо- и видоспецифических праймеров генов gltA и ompA [15] с последующим секвенированием и в ПЦР-РВ с помощью наборов реагентов «РеалБест ДНК R. sibirica/R. heilongjiangensis» (ЗАО «Вектор-Бест», Новосибирск).

 

Таблица 2. Результаты исследования иксодовых клещей, собранных на территориях Республики Алтай и Хабаровского края на наличие ДНК риккетсий

Table 2. The results of the study of ixodic ticks collected in the territories of the Altai Republic and the Khabarovsk Krai for the presence of Rickettsia DNA

Вид клеща

Species of tick

Республика Алтай/Altai Republic

Хабаровский край/Khabarovsk Krai

Вид возбудителя

Species of pathogen

Количество

Quantity

% (ДИ/CI)

Вид возбудителя

Species of pathogen

Количество

Quantity

% (ДИ/CI)

D. nuttalli

R. sibirica*

16

13,8%

(11,7–15,9)

Данный вид клещей отсутствует на указанной территории

This species of ticks is not present in the specified territory

Candidatus R. tarasevichiae**

2

1,7%

(1,5–2,0)

R. raoultii*

55

47.4%

(40,1–54,8)

R. sibirica****/R. raoultii*

25

21,6%

(18,2–24,9)

H. concinna

R. sibirica****

1

4,4%

(2,8–5,9)

R. sibirica****

3

16,7%

(10,1–23,2)

R. raoultii***

5

21,7%

(14,2–29,3)

R. heilongjiangensis****

1

5,6%

(3,4–7,7)

Candidatus R. tarasevichiae**

8

34,8%

(22,7–46,9)

R. sibirica****/R. raoultii***

2

8,7%

(5,7–11,7)

Риккетсия не идентифицирована*

Rickettsia has not been identified

1

5,6%

(3,4–7,7)

R. raoultii***/R. tarasevichiae**

1

4,4%

(2,8–5,9)

I. persulcatus

Candidatus R. tarasevichiae**

4

80,0%

(20,3–100)

Candidatus R. tarasevichiae**

10

90,9%

(45,2–100)

H. japonica douglasi

Данный вид клещей отсутствует на указанной территории

This species of ticks is not present in the specified territory

R. sibirica subsp. mongolitimonae/R. conorii**

1

4,4%

(2,8–5,9)

R. sibirica****

2

8,7%

(5,7–11,7)

I. pavlovskyi

Данный вид клещей в этой работе не исследовался

This species of mites has not been studied in this work

Candidatus R. tarasevichiae**

54

60,0%

(49,5–70,6)

I. pavlovskyi/persulcatus

Данный вид клещей в этой работе не исследовался

This species of mites has not been studied in this work

Candidatus R. tarasevichiae**

11

68,8%

(40,1–97,5)

D. silvarum

Данный вид клещей в этой работе не исследовался

This species of mites has not been studied in this work

R. sibirica****

1

50,0%

(0–100)

R. sibirica****/R. raoultii**

1

50,0%

(0–100)

Примечание. * — ПЦР с видоспецифическими праймерами к гену ompA; ** — ПЦР+секвенирование фрагмента гена gltA; *** — ПЦР+секвенирование фрагмента гена ompA; **** — Наборов реагентов для ПЦР в режиме реального времени «РеалБест ДНК R. sibirica/R. heilongjiangensis».

Note. * — PCR with species-specific primers for the OmpA gene; ** — PCR+sequencing of gltA gene fragment; *** — PCR+sequencing of OmpA gene fragment; **** — Sets of reagents for real-time PCR “RealBest DNA R. sibirica/R. heilongjiangensis”.

 

95% доверительный интервал (ДИ) уровня выявляемости риккетсий в клещах был рассчитан в программе MS Excel.

Результаты

В результате ПЦР-анализа установлена суммарная выявляемость ДНК риккетсий в 82,6% (ДИ: 69,1–96,1) иксодовых клещей на территории Республики Алтай. ДНК риккетсий была выявлена в 84,4% (ДИ: 69,0–99,8) исследованных клещей D. nuttalli. Самым распространенным видом риккетсий в клещах этого вида оказалась R. raoultii, обнаруженная в 47,4% (ДИ: 38,8–56,0) иксодид. В D. nuttalli также в высоком количестве выявлена ДНК R. sibirica в 35,3% (ДИ: 28,9–41,7) и Ca. R. tarasevichiae в 1,7% (1,4–2,0). В 21,6% (ДИ: 17,7–25,5) этого вида клещей установлена микст-инфицированность R. sibirica и R. raoultii. ДНК риккетсий была выявлена в 73,9% (ДИ: 43,7–100) клещей H. concinna. Среди выявленных риккетсий преобладающим видом была Ca. R. tarasevichiae (39,1%; ДИ: 23,2–55,0). Реже была выявлена ДНК R. sibirica и R. raoultii. В одной пробе выявлены одновременно Ca. R. tarasevichiae и R. raoultii. В клещах I. persulcatus идентифицировали только Ca. R. tarasevichiae.

При исследовании клещей, собранных на флаг в 2018 г. на территории Хабаровского края, уровень выявляемости ДНК риккетсий составил 53,1% (ДИ: 44,9–61,3). ДНК риккетсий была выявлена в 22,2% (ДИ: 11,9–32,5) исследованных клещей H. concinna. Чаще всего в клещах этого вида выявлялась ДНК R. sibirica, в одном экземпляре генотипировали R. heilongjiangensis. ДНК риккетсий была обнаружена в 13,0% (ДИ: 7,7–18,3) исследованных клещей H. japonica douglasi. Чаще выявлялась ДНК R. sibirica, фрагмент последовательности гена gltA у одного из образцов был идентичен последовательности R. sibirica subsp. mongolitimonae/R. conorii (GenBank: KT345979.1). В 60,0% (ДИ: 47,6–72,4) исследованных клещей I. pavlovskyi была выявлена ДНК риккетсий, идентифицированная как Ca. R. tarasevichiae. Схожая картина наблюдалась в клещах I. persulcatus и гибридах I. pavlovskyi/persulcatus, где так же выявляли ДНК Ca. R. tarasevichiae, уровень выявляемости составил 90,9% (ДИ: 37,2–100), и 68,8% (ДИ: 35,1–100) соответственно. В клещах D. silvarum выявлена ДНК R. sibirica, в том числе одновременно с R. raoultii.

Обсуждение

В данной работе установлено, что у основных переносчиков возбудителя СКТ (D. nuttalli, H. concinna, D. silvarum) [7] с применением комплексного молекулярно-биологического подхода ДНК R. sibirica выявляется значительно чаще при микст-инфицированности с R. raoultii, чем индивидуально. В единичных случаях может встречаться микст-инфицированность Ca. R. tarasevichiae и R. raoultii клещей вида H. concinna, при этом первый вид риккетсий является преобладающим. В одном экземпляре клеща H. japonica douglasi из Хабаровского края получен сиквенс фрагмента (512 п.о.) гена цитратсинтазы (gltA) имеющий 100% гомологии по 501 нуклеотиду с R. sibirica subsp. mongolitimonae и с R. conorii, что требует дальнейшего изучения.

Установлена суммарная выявляемость риккетсий в 82,6% (ДИ: 69,1–96,1) клещей на территории Республики Алтай, что подтверждает полученные нами ранее данные при исследовании иксодовых клещей на наличие антигенов риккетсий группы КПЛ с помощью разработанной ИФА тест-системы [11].

Удалось доказать ранее высказанное предположение о недостаточной информативности применения ПЦР с «классическими» (gltA, OmpA) праймерами в очагах СКТ [20], не позволяющее выявлять в индивидуальных пробах иксодовых клещей R. sibirica при более массовом присутствии копий ДНК R. raoultii [8].

При очевидных преимуществах метода секвенирования по Сэнгеру, на этапе ПЦР с применением родоспецифичных праймеров осуществляется амплификация варианта гена только одного вида риккетсий, при этом ДНК остальных видов не выявляется. Комплексный подход, основанный на применении различных модификаций ПЦР с разными видами праймеров, включая родо- и видоспецифичные, с последующим секвенированием позволило получить более объективную информацию при скриннинге ДНК различных видов риккетсий в индивидуальных пробах иксодовых клещей. В результате применения этого подхода ДНК «классического» патогенного вида — R. sibirica выявлена в клещах D. nuttalli и H. concinna в Республике Алтай, клещах D. silvarum, H. concinna и H. japonica douglasi в Хабаровском крае. В то же время при генотипировании риккетсий в пробах клинического материала от пациентов в очагах СКТ в Республике Алтай, Алтайском и Хабаровском краях удалось выявить ДНК R. sibirica и R. heilongjiangensis [12, 13, 16]. При этом на территории Новосибирской области в пробах клинического материала от пациентов с подозрением на «клещевые» инфекции ДНК R. sibirica выявлялась в 2,3 раза чаще, чем R. raoultii [14].

Выводы

При молекулярно-биологическом мониторинге риккетсий на эндемичных территориях выявление R. raoultii «маскирует» присутствие этиологического агента СКТ — R. sibirica. Этот феномен позволяет объяснить высокий уровень заболеваемости СКТ на изучаемых территориях при редкой выявляемости ДНК R. sibirica при молекулярно-биологическом скрининге в иксодовых клещах.

Необходимо внедрение комплексного молекулярно-биологического подхода для совершенствования эпидемиологического надзора за природными очагами СКТ за счет молекулярно-биологического скрининга ДНК риккетсий в иксодовых клещах и изучения значимости различных видов риккетсий в структуре региональной инфекционной патологии.

Конфликт интересов

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

×

Об авторах

Сергей Владимирович Штрек

ФБУН Омский НИИ природно-очаговых инфекций Роспотребнадзора; ФГБОУ ВО Омский государственный медицинский университет Минздрава России

Автор, ответственный за переписку.
Email: studi1990@mail.ru

к.м.н., старший научный сотрудник, зав. лабораторией зоонозных инфекций отдела природно-очаговых бактериальных зоонозов; доцент кафедры микробиологии, вирусологии и иммунологии

Россия, г. Омск; г. Омск

Николай Викторович Рудаков

ФБУН Омский НИИ природно-очаговых инфекций Роспотребнадзора; ФГБОУ ВО Омский государственный медицинский университет Минздрава России

Email: studi1990@mail.ru

д.м.н. профессор, директор; зав. кафедрой микробиологии, вирусологии и иммунологии

Россия, г. Омск; г. Омск

Станислав Николаевич Шпынов

ФБУН Омский НИИ природно-очаговых инфекций Роспотребнадзора; ФГБОУ ВО Омский государственный медицинский университет Минздрава России

Email: studi1990@mail.ru

д.м.н., главный научный сотрудник лаборатории зоонозных инфекций отдела природно-очаговых бактериальных зоонозов (ПОБЗ); профессор кафедры микробиологии, вирусологии и иммунологии

Россия, г. Омск; г. Омск

Алексей Владимирович Санников

ФБУН Омский НИИ природно-очаговых инфекций Роспотребнадзора

Email: studi1990@mail.ru

младший научный сотрудник лаборатории зоонозных инфекций отдела ПОБЗ

Россия, г. Омск

И. Е. Самойленко

ФБУН Омский НИИ природно-очаговых инфекций Роспотребнадзора

Email: studi1990@mail.ru

к.м.н., ведущий научный сотрудник лаборатории зоонозных инфекций отдела ПОБЗ

Россия, г. Омск

Лилия Джигангеровна Щучинова

Управление Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека по Республике Алтай

Email: studi1990@mail.ru

д.м.н., начальник отдела

Россия, г. Горно-Алтайск

Ольга Евгеньевна Троценко

Хабаровский НИИ эпидемиологии и микробиологии Роспотребнадзора

Email: studi1990@mail.ru

д.м.н., директор

Россия, г. Хабаровск

Анна Геннадьевна Драгомерецкая

Хабаровский НИИ эпидемиологии и микробиологии Роспотребнадзора

Email: studi1990@mail.ru

к.м.н., начальник отдела природно-очаговых инфекций

Россия, г. Хабаровск

Елена Валерьевна Матущенко

ФБУН Омский НИИ природно-очаговых инфекций Роспотребнадзора; ФГБОУ ВО Омский государственный медицинский университет Минздрава России

Email: studi1990@mail.ru

к.м.н., доцент кафедры микробиологии, вирусологии и иммунологии

Россия, г. Омск; г. Омск

Список литературы

  1. Бондаренко Е.И., Мокрецова Е.В., Здановская Н.И., Высочина Н.П., Пуховская Н.М., Тимофеев Д.И., Иванов М.К. Выявление возбудителей клещевого риккетсиоза в клещах и крови пациентов на Дальнем Востоке с помощью ПЦР-анализа в режиме реального времени. Поликлиника. 2014. № 4–1. С. 44–48. [Bondarenko E.I., Mokrecova E.V., Zdanovskaya N.I., Vysochina N.P., Puhovskaya N.M., Timofeev D.I., Ivanov M.K. Detection of tick-borne rickettsiosis pathogens in ticks and blood of patients in the Far East using real-time PCR analysis. Poliklinika = Polyclinic, 2014, no. 4–1, pp. 44–48. (In Russ.)]
  2. Григорьева Я.Е., Карань Л.С., Мокрецова Е.В., Щучинова Л.Д., Федорова М.В., Журенкова О.Б., Шипулин Г.А., Малеев В.В. Сравнительный анализ ПЦР- и ИФА-методов в лабораторной диагностике риккетсиозов группы КПЛ на примере трехлетних исследований в Республике Алтай и Хабаровском крае // Молекулярная диагностика. 2017. Т. 2. С. 192–194. [Grigor’eva Ya.E., Karan’ L.S., Mokrecova E.V., Shchuchinova L.D., Fedorova M.V., Zhurenkova O.B., Shipulin G.A., Maleev V.V. Comparative analysis of PCR and ELISA methods in laboratory diagnostics of rickettsioses of the KPL group on the example of three-year studies in the Altai Republic and Khabarovsk Krai. Molekulyarnaya diagnostika = Molecular Diagnostics, 2017, vol. 2, pp. 192–194. (In Russ.)]
  3. Иголкина Я.П., Бондаренко Е.И., Рар В.А., Епихина Т.И., Панов В.В., Высочина Н.П., Пуховская Н.М., Малькова М.Г., Василенко А.Г., Якименко В.В., Танцев А.К., Иванов М.К., Тикунова Н.В. Молекулярно-генетический анализ риккетсий, переносимых клещами Ixodes persulcatus schulze на территории юга Западной Сибири и Дальнего Востока // Национальные приоритеты России. 2014. № 3 (13). С. 100–103. [Igolkina Y.P., Bondarenko E.I., Rar V.A., Epikhina T.I., Panov V.V., Vysochina N.P., Pukhovskaya N.M., Malkova M.G., Vasilenko A.G., Yakimenko V.V., Tantsev A.K., Ivanov M.K., Tikunova N.V. Molecular genetic analysis of Rickettsia spp. Transmitted by Ixodes persulcatus ticks in the south-Western Siberia and the Far East. Nacional’nye prioritety Rossii = Russia’s National Priorities, 2014, no. 3 (13), pp. 100–103. (In Russ.)]
  4. Рудаков Н.В. К 75-летию открытия Rickettsia sibirica – возбудителя клещевого сыпного тифа: история изучения и современные представления // Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2014. № 1. С. 4–5. [Rudakov N.V. 75th anniversary of the Rickettsia sibirica discovery: history of study and modern ideasi. Epidemiologiya i vaktsinoprofilaktika = Epidemiology and Vaccine Prevention, 2014, no. 1, pp. 4–5. (In Russ.)]
  5. Рудаков Н.В. Риккетсии и риккетсиозы: руководство для врачей. Омск: ИЦ «Омский научный вестник», 2016. 424 с. [Rudakov N.V. Rickettsia and rickettsioses: a guidebook for doctors. Omsk: Omsk Science Bulletin, 2016. 424 p. (In Russ.)]
  6. Рудаков Н.В., Оберт А.С. Клещевой риккетсиоз. Омск: Изд-во Омской государственной медицинской академии, 2001. 120 с. [Rudakov N.V., Obert A.S. Tick-borne rickettsiosis. Omsk: Omsk State Medical Academy Publishing, 2001. 120 p. (In Russ.)]
  7. Рудаков Н.В., Рудакова С.А. Клещевые трансмиссивные инфекции Сибири. Практическое руководство. Омск: ООО ИЦ «Омский научный вестник», 2019. 146 с. [Rudakov N.V., Rudakova S.A. Tick-borne vector-borne infections of Siberia. Practical guide. Omsk: LLC Omskiy nauchnyy vestnik Publishing Center, 2019. 146 p. (In Russ.)]
  8. Рудаков Н.В., Самойленко И.Е., Решетникова Т.А. Проблемы лабораторной диагностики риккетсиозов группы клещевой пятнистой лихорадки в России // Клиническая лабораторная диагностика. 2015. № 1. С. 50–52. [Rudakov N.V., Samoilenko I.E, Reshetnikova T.A. The problems of laboratory diagnostic of rickett siosis of group spott ed tick-bite fever in Russia. Clinicheskay laboratornay diagnostika = Russian Clinical Laboratory Diagnostics, 2015, no. 1, pp. 50–52. (In Russ.)]
  9. Рудаков Н.В., Шпынов С.Н., Транквилевский Д.В., Пакскина Н.Д., Савельев Д.А., Самойленко И.Е., Решетникова Т.А., Кумпан Л.В., Пеньевская Н.А. Особенности эпидемической ситуации по сибирскому клещевому тифу и другим клещевым риккетсиозам в Российской Федерации, прогноз на 2019 г. // Проблемы особо опасных инфекций. 2019. № 1. С. 89–97. [Rudakov N.V., Shpynov S.N., Trankvilevsky D.V., Pakskina N.D., Savel’ev D.A., Samoylenko I.E., Reshetnikova T.A., Kumpan L.V., Pen’evskaya N.A. Features of the epidemiological situation on siberian tick typhus and other tick-borne ricketsioses in the Russian Federation, prognosis for. Problemy osobo opasnyh infekcij = Problems of Particularly Dangerous Infections, 2019, no. 1, pp. 89–97. (In Russ.)] doi: 10.21055/0370-1069-2019-1-89-97
  10. Филиппова Н.А. Таксономическая внутривидовая дифференциация у иксодовых клещей (Acari: Ixodidae) с позиций морфологической концепции вида // Паразитология. 2007. Т. 41, № 6. С. 409–427. [Filippova N.A. Intraspecific taxonomic differentiation in ticks (Acari: Ixodidae) in the view of the morphological conception of species. Parazitologiya = Parasitology, 2007, vol. 41, no. 6, pp. 409–427. (In Russ.)]
  11. Шпынов С.Н., Рудаков Н.В. Иммуноферментная тест-система для выявления риккетсий группы клещевой пятнистой лихорадки // Лабораторное дело. 1991. № 11. С. 67–69. [Shpynov S.N., Rudakov N.V., Enzyme immunoassay system for detecting rickettsias of the tick-spot fever group. Laboratornoe delo = Laboratornoe Delo, 1991, no. 11, pp. 67–69. (In Russ.)]
  12. Щучинова Л.Д., Злобин В.И., Ечешева А.В., Бондаренко Е.И. Современные эпидемиологические черты сибирского клещевого тифа в Республике Алтай // Современные проблемы науки и образования. 2017. № 6. [Schuchinova L.D., Zlobin V.I., Echesheva A.V., Bondarenko E.I. Modern epidemiological featuresof the siberian tick typhus in the Altai Republic. Sovremennye problemy nauki i obrazovaniya = Modern Problems of Science and Education, 2017, no. 6. (In Russ.)] URL: https://science-education.ru/ru/article/view?id=27089 (19.02.2023)
  13. Granitov V., Shpynov S., Beshlebova O., Arsenjeva I., Dedkov V., Safonova M., Stukolova O., Pantjukhina A., Tarasevich I. New evidence on tick-borne rickettsioses in the Altai region of Russia using primary lesions, serum and blood clots of molecular and serological study. Microbes Infect., 2015, vol. 17, no. 11–12, pp. 862–865. doi: 10.1016/j.micinf.2015.08.011
  14. Igolkina Y., Krasnova E., Rar V., Savelieva M., Epikhina T., Tikunov A., Khokhlova N., Provorova V., Tikunova N. Detection of causative agents of tick-borne rickettsioses in Western Siberia, Russia: identification of Rickettsia raoultii and Rickettsia sibirica DNA in clinical samples. Clin. Microbiol. Infect., 2018, vol. 24, no. 2, pp. 199.e9–199.e12. doi: 10.1016/j.cmi.2017.06.003
  15. Igolkina Y., Rar V., Yakimenko V., Malkova M., Tancev A., Tikunov A., Epikhina T., Tikunova N. Genetic variability of Rickettsia spp. in Ixodes persulcatus/Ixodes trianguliceps sympatric areas from Western Siberia, Russia: Identification of a new Candidatus Rickettsia species. Infection, Genetics and Evolution, 2015, no. 34, pp. 88–93. doi: 10.1016/j.meegid.2015.07.015
  16. Mediannikov O., Sidelnikov Y., Ivanov L., Fournier P.E., Tarasevich I., Raoult D. Far eastern tick-borne rickettsiosis: identification of two new cases and tick vector. Ann. NY Acad. Sci., 2006, vol. 1078, pp. 80–88. doi: 10.1196/annals.1374.010
  17. Mediannikov O., Sidelnikov Y., Ivanov L., Mokretsova E., Fournier P.-E., Tarasevich I., Raoult D. Acute tick-borne rickettsiosis caused by Rickettsia heilongjiangensis in Russian Far East. Emerg. Infect. Dis., 2004, vol. 10, no. 5, pp. 810–817. doi: 10.3201/eid1005.030437
  18. Shpynov S., Fournier P.E., Rudakov N., Tankibaev M., Tarasevich I., Raoult D. Detection of a rickettsia closely related to Rickettsia aeschlimannii, “Rickettsia heilongjiangensis”, Rickettsia sp. strain RpA4, and Ehrlichia muris in ticks collected in Russia and Kazakhstan. J. Clin. Microbiol., 2004, vol. 42, no. 5, pp. 2221–2223. doi: 10.1128/JCM.42.5.2221-2223.2004
  19. Shpynov S., Fournier P.E., Rudakov N., Tarasevich I., Raoult D. Detection of members of the genera Rickettsia, Anaplasma, and Ehrlichia in ticks collected in the Asiatic part of Russia. Ann. NY Acad. Sci., 2006, vol. 1078, pp. 378–383. doi: 10.1196/annals.1374.075
  20. Shpynov S., Parola P., Rudakov N., Samoilenko I., Tankibaev M., Tarasevich I., Raoult D. Detection and identification of spotted fever group rickettsiae in Dermacentor ticks from Russia and central Kazakhstan. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis., 2001, vol. 20, no. 12, pp. 903–905. doi: 10.1007/s10096-001-0638-4

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Штрек С.В., Рудаков Н.В., Шпынов С.Н., Санников А.В., Самойленко И.Е., Щучинова Л.Д., Троценко О.Е., Драгомерецкая А.Г., Матущенко Е.В., 2023

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 64788 от 02.02.2016.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах