Функциональная активность моноцитов крови в ответ на метициллинрезистентные штаммы Staphylococcus aureus
- Авторы: Коленчукова О.А.1,2, Сарматова Н.И.2, Мошев А.В.1
-
Учреждения:
- НИИ медицинских проблем Севера ФИЦ КНЦ СО РАН
- Институт биологии и биотехнологии Сибирского федерального университета
- Выпуск: Том 10, № 3 (2020)
- Страницы: 551-557
- Раздел: КРАТКИЕ СООБЩЕНИЯ
- Дата подачи: 02.08.2019
- Дата принятия к публикации: 14.03.2020
- Дата публикации: 01.06.2020
- URL: https://iimmun.ru/iimm/article/view/1181
- DOI: https://doi.org/10.15789/2220-7619-PAO-1181
- ID: 1181
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Цель: оценка фагоцитарной активности моноцитов крови при воздействии метициллинрезистентных штаммов Staphylococcus aureus относительно чувствительных штаммов. Объекты: моноциты крови, выделенные у 25 практически здоровых людей в возрасте от 25 до 45 лет и штаммы S. aureus устойчивые и чувствительные к действию оксациллина (метициллина) (MRSA/MSSA) в виде живой суспензии в концентрации 106 КОЕ/мл для индукции фагоцитов. Материалы и методы. Исследование фагоцитарной активности моноцитов проводили методом проточной цитометрии с использованием прямой иммунофлуоресценции цельной периферической крови с использованием моноклональных антител (Beckman Coulter, США), в следующей панели: CD14-PE/CD45-ECD/HLA-DR-PC5/CD16-PC7. Исследование интенсивности «респираторного взрыва» моноцитов осуществляли через определение активности люцигенин- и люминол-зависимой спонтанной и индуцированной хемилюминесценции. Результаты и обсуждение. В результате обнаружено, что при исследовании люминол-зависимой хемилюминесценции моноцитов в ответ на индукцию MRSA относительно MSSA, было выявлено снижение площади кривой в 3,5 раза. В люцигенин-зависимом процессе интенсивность хемилюминесценции при воздействии MRSA относительно MSSA снижена в 6 раз. Индекс активации (ИА) при воздействии MRSA относительно MSSA снижен в 1,1 раза. Снижение ИА доказывает низкий выброс АФК моноцитами в ответ на индукцию MRSA. В результате исследования кислороднезависимого фагоцитоза моноцитов в ответ на воздействие MRSA относительно MSSA было обнаружено снижение фагоцитарного числа, при этом фагоцитарный индекс достоверно повышался. Оценка активности субпопуляционного состава моноцитов при воздействии штаммов MRSA относительно MSSA показала увеличение фагоцитарного индекса субпопуляций CD14lowCD16+-моноцитов и CD14+CD16+-клеток в 1,5 раза, субпопуляций CD14+CD16–- моноцитов в 3 раза, при этом фагоцитарное число субпопуляций моноцитов CD14lowCD16+, CD14+CD16+ и CD14+CD16– были снижены (1,4; 1,5; 4 раза соответственно). Заключение. Таким образом, субпопуляции моноцитов в отношении MRSA проявляют разную степень активизации, при повышенной интенсивности «респираторного взрыва». Также можно отметить, что классический тип моноцитов CD14+CD16– в ответ на антиген активируется быстрее при низком фагоцитарном эффекте. Моноциты субпопуляций CD14+CD16+ и CD14lowCD16+ при низкой скорости ответа на MRSA фагоцитируют эффективнее.
Ключевые слова
Об авторах
О. А. Коленчукова
НИИ медицинских проблем Севера ФИЦ КНЦ СО РАН;Институт биологии и биотехнологии Сибирского федерального университета
Автор, ответственный за переписку.
Email: kalina-chyikova@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-9552-447X
Коленчукова Оксана Александровна, доктор биологических наук, доцент, ведущий научный сотрудник лаборатории молекулярно-клеточной физиологии и патологии ФГБНУ НИИ медицинских проблем Севера
660022, г. Красноярск, ул. Партизана Железняка, 3г
РоссияН. И. Сарматова
Институт биологии и биотехнологии Сибирского федерального университета
Email: sarmatova@mail.ru
Кандидат биологических наук, доцент кафедры биотехнологии
Красноярск
РоссияА. В. Мошев
НИИ медицинских проблем Севера ФИЦ КНЦ СО РАН
Email: kinger1@mail2000.ru
Научный сотрудник лаборатории клеточно-молекулярной физиологии и патологии
Красноярск
РоссияСписок литературы
- Коленчукова О.А., Игнатова И.А., Смирнова С.В., Капустина Т.А., Кин Т.Н. Особенности микрофлоры слизистой оболочки носа у больных аллергическим риносинуситом // Вестник оториноларингологии. 2008. Т. 5. С. 33–36.
- Коленчукова О.А., Сарматова Н.И., Механизмы воздействия устойчивых к метициллину штаммов Staphylococcus aureus на функциональное состояние нейтрофильных гранулоцитов // Антибиотики и химиотерапия. 2014. Т. 59, № 11–12. С. 20–23.
- Appleby L.J., Nausch N., Midzi N., Mduluza T., Allen J.E., Mutapi F. Sources of heterogeneity in humanmonocyte subsets. Immunol. Let., 2013, vol. 1, no. 152, pp. 32–41. doi: 10.1016/j.imlet.2013.03.004
- Chen Y., Lu S., Zhang Y., Yu J., Deng L., Chen H., Zhang Y., Zhou N., Yuan K., Yu L., Xiong Z., Gui X., Yu Y., Min W. TLR2 agonist Pam3CSK4 enhances the antibacterial functions of GM-CSF induced neutrophils to methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Microb. Pathog., 2019, vol. 130, pp. 204–212. doi: 10.1016/j.micpath.2019.02.030
- Flack C.E., Zurek O.W., Meishery D.D., Pallister K.B., Malone C.L., Horswill A.R., Voyich J.M. Differential regulation of staphylococcal virulence by the sensor kinase SaeS in response to neutrophil-derived stimuli. Proc. Natl Acad. Sci. USA, 2014, vol. 13, no. 111, pp. 19–25. doi: 10.1073/pnas.1322125111
- Gordon S. Targeting a monocyte subset to reduce inflammation. Circ. Res., 2012, vol. 12, no. 110, pp. 1546–1548. doi: 10.1161/RES.0b013e31825ec26d
- Hristov M., Schmitz S., Nauwelaers F., Weber C. A flow cytometric protocol for enumeration of endothelialprogenitor cells and monocyte subsets in human blood. J. Immunol. Methods, 2012, vol. 1–2, no. 381, pp. 9–13. doi: 10.1016/j.jim.2012.04.003
- Kim H.K., Cheng A.G., Kim H.Y., Missiakas D.M., Schneewind O. Nontoxigenic protein A vaccine for methicillin-resistant Staphylococcus aureus infections in mice. J. Exp. Med., 2010, vol. 207, no. 9, pp. 1863–1870. doi: 10.1084/jem.20092514
- Krogh A.Kh., Haaber J., Bochsen L., Ingmer H., Kristensen A.T. Aggregating resistant Staphylococcus aureus induces hypocoagulability, hyper fibrinolysis, phagocytosis, and neutrophil, monocyte, and lymphocyte binding in canine whole blood. Vet. Clin. Pathol., 2018, vol. 47, no. 4, pp. 560–574. doi: 10.1111/vcp.12679
- Kolonitsiou F., Papadimitriou-Olivgeris M., Spiliopoulou A., Drougka E., Jelastopulu E., Anastassiou E.D., Spiliopoulou I. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus ST80 induce lower cytokine production by monocytes as compared to other sequence types. Front Microbiol., 2019, vol. 9: 3310. doi: 10.3389/fmicb.2018.03310
- Lauvau G., Chorro L., Spaulding E., Soudja S.M. Inflammatory monocyte effector mechanisms. Cell Immunol., 2014, vol. 1–2, no. 291, pp. 32–40. doi: 10.1016/j.cellimm.2014.07.007
- Luider J., Cyfra M., Johnson P., Auer I. Impact of the new Beckman Coulter Cytomics FC 500 5-color flowcytometer on a regional flow cytometry clinical laboratory service. Lab. Hematol., 2004, vol. 10, pp. 102–108. doi: 10.1532/LH96.04121
- Maecker H., McCoy P., Nussenblatt R. Standardizing immunophenotyping for the human immunologyproject. Nat. Rev. Immunol., 2012, vol. 12, pp. 191–200. doi: 10.1038/nri3158
- Nocca G., De Sole P., Gambarini G., De Palma F., Parziale V., Giardina B., Lupi A. Alteration of monocyticcell oxidative burst caused by methacrylic monomers present in dental materials: a chemiluminescence study. Luminescence., 2006, vol. 3, no. 21, pp. 202–206. doi: 10.1002/bio.909
- Palmqvist N., Foster T., Tarkowski A., Josefsson E. Protein A is a virulence factor in Staphylococcus aureus arthritis and septic death. Microbial Pathogenesis, 2002, vol. 5, no. 33, pp. 239–249. doi: 10.1006/mpat.2002.0533
- Shahkarami F., Rashki A., Rashki Ghalehnoo Z., Jundishapur J. Susceptibility and plasmid profiles of methicillin-resistant Staphylococcus aureus and methicillin-susceptible S. aureus. Microbiol., 2014, vol. 7, no. 7, pp. 37–42.
- Streh C., Fangradt M., Fearon U., Gaber T., Buttgereit F., Veale D.J. Hypoxia: how does the monocytemacrophagesystem respond to changes in oxygen availability? J. Leukoc. Biol., 2014, vol. 2, no. 95, pp. 233–241. doi: 10.1189/jlb.1212627