<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE root>
<article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/" article-type="other" dtd-version="1.2" xml:lang="en"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">Russian Journal of Infection and Immunity</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="en">Russian Journal of Infection and Immunity</journal-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>Инфекция и иммунитет</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn publication-format="print">2220-7619</issn><issn publication-format="electronic">2313-7398</issn><publisher><publisher-name xml:lang="en">SPb RAACI</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="publisher-id">1181</article-id><article-id pub-id-type="doi">10.15789/2220-7619-PAO-1181</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="en"><subject>SHORT COMMUNICATIONS</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="ru"><subject>КРАТКИЕ СООБЩЕНИЯ</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="article-type"><subject></subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title xml:lang="en">Phagocytic activity of blood monocytes in response to methicillin-resistant strains of Staphylococcus aureus</article-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>Функциональная активность моноцитов крови в ответ на метициллинрезистентные штаммы Staphylococcus aureus</trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0001-9552-447X</contrib-id><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Kolenchukova</surname><given-names>O. A.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Коленчукова</surname><given-names>О. А.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p><bold>Kolenchukova Oksana A</bold>., PhD, MD (Biology), Associate Professor, Leading Researcher, Laboratory of Molecular Cell Physiology and Pathology, Scientific Research Institute of Medical Problems of the North</p><p><italic>660022, Krasnoyarsk, P. Zheleznyaka str., 3g</italic></p></bio><bio xml:lang="ru"><p><bold>Коленчукова Оксана Александровна</bold>, доктор биологических наук, доцент, ведущий научный сотрудник лаборатории молекулярно-клеточной физиологии и патологии ФГБНУ НИИ медицинских проблем Севера</p><p><italic>660022, г. Красноярск, ул. Партизана Железняка, 3г</italic></p></bio><email>kalina-chyikova@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/><xref ref-type="aff" rid="aff2"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Sarmatova</surname><given-names>N. I.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Сарматова</surname><given-names>Н. И.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>PhD (Biology), Associate Professor, Department of Biotechnology</p><p><italic>Krasnoyarsk</italic></p></bio><bio xml:lang="ru"><p>Кандидат биологических наук, доцент кафедры биотехнологии</p><p><italic>Красноярск</italic></p></bio><email>sarmatova@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff2"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Moshev</surname><given-names>A. V.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Мошев</surname><given-names>А. В.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>Researcher, Laboratory of Cellular and Molecular Physiology and Pathology</p><p><italic>Krasnoyarsk</italic></p></bio><bio xml:lang="ru"><p>Научный сотрудник лаборатории клеточно-молекулярной физиологии и патологии</p><p><italic>Красноярск</italic></p></bio><email>kinger1@mail2000.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib></contrib-group><aff-alternatives id="aff1"><aff><institution xml:lang="en">Scientific Research Institute of medical problems of the North (SRI MPN)</institution></aff><aff><institution xml:lang="ru">НИИ медицинских проблем Севера ФИЦ КНЦ СО РАН</institution></aff></aff-alternatives><aff-alternatives id="aff2"><aff><institution xml:lang="en">Krasnoyarsk Science Center of the Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences</institution></aff><aff><institution xml:lang="ru">Институт биологии и биотехнологии Сибирского федерального университета</institution></aff></aff-alternatives><pub-date date-type="pub" iso-8601-date="2020-08-07" publication-format="electronic"><day>07</day><month>08</month><year>2020</year></pub-date><volume>10</volume><issue>3</issue><issue-title xml:lang="en"/><issue-title xml:lang="ru"/><fpage>551</fpage><lpage>557</lpage><history><date date-type="received" iso-8601-date="2019-08-02"><day>02</day><month>08</month><year>2019</year></date><date date-type="accepted" iso-8601-date="2020-03-14"><day>14</day><month>03</month><year>2020</year></date></history><permissions><copyright-statement xml:lang="en">Copyright ©; 2020, Kolenchukova O.A., Sarmatova N.I., Moshev A.V.</copyright-statement><copyright-statement xml:lang="ru">Copyright ©; 2020, Коленчукова О.А., Сарматова Н.И., Мошев А.В.</copyright-statement><copyright-year>2020</copyright-year><copyright-holder xml:lang="en">Kolenchukova O.A., Sarmatova N.I., Moshev A.V.</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="ru">Коленчукова О.А., Сарматова Н.И., Мошев А.В.</copyright-holder><ali:free_to_read xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/"/><license><ali:license_ref xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/">https://creativecommons.org/licenses/by/4.0</ali:license_ref></license></permissions><self-uri xlink:href="https://iimmun.ru/iimm/article/view/1181">https://iimmun.ru/iimm/article/view/1181</self-uri><abstract xml:lang="en"><p>Current study performed to estimate the phagocytic activity of blood monocytes of varying phenotypes exposed to MRSA and MSSA strains.  Objects: Blood monocytes were collected from 25 healthy adults (age: 25–45 years). Live suspensions of MRSA/MSSA strains were used at concentration of 106 colony-forming units (CFU)/mL.  Metods. Phagocytic functions were estimated by using fluorescein isothiocyanate (FITC)-labelled MRSA and MSSA strains followed by running flow cytometry on FC 500 series flow cytometer (Beckman Coulter, USA). Whole peripheral blood cells were directly labelled with immunofluorescently tagged monoclonal CD14-PE/CD45-ECD/HLA-DR-PC5/CD16-PC7 antibodies (Beckman Coulter, USA). Respiratory burst intensity was evaluated in monocytes by measuring activity of lucigeninand luminol-dependent spontaneous and induced chemiluminescence. Monocytes were induced by using live suspension of MRSA/MSSA strains at a concentration of 106 CFU/mL. Results and discussion. While studying luminol-dependent monocyte activities after exposure to MRSA vs. MSSA, it was observed a 3.5-fold decreased curve square, whereas lucigenin-dependent chemiluminescence was increased by 6-fold. Compared to MSSA exposure, index of activation (IA) was decreased by 1.1-fold in response to MRSA exposure that was confirmed by lowered release of reactive oxygen species (ROS) from monocytes in response to MRSA exposure. Moreover, IRSS increased by 1.3-fold upon MRSA exposure. Examining monocyte oxygen-independent phagocytosis against MRSA vs. MSSA revealed significantly increased phagocytic number and concomitantly decreased phagocytic index. An evaluation of the activities of various monocyte subsets in response to MRSA vs. MSSA revealed increased phagocytic index by 1.5-fold for CD14<sup>low</sup>CD16<sup>+</sup> and CD14<sup>+</sup>CD16<sup>+</sup> monocyte subsets as well as 3-fold for CD14<sup>+</sup>CD16<sup>–</sup> monocytes. Counts for all phagocytic subsets were decreased (1.4-, 1.5- and 4-fold for CD14<sup>low</sup>CD16<sup>+</sup>, CD14<sup>+</sup>CD16<sup>+</sup> and CD14<sup>+</sup>CD16– monocytes, respectively). To summarize, intensity of the respiratory burst was lowered upon MRSA exposure and percentage of monocyte subsets. Overall deficiency of superoxide anion production was observed in response to MRSA. In contrast, oxygen-independent event revealed phenotypic changes in frequency of peripheral blood monocytes upon MRSA exposure. We observed that CD14<sup>+</sup>CD16<sup>–</sup> classical monocytes were more rapidly activated. Conclusion. Thus, we concluded that CD14<sup>+</sup>CD16<sup>–</sup> monocytes became more rapidly activated but exhibited less effective phagocytosis, whereas CD14<sup>+</sup>CD16<sup>+</sup> and CD14<sup>low</sup>CD16<sup>+</sup> monocytes were more slowly activated and demonstrated stronger phagocytic activity.</p></abstract><trans-abstract xml:lang="ru"><p>Цель: оценка фагоцитарной активности моноцитов крови при воздействии метициллинрезистентных штаммов Staphylococcus aureus относительно чувствительных штаммов. Объекты: моноциты крови, выделенные у 25 практически здоровых людей в возрасте от 25 до 45 лет и штаммы S. aureus устойчивые и чувствительные к действию оксациллина (метициллина) (MRSA/MSSA) в виде живой суспензии в концентрации 106 КОЕ/мл для индукции фагоцитов. Материалы и методы. Исследование фагоцитарной активности моноцитов проводили методом проточной цитометрии с использованием прямой иммунофлуоресценции цельной периферической крови с использованием моноклональных антител (Beckman Coulter, США), в следующей панели: CD14-PE/CD45-ECD/HLA-DR-PC5/CD16-PC7. Исследование интенсивности «респираторного взрыва» моноцитов осуществляли через определение активности люцигенин- и люминол-зависимой спонтанной и индуцированной хемилюминесценции. Результаты и обсуждение. В результате обнаружено, что при исследовании люминол-зависимой хемилюминесценции моноцитов в ответ на индукцию MRSA относительно MSSA, было выявлено снижение площади кривой в 3,5 раза. В люцигенин-зависимом процессе интенсивность хемилюминесценции при воздействии MRSA относительно MSSA снижена в 6 раз. Индекс активации (ИА) при воздействии MRSA относительно MSSA снижен в 1,1 раза. Снижение ИА доказывает низкий выброс АФК моноцитами в ответ на индукцию MRSA. В результате исследования кислороднезависимого фагоцитоза моноцитов в ответ на воздействие MRSA относительно MSSA было обнаружено снижение фагоцитарного числа, при этом фагоцитарный индекс достоверно повышался. Оценка активности субпопуляционного состава моноцитов при воздействии штаммов MRSA относительно MSSA показала увеличение фагоцитарного индекса субпопуляций CD14<sup>low</sup>CD16<sup>+</sup>-моноцитов и CD14<sup>+</sup>CD16<sup>+</sup>-клеток в 1,5 раза, субпопуляций CD14<sup>+</sup>CD16<sup>–</sup>- моноцитов в 3 раза, при этом фагоцитарное число субпопуляций моноцитов CD14<sup>low</sup>CD16<sup>+</sup>, CD14<sup>+</sup>CD16<sup>+</sup> и CD14<sup>+</sup>CD16<sup>–</sup> были снижены (1,4; 1,5; 4 раза соответственно). Заключение. Таким образом, субпопуляции моноцитов в отношении MRSA проявляют разную степень активизации, при повышенной интенсивности «респираторного взрыва». Также можно отметить, что классический тип моноцитов CD14<sup>+</sup>CD16<sup>–</sup> в ответ на антиген активируется быстрее при низком фагоцитарном эффекте. Моноциты субпопуляций CD14<sup>+</sup>CD16<sup>+</sup> и CD14<sup>low</sup>CD16<sup>+</sup> при низкой скорости ответа на MRSA фагоцитируют эффективнее.</p></trans-abstract><kwd-group xml:lang="en"><kwd>phagocytosis</kwd><kwd>blood monocytes</kwd><kwd>MRSA</kwd><kwd>MSSA</kwd><kwd>chemiluminescence</kwd><kwd>respiratory explosion</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>фагоцитоз</kwd><kwd>моноциты крови</kwd><kwd>MRSA</kwd><kwd>MSSA</kwd><kwd>хемилюминесценция, респираторный взрыв.</kwd></kwd-group><funding-group/></article-meta></front><body></body><back><ref-list><ref id="B1"><label>1.</label><mixed-citation>1. Коленчукова О.А., Игнатова И.А., Смирнова С.В., Капустина Т.А., Кин Т.Н. Особенности микрофлоры слизистой оболочки носа у больных аллергическим риносинуситом // Вестник оториноларингологии. 2008. Т. 5. С. 33–36.</mixed-citation></ref><ref id="B2"><label>2.</label><mixed-citation>2. Коленчукова О.А., Сарматова Н.И., Механизмы воздействия устойчивых к метициллину штаммов Staphylococcus aureus на функциональное состояние нейтрофильных гранулоцитов // Антибиотики и химиотерапия. 2014. Т. 59, № 11–12. С. 20–23.</mixed-citation></ref><ref id="B3"><label>3.</label><mixed-citation>3. Appleby L.J., Nausch N., Midzi N., Mduluza T., Allen J.E., Mutapi F. Sources of heterogeneity in humanmonocyte subsets. Immunol. Let., 2013, vol. 1, no. 152, pp. 32–41. doi: 10.1016/j.imlet.2013.03.004</mixed-citation></ref><ref id="B4"><label>4.</label><mixed-citation>4. Chen Y., Lu S., Zhang Y., Yu J., Deng L., Chen H., Zhang Y., Zhou N., Yuan K., Yu L., Xiong Z., Gui X., Yu Y., Min W. TLR2 agonist Pam3CSK4 enhances the antibacterial functions of GM-CSF induced neutrophils to methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Microb. Pathog., 2019, vol. 130, pp. 204–212. doi: 10.1016/j.micpath.2019.02.030</mixed-citation></ref><ref id="B5"><label>5.</label><mixed-citation>5. Flack C.E., Zurek O.W., Meishery D.D., Pallister K.B., Malone C.L., Horswill A.R., Voyich J.M. Differential regulation of staphylococcal virulence by the sensor kinase SaeS in response to neutrophil-derived stimuli. Proc. Natl Acad. Sci. USA, 2014, vol. 13, no. 111, pp. 19–25. doi: 10.1073/pnas.1322125111</mixed-citation></ref><ref id="B6"><label>6.</label><mixed-citation>6. Gordon S. Targeting a monocyte subset to reduce inflammation. Circ. Res., 2012, vol. 12, no. 110, pp. 1546–1548. doi: 10.1161/RES.0b013e31825ec26d</mixed-citation></ref><ref id="B7"><label>7.</label><mixed-citation>7. Hristov M., Schmitz S., Nauwelaers F., Weber C. A flow cytometric protocol for enumeration of endothelialprogenitor cells and monocyte subsets in human blood. J. Immunol. Methods, 2012, vol. 1–2, no. 381, pp. 9–13. doi: 10.1016/j.jim.2012.04.003</mixed-citation></ref><ref id="B8"><label>8.</label><mixed-citation>8. Kim H.K., Cheng A.G., Kim H.Y., Missiakas D.M., Schneewind O. Nontoxigenic protein A vaccine for methicillin-resistant Staphylococcus aureus infections in mice. J. Exp. Med., 2010, vol. 207, no. 9, pp. 1863–1870. doi: 10.1084/jem.20092514</mixed-citation></ref><ref id="B9"><label>9.</label><mixed-citation>9. Krogh A.Kh., Haaber J., Bochsen L., Ingmer H., Kristensen A.T. Aggregating resistant Staphylococcus aureus induces hypocoagulability, hyper fibrinolysis, phagocytosis, and neutrophil, monocyte, and lymphocyte binding in canine whole blood. Vet. Clin. Pathol., 2018, vol. 47, no. 4, pp. 560–574. doi: 10.1111/vcp.12679</mixed-citation></ref><ref id="B10"><label>10.</label><mixed-citation>10. Kolonitsiou F., Papadimitriou-Olivgeris M., Spiliopoulou A., Drougka E., Jelastopulu E., Anastassiou E.D., Spiliopoulou I. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus ST80 induce lower cytokine production by monocytes as compared to other sequence types. Front Microbiol., 2019, vol. 9: 3310. doi: 10.3389/fmicb.2018.03310</mixed-citation></ref><ref id="B11"><label>11.</label><mixed-citation>11. Lauvau G., Chorro L., Spaulding E., Soudja S.M. Inflammatory monocyte effector mechanisms. Cell Immunol., 2014, vol. 1–2, no. 291, pp. 32–40. doi: 10.1016/j.cellimm.2014.07.007</mixed-citation></ref><ref id="B12"><label>12.</label><mixed-citation>12. Luider J., Cyfra M., Johnson P., Auer I. Impact of the new Beckman Coulter Cytomics FC 500 5-color flowcytometer on a regional flow cytometry clinical laboratory service. Lab. Hematol., 2004, vol. 10, pp. 102–108. doi: 10.1532/LH96.04121</mixed-citation></ref><ref id="B13"><label>13.</label><mixed-citation>13. Maecker H., McCoy P., Nussenblatt R. Standardizing immunophenotyping for the human immunologyproject. Nat. Rev. Immunol., 2012, vol. 12, pp. 191–200. doi: 10.1038/nri3158</mixed-citation></ref><ref id="B14"><label>14.</label><mixed-citation>14. Nocca G., De Sole P., Gambarini G., De Palma F., Parziale V., Giardina B., Lupi A. Alteration of monocyticcell oxidative burst caused by methacrylic monomers present in dental materials: a chemiluminescence study. Luminescence., 2006, vol. 3, no. 21, pp. 202–206. doi: 10.1002/bio.909</mixed-citation></ref><ref id="B15"><label>15.</label><mixed-citation>15. Palmqvist N., Foster T., Tarkowski A., Josefsson E. Protein A is a virulence factor in Staphylococcus aureus arthritis and septic death. Microbial Pathogenesis, 2002, vol. 5, no. 33, pp. 239–249. doi: 10.1006/mpat.2002.0533</mixed-citation></ref><ref id="B16"><label>16.</label><mixed-citation>16. Shahkarami F., Rashki A., Rashki Ghalehnoo Z., Jundishapur J. Susceptibility and plasmid profiles of methicillin-resistant Staphylococcus aureus and methicillin-susceptible S. aureus. Microbiol., 2014, vol. 7, no. 7, pp. 37–42.</mixed-citation></ref><ref id="B17"><label>17.</label><mixed-citation>17. Streh C., Fangradt M., Fearon U., Gaber T., Buttgereit F., Veale D.J. Hypoxia: how does the monocytemacrophagesystem respond to changes in oxygen availability? J. Leukoc. Biol., 2014, vol. 2, no. 95, pp. 233–241. doi: 10.1189/jlb.1212627</mixed-citation></ref></ref-list></back></article>
