СРАВНИТЕЛЬНАЯ ОЦЕНКА РАЗНЫХ БИОЛОГИЧЕСКИХ МОДЕЛЕЙ ДЛЯ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ПАТОГЕННЫХ СВОЙСТВ НЕКОТОРЫХ ВОЗБУДИТЕЛЕЙ ВНЕБОЛЬНИЧНЫХ ПНЕВМОНИЙ
- Авторы: Анисимова А.С.1, Аронова Н.В.1, Цимбалистова М.В.1, Павлович Н.В.1, Левченко А.С.1
-
Учреждения:
- ФКУЗ Ростовский-на-Дону противочумный институт Роспотребнадзора
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ
- Дата подачи: 28.03.2025
- Дата принятия к публикации: 30.06.2025
- URL: https://iimmun.ru/iimm/article/view/17905
- DOI: https://doi.org/10.15789/2220-7619-CAB-17905
- ID: 17905
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Резюме
В последние годы представляет интерес поиск альтернативных, т.н. суррогатных моделей для изучения биологических свойств различных микроорганизмов. Целью настоящей работы явилась оценка применения личинок Galleria mellonella для определения патогенного потенциала возбудителей внебольничных пневмоний по сравнению с моделью лабораторных животных (белые мыши). Все исследованные штаммы были выделены из мокроты больных на базе ФКУЗ Ростовский-на-Дону противочумный институт Роспотребнадзора и идентифицированы методом времяпролетной масс–спектрометрии. Вирулентность штаммов оценивали при экспериментальной инфекции белых мышей и личинок G. mellonella при заражении различными концентрациями микробов (КОЕ/мл). Как установлено, гипермукоидный вариант клебсиелл вызывал гибель белых мышей в дозе ≤103 КОЕ/мышь, тогда как классический морфотип был апатогенным даже в дозе 106 КОЕ/мышь. В тоже время, при инфицировании личинок двумя морфотипами достоверной разницы в патогенности исследуемых морфотипов выявить не удалось. Клинические изоляты семейства Enterobacteriacea не вызывали заболевания у белых мышей даже при дозе заражения 106 КОЕ/мышь. При этом E. coli и E. kobei обусловливали летальный процесс у (90%) G. mellonella. Исключение составил E. cloacae, который вызывал гибель лишь у 10% особей. В отличие от модели белых мышей, такие редко изолируемые условно–патогенные бактерии как Stenotrophomonas maltophilia, Chryseobacterium gleum, Rhizobium radiobacter, Pantoea agglomerans вызывали 100% гибель личинок. Изучение вирулентности разных видов стафилококков показало, что S. aureus и S. haemolyticus обладали высоким патогенным потенциалом для личинок, тогда как S. epidermidis и S. saprophyticus характеризовались достоверно меньшей способностью вызывать инфекцию. При использовании суррогатной модели на клинических изолятах различных видов грибов обнаружено, что наибольшей патогенностью для личинок характеризовались C. albicans, C. tropicalis и G. capitatum, а C. glabrata и C. krusei, рассматриваемые как более инвазивные виды вызывали лишь частичную гибель группы особей в отдаленные сроки. Таким образом, изучение патогенности различных видов микроорганизмов требует подбора наиболее адекватной биологической модели.
Об авторах
Анастасия Сергеевна Анисимова
ФКУЗ Ростовский-на-Дону противочумный институт Роспотребнадзора
Email: anisimova_as@antiplague.ru
SPIN-код: 6408-6399
Младший научный сотрудник, лаборатория природно-очаговых и зоонозных инфекций
Россия, 344002, Rostov-on-Don, M. Gorky str., 117/40Надежда Валентиновна Аронова
ФКУЗ Ростовский-на-Дону противочумный институт Роспотребнадзора
Email: aronova_nv@antiplague.ru
ORCID iD: 0000-0002-7772-9276
SPIN-код: 6471-8064
Кандидат биологических наук, ведущий научный сотрудник лаборатории природно-очаговых и зоонозных инфекций
Россия, 344002, г. Ростов-на-Дону, ул. М. Горького, 117/40Марина Викторовна Цимбалистова
ФКУЗ Ростовский-на-Дону противочумный институт Роспотребнадзора
Email: tsimbalistova_mv@antiplague.ru
SPIN-код: 9618-4261
Кандидат медицинских наук, старший научный сотрудник лаборатории природно-очаговых и зоонозных инфекций
Россия, 344002, г. Ростов-на-Дону, ул. М. Горького, 117/40Наталья Владимировна Павлович
ФКУЗ Ростовский-на-Дону противочумный институт Роспотребнадзора
Автор, ответственный за переписку.
Email: pavlovich_nv@antiplague.ru
SPIN-код: 2317-9985
Scopus Author ID: 7004882423
Доктор медицинских наук, главный научный сотрудник, и.о. начальника отдела природно-очаговых и зоонозных инфекций
Россия, , 344002, г. Ростов-на-Дону, ул. М. Горького, 117/40Анастасия Святославовна Левченко
ФКУЗ Ростовский-на-Дону противочумный институт Роспотребнадзора
Email: levchenko_as@antiplague.ru
Заведующий питомником (виварием)
Россия, 344002, г. Ростов-на-Дону, ул. М. Горького, 117/40Список литературы
- Анисимова А.С., Полеева М.В., Аронова Н.В., Цимбалистова М.В., Павлович Н.В. Oсобенности идентификации грибов рода Candida с помощью масс-спектрометрического анализа (MALDI-ToF MS) // Клиническая лабораторная диагностика. 2022. Т. 67, № 4. С. 244-249. Anisimova A.S., Poleeva M.V., Aronova N.V., Tsimbalistova M.V., Pavlovich N.V. Pecularities of Candida yeast identification by mass spectrometric analysis (MALDI-ToF MS). Klinicheskaya Laboratornaya Diagnostika (Russian Clinical
- Laboratory Diagnostics). 2022; 67 (4): 244-249 (in Russ.) DOI: https://dx.doi.org/10.51620/0869-2084-2022-67-4-244-249
- Анисимова А.С., Павлович Н.В., Аронова Н.В., Цимбалистова М.В., Гудуева Е.Н., Пасюкова Н.И., Теплякова Е.Д., Носков А.К. Биологические свойства и антибиотикорезистентность Klebsiella pneumoniae и её роль в этиологической структуре возбудителей внебольничных пневмоний // Антибиотики и Химиотерапия. 2023. Т. 68, № 5-6. С. 11-18. Anisimova A. S., Pavlovich N. V., Aronova N. V., Tsimbalistova M. V., Gudueva E. N., Pasyukova N. I., Teplyakova E. D., Noskov A. K. Biological properties and antibiotic resistance of Klebsiella pneumoniae and its role in the etiological structure of community-acquired pneumonia pathogens. Antibiotiki i Khimioter = Antibiotics and Chemotherapy. 2023; 68 (5–6): 11–18. DOI: https://doi.org/10.37489/0235-2990-2023-68-5-6-11-18
- Аронова Н.В., Павлович Н.В., Цимбалистова М.В., Полеева М.В., Анисимова А.С., Водопьянов С.О., Носков А.К. Видовое разнообразие и маркеры резистентности дрожжей рода Candida у коронапозитивных и коронанегативных больных с внебольничными пневмониями // Антибиотики и Химиотерапия. 2021. Т. 66, № 7-8. С. 38-44. Aronova N.V., Pavlovich N.V., Tsymbalistova M.V., Poleeva M.V., Anisimova A.S., Vodopyanov S.O., Noskov A.K. Species Diversity And Resistance Markers of Candida Yeasts In COVID Positive and COVID Negative Patients With Community-Acquired Pneumonia. Antibiot Khimioter = Antibiotics and Chemotherapy. 2021; 66(7-8):38-44. (In Russ.) DOI: https://doi.org/10.37489/0235-2990-2021-66-7-8-38-44
- Большая российская энциклопедия https://bigenc.ru/c/patogennost-b0e100
- Гланц С. Медико-биологическая статистика. Пер. с англ. — М., Практика, 1998. — 459 с. Glants S.A. Medical and biological statistics. Translated from English. Moscow, Praktika, 1998. 459 p.
- Лабораторная диагностика внебольничных пневмоний: Методические указания МУК 4.2.3115-13. М. 2013. Laboratory diagnostics of community-acquired pneumonia: Methodological guidelines MUK 4.2.3115-13. Moscow, 2013.
- Лабораторная диагностика внебольничной пневмонии пневмококковой этиологии: Методические рекомендации МР 4.2.0114-16. М. 2016. Laboratory diagnostics of community-acquired pneumonia of pneumococcal etiology: Methodological recommendations MR 4.2.0114-16. Moscow, 2016.
- Салмова Ю.В., Никифорова Л.Р., Боровкова К.Е. Разработка модели бактериальной инфекции личинок Galleria mellonella (большая восковая моль // Лабораторные животные для научных исследований. 2022. Т. 3. С. 40–49. Salmova J.V., Nikiforova L.R., Borovkova К.E. Development of a bacterial infection model of Galleria mellonella larvae (greater wax moth). Laboratory Animals for Science. 2022; 3 40–49. DOI: https://doi.org/10.57034/2618723X-2022-03-05.
- Akinkunmi E.O., Adeyemi O.I., Igbeneghu O.A., Olaniyan E.O., Omonisi A.E., Lamikanra A. The pathogenicity of Staphylococcus epidermidis on the intestinal organs of rats and mice: an experimental investigation. BMC Gastroenterol., 2014, vol. 14, pp. 126. – doi: 10.1186/1471-230X-14-126
- Baumans V. Science-based assessment of animal welfare: laboratory animals. Rev. Sci. Tech., 2005, vol. 24, no. 2, pp. 503-13. – https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/16358504/
- Champion O.L., Wagley S., Titball R.W. Galleria mellonella as a model host for microbiological and toxin research. Virulence, 2016, vol. 7, no. 7, pp. 840–845. – doi: 10.1080/21505594.2016.1203486
- Curtis A., Binder U., Kavanagh K. Galleria mellonella larvae as a model for investigating fungal-host interactions. Front. Fungal. Biol., 2022, vol. 3, pp. 893494. – doi: 10.3389/ffunb.2022.893494
- Cutuli M.A., Petronio P.G., Vergalito F., Magnifico I., Pietrangelo L., Venditti N., Di Marco R. Galleria mellonella as a consolidated in vivo model hosts: new developments in antibacterial strategies and novel drug testing. Virulence, 2019, vol. 10, no. 1, pp. 527–541. – doi: 10.1080/21505594.2019.1621649
- Eisemann C.H., Jorgensen W.K., Merritt D.J., Rice M.J., Cribb B.W., Webb P.D., Zalucki M.P. Do insects feel pain? — A biological view. Experientia, 1984, vol. 40, pp. 164–167. – doi: 10.1007/BF01963580
- García-Lara J., Needham A. J., Foster S. J. Invertebrates as animal models for Staphylococcus aureus pathogenesis: a window into host–pathogen interaction. FEMS. Immunol. Med. Microbiol., 2005, vol. 43, no. 3, pp. 311–323. – doi: 10.1016/j.femsim.2004.11.003
- Giammarino A., Bellucci N., Angiolella L. Galleria mellonella as a model for the study of fungal pathogens: advantages and disadvantages. Pathogens., 2024, vol. 13, no. 3, pp. 233. – doi: 10.3390/pathogens13030233
- Gunn B.A. Comparative virulence of human isolates of coagulase-negative staphylococci tested in an infant mouse weight retardation model. J. Clin. Microbiol., 1989, vol. 27, no. 3, pp. 507-511. – doi: 10.1128/jcm.27.3.507-511.1989
- Hassan Y., Chew S.Y., Than L.T.L. Candida glabrata: pathogenicity and resistance mechanisms for adaptation and survival. J. Fungi. (Basel)., 2021, vol. 7, no. 8, pp. 667. – doi: 10.3390/jof7080667
- Jamiu A.T., Albertyn J., Sebolai O.M., Pohl C.H. Update on Candida krusei, a potential multidrug-resistant pathogen. Med. Mycol., 2021, vol. 59, no. 1, pp. 14-30. – doi: 10.1093/mmy/myaa031
- Kavanagh K., Sheehan G. The use of Galleria mellonella larvae to identify novel antimicrobial agents against fungal species of medical interest. J. Fungi. (Basel), 2018, vol. 4, no. 3, pp. 113. – doi: 10.3390/jof4030113
- Lemaitre B., Hoffmann J. The host defense of Drosophila melanogaster. Annu. Rev. Immunol., 2007, vol. 25, pp. 697-743. – doi: 10.1146/annurev.immunol.25.022106.141615.
- Liang H., Wang Y., Liu F., Duan G., Long J., Jin Y., Chen S., Yang H. The application of rat models in Staphylococcus aureus infections. Pathogens., 2024, vol. 13, no. 6, pp. 434. – doi: 10.3390/pathogens13060434
- Mai D., Wu A., Li R., Cai D., Tong H., Wang N., Tan J. Identification of hypervirulent Klebsiella pneumoniae based on biomarkers and Galleria mellonella infection model. BMC. Microbiol., 2023, vol. 23, no 1, pp. 369. – doi: 10.1186/s12866-023-03124-0
- Ménard G., Rouillon A., Cattoir V., Donnio P.Y. Galleria mellonella as a suitable model of bacterial infection: past, present and future. Front. Cell. Infect. Microbiol., 2021, no. 11, pp. 782733. – doi: 10.3389/fcimb.2021.782733
- Nathan S. New to Galleria Mellonella. Virulence, 2014, vol. 5, no. 3, pp. 371–374. – doi: 10.4161/viru.28338
- Pereira T.C., de Barros P.P., Fugisaki L.R.O., Rossoni R.D., Ribeiro F.C., de Menezes R.T., Junqueira J.C., Scorzoni L. Recent advances in the use of Galleria mellonella model to study immune responses against human pathogens. J. Fungi. (Basel), 2018, vol. 4, no. 4, pp. 128. – doi: 10.3390/jof4040128
- Pereira M.F., Rossi C.C., da Silva G.C., Rosa J.N., Bazzolli D.M.S. Galleria mellonella as an infection model: an in-depth look at why it works and practical considerations for successful application. Pathog. Dis., 2020, vol. 78, no. 8, pp. ftaa056. – doi: 10.1093/femspd/ftaa056
- Qin M., Chen P., Deng B., He R., Wu Y., Yang Y., Deng W., Ding X., Yang F., Xie C., Yang Y., Tian G.B. The emergence of a multidrug-resistant and pathogenic ST42 lineage of Staphylococcus haemolyticus from a hospital in China. Microbiol. Spectr., 2022 , vol. 10, no. 3, pp. e0234221. – doi: 10.1128/spectrum.02342-21
- Richmond J. The 3rs - Past, Present and Future. Scand. J. Lab. Anim. Sci., 2000, vol. 27, no. 2, pp. 84–92. – doi: 10.23675/sjlas.v27i2.19
- Russell, W. M. S., Burch, R. L., & Hume, C. W. (1959). The principles of humane experimental technique (Vol. 238). London: Methuen – https://www.semanticscholar.org/paper/The-Principles-of-Humane-Experimental-Technique-Russell-Burch/7fe3176121a3885e484eb154c381139bc6c2312d
- Russo T.A., MacDonald U. The Galleria mellonella infection model does not accurately differentiate between hypervirulent and classical Klebsiella pneumoniae. mSphere., 2020, vol. 5, no. 1, pp. e00850-19. – doi: 10.1128/mSphere.00850-19
- Serrano I., Verdial C., Tavares L., Oliveira M. The virtuous Galleria mellonella model for scientific experimentation. Antibiotics (Basel), 2023, vol. 12, no. 3, pp. 505. – doi: 10.3390/antibiotics12030505
- Sheehan G., Garvey A., Croke M., Kavanagh K. Innate humoral immune defences in mammals and insects: The same, with differences? Virulence, 2018, vol. 9, no. 1, pp. 1625-1639. – doi: 10.1080/21505594.2018.1526531
- Tannenbaum J., Bennett B.T. Russell and Burch's 3Rs then and now: the need for clarity in definition and purpose. J. Am. Assoc. Lab. Anim. Sci., 2015, vol. 54, no. 2, pp. 120-132. – https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC4382615/
- Tsai C.J.-Y., Loh J.M.S., Proft T. Galleria mellonella infection models for the study of bacterial diseases and for antimicrobial drug testing. Virulence, 2016, vol. 7, no. 3, pp. 214–229. – doi: 10.1080/21505594.2015.1135289
- Wojda I., Staniec B., Sułek M., Kordaczuk J. The greater wax moth Galleria mellonella: biology and use in immune studies. Pathog. Dis., 2020, vol. 78, no. 9, pp. ftaa057. – doi: 10.1093/femspd/ftaa057
Дополнительные файлы
