Comparative analysis of the conservation of nucleoprotein immunogenic T-cell epitopes of master donor viruses for live and inactivated influenza vaccines
- Authors: Rak A.Y.1, Rudenkо L.G.1, Isakova-Sivak I.N.1
-
Affiliations:
- Institute of Experimental Medicine
- Issue: Vol 14, No 3 (2024)
- Pages: 601-608
- Section: SHORT COMMUNICATIONS
- Submitted: 26.07.2024
- Accepted: 26.07.2024
- Published: 28.07.2024
- URL: https://iimmun.ru/iimm/article/view/17743
- DOI: https://doi.org/10.15789/2220-7619-CAO-16660
- ID: 17743
Cite item
Full Text
Abstract
Antigen-specific T cells are an important part of antiviral responses, and modern influenza vaccines are designed to induce this mode of immunity. Live attenuated influenza vaccine (LAIV) is a potent inducer of T-cell immunity because of its ability to cause productive infection in the upper respiratory tract. Inactivated influenza vaccines (IIV) and novel vaccine candidates can also induce virus-specific T-cells when appropriate adjuvants are used. In this case, non-structural and intrinsic antigens of the master donor viruses, particularly nucleoprotein (NP), are the main targets for the development of T-cell immunity. The most commonly used donor strains for LAIVs and IIVs worldwide were derived from viruses isolated between 1933 and 1960. In this regard, the question of conservation of epitopes immunogenic for CD8⁺ T-lymphocytes (CTL-epitopes) in donor-derived NPs, i.e., the ability of cytotoxic T cells specific to the donor’s NP to recognize modern influenza A virus nucleoproteins, is relevant. The aim of the study was to evaluate the conservation of CTL-immunogenic NP epitopes of donors traditionally used to create LAIVs and IIVs. Materials and methods. Epitope NP analysis was performed for 1614 and 1767 strains of influenza A virus subtypes H1N1 and H3N2, respectively, which circulated in 2009–2023 (data from the NCBI Influenza Virus Database). Immune Epitope Database (IEDB, www.iedb.org), NetCTL’s built-in CTL-epitope prediction algorithm and NetChop proteolysis site predictor were used. CTL-epitopes were mapped to NPs of master donor viruses A/Leningrad/134/17/57 (H2N2), A/Ann Arbor/6/60 (H2N2), A/PR/8/34 (H1N1), and A/WSN/1933 (H1N1) using the CrustalO alignment algorithm in JalView 2.8.1 Software. The immunogenicity and conservation of selected epitopes were further evaluated using IEDB T-cell Immunogenicity Predictor and Epitope Conservancy Assay, respectively. Results. The majority of immunogenic CTL-epitopes of donor viruses proved to be non-conserved, i.e., not found in NPs of circulating influenza strains. Conversely, most CTL-immunogenic NP epitopes of modern viruses are absent in donor viruses and cannot be induced by vaccination with conventional vaccines. The data obtained indicate the need to actualize NP in vaccine composition by directed mutagenesis of the donor-derived NP gene or by introduction of the gene encoding NP of circulating influenza viruses into vaccine strains.
Full Text
Введение
Грипп является одной из наиболее распространенных в мире респираторных инфекций, вызываемой высококонтагиозным вирусным патогеном (чаще всего вирусами гриппа подтипа А) и часто характеризующейся осложненным течением. По данным ВОЗ, ежегодные эпидемии гриппа вызывают от 3 до 5 млн случаев тяжелой формы заболевания, смертность от которых достигает 22% [4].
Одним из наиболее эффективных средств борьбы с гриппозной инфекцией является вакцинопрофилактика, чаще всего осуществляемая с использованием таких инструментов, как сплит-, рекомбинантные и инактивированные (ИГВ) вакцины, в том числе на основе наночас тиц, а также живая гриппозная вакцина (ЖГВ). Показано, что в отличие от других способов вакцинации, иммунизация ЖГВ индуцирует как местный, так и Т-клеточный гетеросубтипический иммунный ответ к внутреннему белку вириона — нуклеопротеину (NP), наиболее богатому иммуногенными эпитопами для CD8⁺ Т-лимфоцитов компоненту вируса гриппа [3].
Штаммы, составляющие основу сезонных ЖГВ и ИГВ, являются продуктами генетической реассортации циркулирующих вирусных вариантов и вакцинных доноров [9]. Как правило, их геном представлен сегментами, кодирующими поверхностные белки (гемагглютинин и нейраминидазу) актуальных эпидемических вирусов гриппа, а также генами неструктурных белков и внутренних компонентов вириона (в частности, NP антигена), наследуемыми от вакцинного донора. Наиболее популярными донорными штаммами для создания гриппозных вакцин во всем мире являются вирусы 1933–1960 гг. выделения, а именно А/WSN/1933 (H1N1) (используемый для получения современных вакцин на основе наночастиц), A/PR/8/34 (H1N1) (донор высокой репродуктивности для создания ИГВ), А/Ленинград/134/17/57 (H2N2), лицензированный для производства ЖГВ [7], а также донор аттенуации для американской ЖГВ A/Ann Arbor/6/60 (H2N2), аминокислотный состав NP белка которых мог значительно отдалиться от такового у циркулирующих вирусов за более чем 60 лет. В случае если возникающие в NP замены затрагивают иммуногенные эпитопы, которые в комплексе с MHC I служат активаторами цитотоксических CD8⁺ Т-клеток (ЦТЛ-эпитопы), различия в составе «донорного» и «эпидемического» NP антигенов могут снижать эффективность стимуляции Т-клеточного иммунитета с помощью вакцин, содержащих антигенно устаревший белок нуклеокапсида.
Целью данного исследования стал анализ консервации in silico ЦТЛ-иммуноэпитопов NP антигена вирусов гриппа А, чаще всего используемых в качестве доноров для разработки и производства кросс-протективных вакцин (А/Ленинград/134/17/57 (H2N2), A/Ann Arbor/6/60 (H2N2), A/PR/8/34 (H1N1) и А/WSN/1933 (H1N1)) в составе NP вирусов гриппа А (H1N1 и H3N2), циркулировавших в человеческой популяции с 2009 по 2023 год.
Материалы и методы
Для проведения иммуноэпитопного анализа из базы данных NCBI Influenza Virus Sequence Database [11] были отобраны аминокислотные последовательности NP антигена вакцинных доноров (А/Ленинград/134/17/57 (H2N2), A/Ann Arbor/6/60 (H2N2), A/PR/8/34 (H1N1) и А/WSN/1933 (H1N1), а также уникальные последовательности NP 1614 современных вирусов гриппа А подтипа H1N1 и 1767 — подтипа H3N2, циркулировавших среди людей в 2009–2023 гг. Из рассмотрения были исключены лабораторные штаммы, а также полностью гомологичные последовательности, выявленные при выравнивании алгоритмом ClustalO [8]. Поиск ЦТЛ-эпитопов в последовательностях NP вакцинных доноров проводили в базе данных Immune Epitope Database (IEDB, www.iedb.org) с использованием алгоритма предсказания NetCTL, поэтапно для всех HLA-супертипов [5]. Параметры вклада С-концевого протеолиза, эффективности TAP-опосредованного транспорта пептидов в просвет эндоплазматического ретикулума (с участием транспортера, ассоциированного с процессингом антигена) и порога отбора эпитопов составляли 0,15, 0,05 и 0,75 соответственно. Затем последовательности NP вакцинных доноров были проанализированы на наличие протеолитических сайтов с помощью инструмента NetChop [6] и метода C-terminal proteolysis assay 3.0 при пороговом значении 0,5. Картирование ЦТЛ-эпитопов на последовательности NP вирусов гриппа А с учетом локализации сайтов протеолиза проводили с помощью программы JalView 2.8.1. Эпитопы, имею щие не более одного сайта протеолиза, были включены в дальнейший анализ. Предсказание иммуногенности отобранных ЦТЛ-эпитопов проводили в IEDB с использованием алгоритма предсказания Immunogenicity predictor tool [2]. Для дальнейшего исследования отбирали эпитопы с баллом иммуногенности более 0. Анализ консервации эпитопов проводили в IEDB с использованием соответствующего алгоритма Epitope Conservancy Assay [1] в режиме оценки линейных эпитопов с порогом идентичности последовательностей, равным 100. Степень консервативности эпитопов выражали как процент вирусных штаммов с полностью гомологичными последовательностями среди всех штаммов вируса гриппа А, включенных в анализ.
Результаты и обсуждение
Данные, представленные в табл. 1, показывают, что только 2 из 12 отобранных ЦТЛ-эпитопов (16,7%) для NP вакцинного донора А/WSN/1933 (H1N1) оказались высококонсервативными. Примечательно, что половина отобранных иммуногенных эпитопов была выявлена только у 0,1–2,0% циркулирующих в настоящее время вирусов гриппа А.
Таблица 1. Консервация экспериментально определенных и предсказанных ЦТЛ-эпитопов NP вакцинного донора А/WSN/1933 (H1N1) у вирусов гриппа А, циркулировавших в человеческой популяции с 2009 по 2023 год
Table 1. Conservation of experimentally defined and predicted CTL-epitopes of the NP of vaccine donor A/WSN/1933 (H1N1) in influenza A viruses circulating in the human population from 2009 to 2023
Эпитопы NP вируса гриппа А/WSN/1933 (H1N1) NP epitopes of influenza virus А/WSN/1933 (H1N1) | Консервация ЦТЛ- эпитопов NP в штаммах вируса гриппа А (2009–2023), % Conservancy of NP CTL-epitopes in influenza A strains (2009–2023), % | Предсказание ЦТЛ- иммуногенности эпитопа, баллы Prediction of epitope CTL-immunogenicity, score | |||
Номер эпитопа в IEDB Epitope IEDB ID | Позиция на транскрипте NP Position in NP transcript | Связывающий эпитоп HLA-супертип Epitope-binding HLA supertype | Аминокислотная последовательность Amino acid sequence | ||
p | 174–182 | B27 | RRSGAAGAA | 98,13 | 0,11 |
p | 317–325 | A3 | RPNENPAHK | 97,86 | 0,13 |
41691 | 32–40 | A1, A26 | MIDGIGRFY | 52,31 | 0,32 |
11696 | 114–122 | B44 | EEIRRIWRQ | 53,30 | 0,49 |
p | 113–121 | A3 | KEEIRRIWR | 53,27 | 0,51 |
p | 30–38 | A3 | GKMIDGIGR | 50,99 | 0,26 |
p | 211–219 | A26 | NGRRTRIAY | 1,97 | 0,29 |
p | 213–221 | B27 | RRTRIAYER | 1,97 | 0,29 |
p | 214–222 | B7 | RTRIAYERM | 1,97 | 0,30 |
19421 | 17–25 | B44 | GERQNATEI | 1,53 | 0,02 |
p | 125–133 | B39 | NGDDATAGL | 1,40 | 0,16 |
p | 245–253 | B27, B39 | SRNPGNAEF | 0,10 | 0,11 |
Примечание. p — эпитоп предсказан.
Note. p — epitope is predicted.
Таблица 2. Консервация экспериментально определенных и предсказанных ЦТЛ-эпитопов NP вакцинного донора A/PR/8/34 (H1N1) у вирусов гриппа А, циркулировавших в человеческой популяции с 2009 по 2023 год
Table 2. Conservation of experimentally defined and predicted CTL-epitopes of the NP of vaccine donor A/PR/8/34 (H1N1) in influenza A viruses circulating in the human population from 2009 to 2023
Эпитопы NP вируса гриппа A/PR/8/34 (H1N1) NP epitopes of influenza virus A/PR/8/34 (H1N1) | Консервация ЦТЛ- эпитопов NP в штаммах вируса гриппа А (2009–2023), % Conservancy of NP CTL-epitopes in influenza A strains (2009–2023), % | Предсказание ЦТЛ- Иммуногенности эпитопа, баллы Prediction of epitope CTL-immunogenicity, score | |||
Номер эпитопа в IEDB Epitope IEDB ID | Позиция на транскрипте NP Position in NP transcript | Связывающий эпитоп HLA-супертип Epitope-binding HLA supertype | Аминокислотная последовательность Amino acid sequence | ||
p | 333–341 | A24, B39 | CHSAAFEDL | 98,13 | 0,23 |
p | 174–182 | B27 | RRSGAAGAA | 98,13 | 0,11 |
p | 317–325 | A3 | RPNENPAHK | 97,86 | 0,13 |
11696 | 114–122 | B44 | EEIRRIWRQ | 53,30 | 0,49 |
63408 | 23–31 | A3, B44 | TEIRASVGK | 51,63 | 0,03 |
164131 | 32–40 | A3, B62 | MIGGIGRFY | 44,72 | 0,32 |
19421 | 17–25 | B44 | GERQNATEI | 1,53 | 0,02 |
p | 125–133 | B39 | NGDDATAGL | 1,40 | 0,16 |
p | 211–219 | A26, B62 | NGRKTRIAY | 1,36 | 0,02 |
p | 213–221 | B27 | RKTRIAYER | 1,29 | 0,29 |
p | 31–39 | A2, A24 | KMIGGIGRF | 0,44 | 0,29 |
p | 30–38 | A3 | GKMIGGIGR | 0,44 | 0,27 |
Примечание. p — эпитоп предсказан.
Note. p — epitope is predicted.
Аналогичные результаты были получены для A/PR/8/34 (H1N1), где только 3 из 13 предсказанных NP-эпитопов (23,1%) сохранились практически у всех циркулирующих в настоящее время вирусов (табл. 2).
Как и ожидалось, большая доля ЦТЛ-эпи топов NP донора аттенуации А/Ленин град/ 134/17/57 (H2N2), сохраняется у современных вирусов H1N1 и H3N2 (5 из 12, 41,7%), поскольку этот вирус был выделен на два десятилетия позже, чем первые два рассмотренных вакцинных донора (табл. 3).
Таблица 3. Консервация экспериментально определенных и предсказанных ЦТЛ-эпитопов NP донора аттенуации А/Ленинград/134/17/57 (H2N2) у вирусов гриппа А, циркулировавших в человеческой популяции с 2009 по 2023 год
Table 3. Conservation of experimentally defined and predicted CTL-epitopes of the NP of attenuation donor А/Leningrad/134/17/57 (H2N2) in influenza A viruses circulating in the human population from 2009 to 2023
Эпитопы NP вируса гриппа A/Ленинград/134/17/57 (H2N2) NP epitopes of influenza virus A/Ленинград/134/17/57 (H2N2) | Консервация ЦТЛ- эпитопов NP в штаммах вируса гриппа А (2009–2023), % Conservancy of NP CTL-epitopes in influenza A strains (2009–2023), % | Предсказание ЦТЛ- иммуногенности эпитопа, баллы Prediction of epitope CTL-immunogenicity, score | |||
Номер эпитопа в IEDB Epitope IEDB ID | Позиция на транскрипте NP Position in NP transcript | Связывающий эпитоп HLA- супертип Epitope-binding HLA supertype | Аминокислотная последовательность Amino acid sequence | ||
167950 | 198–206 | A24, B27 | KRGINDRNF | 99,01 | 0,20 |
53890 | 199–207 | B58 | RGINDRNFW | 99,01 | 0,17 |
p | 174–182 | B27 | RRSGAAGAA | 98,13 | 0,11 |
p | 245–253 | B27, B39 | SRNPGNAEI | 96,43 | 0,11 |
p | 250–258 | A1, A3 | NAEIEDLIF | 96,36 | 0,35 |
p | 114–122 | B44 | EEIRRIWRQ | 53,30 | 0,49 |
п p | 276–284 | B7 | LPACVYGPA | 2,11 | 0,02 |
19421 | 17–25 | B44 | GERQNATEI | 1,53 | 0,02 |
p | 125–133 | B39 | NGDDATAGL | 1,40 | 0,16 |
p | 211–219 | A26, B62 | NGRKTRIAY | 1,36 | 0,02 |
p | 333–341 | A24 | CNSAAFEDL | 1,33 | 0,23 |
p | 213–221 | B27 | RKTRIAYER | 1,29 | 0,29 |
Примечание. p — эпитоп предсказан.
Note. p — epitope is predicted.
Сходные данные были получены при анализе консервативности ЦТЛ-эпитопов NP антигена донора аттенуации А/Ann Arbor/6/60 (H2N2), что ожидаемо ввиду практически совпадающего времени выделения и подтипа данного вируса с таковым у А/Ленинград/134/17/57 (H2N2) (табл. 4).
Таблица 4. Консервация экспериментально определенных и предсказанных ЦТЛ-эпитопов NP донора аттенуации А/Ann Arbor/6/60 (H2N2) у вирусов гриппа А, циркулировавших в человеческой популяции с 2009 по 2023 год
Table 4. Conservation of experimentally defined and predicted CTL-epitopes of the NP of attenuation donor А/Ann Arbor/6/60 (H2N2) in influenza A viruses circulating in the human population from 2009 to 2023
Эпитопы NP вируса гриппа A/Ann Arbor/6/60 (H2N2) NP epitopes of influenza virus A/Ann Arbor/6/60 (H2N2) | Консервация ЦТЛ- эпитопов NP в штаммах вируса гриппа А (2009–2023), % Conservancy of NP CTL-epitopes in influenza A strains (2009–2023), % | Предсказание ЦТЛ- иммуногенности эпитопа, баллы Prediction of epitope CTL-immunogenicity, score | |||
Номер эпитопа в IEDB Epitope IEDB ID | Позиция на транскрипте NP Position in NP transcript | Связывающий эпитоп HLA-супертип Epitope-binding HLA supertype | Аминокислотная последовательность Amino acid sequence | ||
p | 174–182 | B27 | RRSGAAGAA | 98,13 | 0,11 |
p | 317–325 | A3 | RPNENPAHK | 97,86 | 0,13 |
p | 245–253 | B27 | SRNPGNAEI | 96,43 | 0,11 |
984 | 251–259 | B44 | AEIEDLIFL | 96,29 | 0,34 |
p | 114–122 | B44 | EEIRRIWRQ | 53,30 | 0,49 |
41691 | 32–40 | A1, A3, A26 | MIDGIGRFY | 52,31 | 0,32 |
p | 438–446 | A3 | SDMRAEIIR | 51,74 | 0,32 |
p | 30–38 | A3 | GKMIDGIGR | 50,99 | 0,26 |
19421 | 17–25 | B44 | GERQNATEI | 1,53 | 0,02 |
p | 125–133 | B39 | NGDDATAGL | 1,40 | 0,16 |
p | 333–341 | A24 | CNSAAFEDL | 1,33 | 0,23 |
p | 174–182 | B27 | RRSGAAGAA | 98,13 | 0,11 |
Примечание. p — эпитоп предсказан.
Note. p — epitope is predicted.
Таблица 5. Анализ представленности иммуногенных ЦТЛ-эпитопов современных вирусов гриппа А в последовательностях NP вакцинных доноров
Table 5. Analysis of the representation of immunogenic CTL epitopes of contemporary influenza A viruses in the NP sequences of vaccine donors
Иммуногенные ЦТЛ-эпитопы Immunogenic CTL-epitopes | Вирусы-доноры для создания вакцин Donor viruses for vaccine development | ||||||
Подтип вируса гриппа Influenza virus subtype | Аминокислотная последовательность Amino acid sequence | Номер эпитопа Epitope ID | ЦТЛ-иммуногенность эпитопа, баллы Epitope CTL- immunogenicity, score | A/WSN/ 1933 | A/Leningrad / 134/17/57 | A/ Ann Arbor/ 6/60 | A/PR/8/34 |
H1N1 | RMIGGIGRF | p | 0,29 | – | – | – | – |
H1N1 | GRMIGGIGR | p | 0,27 | – | – | – | – |
H1N1 | KRGINDRNF | 167950 | 0,20 | – | + | – | – |
H1N1 | GENGRRTRV | p | 0,19 | – | – | – | – |
H1N1 | NGEDATAGL | p | 0,18 | – | – | – | – |
H1N1 | IQNSITIER | p | 0,17 | – | – | – | – |
H1N1 | GEDATAGLT | p | 0,14 | – | – | – | – |
H1N1 | AMELIRMIK | p | 0,13 | – | – | – | – |
H1N1 | SVGRMIGGI | p | 0,07 | – | – | – | – |
H1N1 | AVKGIGTMV | p | 0,06 | – | – | – | – |
H1N1 | GERQDTTEI | p | 0,05 | – | – | – | – |
H1N1 | MELIRMIKR | 41392 | 0,01 | – | – | – | – |
H1N1, H3N2 | MIDGIGRFY | 41691 | 0,32 | + | – | + | – |
H1N1, H3N2 | GINDRNFWR | 20377 | 0,29 | – | – | – | – |
H1N1, H3N2 | RGINDRNFW | 53890 | 0,17 | – | + | – | – |
H1N1, H3N2 | RRSGAAGAA | p | 0,11 | + | + | + | + |
H1N1, H3N2 | SRNPGNAEI | p | 0,11 | – | + | + | – |
H3N2 | EEIRRIWRQ | p | 0,49 | + | + | + | + |
H3N2 | NAEIEDLIF | p | 0,35 | – | + | – | – |
H3N2 | SDMRAEIIR | p | 0,32 | – | – | + | – |
H3N2 | GKMIDGIGR | p | 0,26 | + | – | + | – |
H3N2 | AANPIVPSF | p | 0,05 | – | – | – | – |
H3N2 | GDRQNATEI | p | 0,02 | – | – | – | – |
H3N2 | AAVKGIGTM | p | 0,01 | – | – | – | – |
H3N2 | NGEDATSGL | p | 0,01 | – | – | – | – |
Представленность ЦТЛ-эпитопов в последовательности NP различных вакцинных доноров, % Representation of CTL-epitopes in the NP sequence of different vaccine donors, % | 16 | 24 | 24 | 8 |
Примечание. p — эпитоп предсказан.
Note. p — epitope is predicted.
Однако, в отличие от этого вакцинного донора, в пределах NP А/Ann Arbor/6/60 (H2N2) были выявлены два уникальных консервативных эпитопа (251–259 и 438–446) и не обнаружены такие эпитопы как 198–206, 199–207, 276–284, 211–219, 213–221, присутствующие в NP антигене родственного вируса А/Ленинград/134/17/57 (H2N2).
Далее мы провели поиск иммуногенных ЦТЛ-эпитопов, содержащих не более одного сайта протеолиза, в последовательностях NP современных штаммов вирусов гриппа А подтипа H1N1 и H3N2, рекомендованных ВОЗ для включения в состав поливалентных вакцин для применения в эпидемические сезоны 2018–2024 гг. в Северном полушарии, а затем оценили представленность обнаруженных эпитопов в NP вакцинных доноров (табл. 5).
В целом проведенный анализ показал, что большинство NP-специфических иммунодоминантных ЦТЛ-эпитопов вакцинных прототипов, разработанных на основе антигенно устаревших вирусов гриппа А, не присутствуют в современных штаммах, и напротив, представленность иммуногенных ЦТЛ-эпитопов NP антигена современных вирусов гриппа А у четырех наиболее популярных вакцинных доноров не превышает 24% (табл. 5), что может иметь по крайней мере два негативных последствия. Во-первых, массовое применение вакцин на основе неактуальных NP доноров приведет к клональной экспансии эффекторных CD8⁺ Т-лимфоцитов, не способных к распознаванию и уничтожению клеток, инфицированных недавними вариантами вируса гриппа, что неоправданно истощит иммунную систему вакцинируемых. Во-вторых, большинство новых эпитопов NP современных вирусов гриппа не будет распознаваться индуцированными вакциной T-клетками, поскольку эти эпитопы еще не были представлены в вакцинах на основе классических доноров.
Среди проанализированных ЦТЛ-эпитопов NP четырех наиболее популярных вакцинных доноров по степени консервативности можно выделить три группы пептидов: высококонсервативные (для которых процент консервации составляет более 90%), среднеконсервативные (сохраняющиеся у 40–55% современных штаммов вируса гриппа А) и низкоконсервативные (с консервацией 3% и менее). Выявленные различия в степени консервативности отдельных эпитопов NP могут свидетельствовать о дифференциальном действии естественного отбора со стороны иммунной системы хозяина в процессе вирусной эволюции. Это предположение может быть в дальнейшем дополнительно проверено с помощью алгоритмов оценки молекулярной эволюции [10, 12].
Полученные в работе данные свидетельствуют о том, что NP-специфические CD8⁺ Т-клетки, генерируемые в ответ на вакцинацию штаммами, полученными на основе классичес ких доноров, будут способны распознавать лишь небольшую часть иммуногенных ЦТЛ-эпитопов NP антигена современных вариантов вируса гриппа. Этот недостаток может быть устранен либо введением в состав штаммов цельновирионных гриппозных вакцин, помимо генов поверхностных белков (гемагглютинина и нейраминидазы), гена NP актуальных вирусных вариантов, либо направленным точечным мутагенезом последовательностей NP вакцинных доноров для приведения ее в соответствие антигенному набору ЦТЛ-эпитопов NP современных вирусов гриппа А.
Заключение
В настоящем исследовании был выявлен ряд экспериментальных и предсказанных иммуногенных ЦТЛ-эпитопов в белке нуклеокапсида стандартных вакцинных доноров для создания гриппозных вакцин и проанализирована степень их консервативности по наличию в NP современных штаммов вируса гриппа А. По результатам анализа степени консервации этих эпитопов, большая их часть отсутствует в NP антигене штаммов вируса гриппа А подтипов H1N1 и H3N2, циркулировавших в мире с 2009 по 2023 год. Таким образом, существует вероятность ограниченной перекрестной NP-специфичности, а, следовательно, и защитной функции вакцин-индуцированных CD8⁺ Т-лимфоцитов, что может быть скорректировано за счет актуализации эпитопного состава NP вакцинных доноров в соответствии с таковым у современных вирусных вариантов. Выявленные в работе последовательности иммуногенных ЦТЛ-эпитопов NP могут быть использованы для конструирования новых прототипов вакцин против гриппа с улучшенными кросс-протективными свойствами.
About the authors
Alexandra Ya. Rak
Institute of Experimental Medicine
Author for correspondence.
Email: rak.ay@iemspb.ru
PhD (Biology), Senior Researcher, Laboratory of Immunology and Prophylaxis of Viral Infections, A.A. Smorodintsev Department of Virology
Россия, 197376, St. Petersburg, Akademika Pavlova str., 12L. G. Rudenkо
Institute of Experimental Medicine
Email: rak.ay@iemspb.ru
DSc (Medicine), Professor, Head of A.A. Smorodintsev Department of Virology
Россия, 197376, St. Petersburg, Akademika Pavlova str., 12I. N. Isakova-Sivak
Institute of Experimental Medicine
Email: rak.ay@iemspb.ru
RAS Corresponding Member, DSc (Biology), Head of the Laboratory of Immunology and Prophylaxis of Viral Infections, A.A. Smorodintsev Department of Virology
Россия, 197376, St. Petersburg, Akademika Pavlova str., 12References
- Bui H.H., Sidney J., Li W., Fusseder N., Sette A. Development of an epitope conservancy analysis tool to facilitate the design of epitope-based diagnostics and vaccines. BMC Bioinformatics, 2007, vol. 8, pp. 1–6. doi: 10.1186/1471-210⁵-8-361
- Calis J.J.A., Maybeno M., Greenbaum J.A., Weiskopf D., De Silva A.D., Sette A., Keşmir C., Peters B. Properties of MHC class I presented peptides that enhance immunogenicity. PLoS Computational Biology, 2013, vol. 9, no. 10: e1003266. doi: 10.1371/journal.pcbi.1003266
- Grant E., Wu C., Chan K.F., Eckle S., Bharadwaj M., Zou Q.M., Kedzierska K., Chen W. Nucleoprotein of influenza A virus is a major target of immunodominant CD8⁺ Т-cell responses. Immunology and Cell Biology, 2013, vol. 91, no. 2, pp. 184–194. doi: 10.1038/icb.2012.78
- Influenza. World Health Organization (3 october 2023). World Health Organization fact sheet. Access date: March 23, 2024. [Electr. resource]
- Larsen M.V., Lundegaard C., Lamberth K., Buus S., Lund O., Nielsen M. Large-scale validation of methods for cytotoxic T-lymphocyte epitope prediction. BMC Bioinformatics, 2007, vol. 8, pp. 1–12. doi: 10.1186/1471-210⁵-8-424
- Nielsen M., Lundegaard C., Lund O., Keşmir C. The role of the proteasome in generating cytotoxic T-cell epitopes: insights obtained from improved predictions of proteasomal cleavage. Immunogenetics, 2005, vol. 57, pp. 33-41. doi: 10.1007/s00251-005-0781-7
- Rudenko L., Yeolekar L., Kiseleva I., Isakova-Sivak I.N. Development and approval of live attenuated influenza vaccines based on Russian master donor viruses: process challenges and success stories. Vaccine, 2016, vol. 34, no. 45, pp. 5436–5441. doi: 10.1016/j.vaccine.2016.08.018
- Sievers F., Wilm A., Dineen D., Gibson T.J., Karplus K., Li W., Lopez R., McWilliam H., Remmert M., Söding J., Thompson J.D., Higgins D.G. Fast, scalable generation of high-quality protein multiple sequence alignments using Clustal Omega. Molecular Systems Biology, 2011, vol. 7, no. 1: 539. doi: 10.1038/msb.2011.75
- Sridhar S., Brokstad K.A., Cox R.J. Influenza Vaccination Strategies: Comparing Inactivated and Live Attenuated Influenza Vaccines. Vaccines (Basel), 2015, vol. 3, no. 2, pp. 373–389. doi: 10.3390/vaccines3020373
- Tamura K., Peterson D., Peterson N., Stecher G., Nei M., Kumar S. MEGA5: molecular evolutionary genetics analysis using maximum likelihood, evolutionary distance, and maximum parsimony methods. Mol. Biol. Evol., 2011, vol. 28, no. 10, pp. 2731–2739. doi: 10.1093/molbev/msr121
- Vita R., Overton J.A., Greenbaum J.A., Ponomarenko J., Clark J.D., Cantrell J.R., Wheeler D.K., Gabbard J.L., Hix D., Sette A., Peters B. The immune epitope database (IEDB) 3.0. Nucleic Acids Res., 2015, vol. 43, no. D1, pp. D405–D412. doi: 10.1093/nar/gku938
- Weaver S., Shank S.D., Spielman S.J., Li M., Muse S.V., Kosakovsky Pond S.L. Datamonkey 2.0: a modern web application for characterizing selective and other evolutionary processes. Mol. Biol. Evol., 2018, vol. 35, no. 3, pp. 773–777. doi: 10.1093/molbev/msx335