РЕГУЛЯТОРНОЕ ВЛИЯНИЕ МОНОЦИТОВ КРОВИ НА ПОПУЛЯЦИОННЫЙ СОСТАВ ГРАНУЛОЦИТАРНЫХ ЛЕЙКОЦИТОВ И СОСТОЯНИЕ ИХ РЕСПИРАТОРНОГО ВЗРЫВА ПРИ РАСПРОСТРАНЕННОМ ГНОЙНОМ ПЕРИТОНИТЕ

Обложка
  • Авторы: Савченко А.А.1, Борисов А.Г.1, Черданцев Д.В.2, Первова О.В.2, Кудрявцев И.В.3, Беленюк В.Д.4
  • Учреждения:
    1. ФГБНУ Федеральный исследовательский центр Красноярский научный центр Сибирского отделения Российской академии наук, обособленное подразделение «НИИ медицинских проблем Севера» ФГБОУ ВПО Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого МЗРФ
    2. ФГБОУ ВПО Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого МЗРФ
    3. ФГБНУ Институт экспериментальной медицины ФГБОУ ВПО Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова МЗ РФ
    4. ФГБНУ Федеральный исследовательский центр Красноярский научный центр Сибирского отделения Российской академии наук, обособленное подразделение «НИИ медицинских проблем Севера»
  • Выпуск: Том 8, № 2 (2018)
  • Страницы: 201-210
  • Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ
  • URL: https://iimmun.ru/iimm/article/view/739
  • DOI: https://doi.org/10.15789/2220-7619-2018-2-201-210

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Целью исследования явилось изучение регуляторного влияния моноцитов и их субпопуляций на популяционный состав гранулоцитарных лейкоцитов и состояние их респираторного взрыва при распространенном гнойном перитоните (РГП). Обследовано 24  пациента с острыми хирургическими заболеваниями и травмами органов брюшной полости,  осложнившимися РГП, в возрасте 30–65 лет. В качестве контроля обследовано 25  относительно здоровых людей аналогичного возрастного диапазона. Исследование  популяционного состава моноцитов и гранулоцитарных лейкоцитов крови осуществляли по  двухплатформенной технологии на гематологическом анализаторе Sysmex XE-5000 (Sysmex  Inc., США) и проточном цитометре FC-500 (Beckman Coulter, США) с применением набора  антител Cytodiff (Beckman Coulter, США). Исследование количества моноцитов, экспрессирующих HLA-DR- и CD64-рецептор, проводили методом проточной  цитометрии с использованием прямой иммунофлуоресценции цельной периферической  крови. Состояние респираторного взрыва нейтрофильных гранулоцитов исследовали с помощью хемилюминесцентного анализа на 36-канальном хемилюминесцентном  анализаторе БЛМ-3607 (ООО «МедБиоТех», Россия). В качестве индикаторов  хемилюминесценции использовали люминол и люцигенин. Усиление хемилюминесценции,  индуцированной зимозаном, оценивали отношением площади индуцированной  хемилюминесценции к площади спонтанной и определяли как индекс активации.  Установлено, что иммуновоспалительный процесс при РГП характеризуется снижением  количества классических моноцитов в периферической крови и увеличением содержания  неклассических моноцитов. При РГП в периферической крови понижается уровень  моноцитов, экспрессирующих HLA-DR-рецепторы. Изменение соотношения субпопуляций моноцитов характеризует повышение роли провоспалительной фракции в патогенезе РГП.  Изменения в популяционном составе гранулоцитов в крови у больных РГП также характеризуют развитие острого воспалительного процесса. При этом наблюдается  снижение количества базофилов в периферической крови, что, по-видимому, определяется  наличием аллергического компонента при РГП и, соответственно, их миграцией в зону  воспаления. У больных РГП обнаружена активация респираторного взрыва гранулоцитов  крови, интенсивность которого определяется синтезом первичных и вторичных активных  форм кислорода. Результаты корреляционного анализа позволили установить, что при РГП  повышается регуляторная роль неклассических моноцитов, направленная на стимуляцию  воспалительных процессов (повышение количества зрелых и незрелых форм нейтрофилов и стимуляция активности респираторного взрыва гранулоцитов). Выявленные особенности  регуляторного влияния моноцитов на популяционный состав и интенсивность  респираторного взрыва гранулоцитов могут быть использованы при разработке  иммунотерапевтических методов, направленных на снижение активности воспалительного процесса при РГП.

Об авторах

А. А. Савченко

ФГБНУ Федеральный исследовательский центр Красноярский научный центр Сибирского отделения Российской академии наук, обособленное подразделение «НИИ медицинских проблем Севера»

ФГБОУ ВПО Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого МЗРФ

Email: fake@neicon.ru

д.м.н., профессор, руководитель лаборатории молекулярно-клеточной  физиологии и патологии ФГБНУ НИИ медицинских проблем Севера, г.  Красноярск, Россия; зав. кафедрой физиологии ФГБОУ ВО КрасГМУ им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого МЗ РФ, г. Красноярск, Россия

Россия

А. Г. Борисов

ФГБНУ Федеральный исследовательский центр Красноярский научный центр Сибирского отделения Российской академии наук, обособленное подразделение «НИИ медицинских проблем Севера»

ФГБОУ ВПО Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого МЗРФ

Email: fake@neicon.ru

к.м.н., ведущий научный сотрудник лаборатории молекулярно-клеточной  физиологии и патологии ФГБНУ НИИ медицинских проблем Севера, г.  Красноярск, Россия; доцент кафедры инфекционных болезней ФГБОУ ВО  КрасГМУ им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого МЗ РФ, г. Красноярск, Россия

Россия

Д. В. Черданцев

ФГБОУ ВПО Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого МЗРФ

Email: fake@neicon.ru

д.м.н., профессор, зав. кафедрой и клиникой хирургических болезней им. проф.  А.М. Дыхно с курсом эндоскопии и эндохирургии ФГБОУ ВО КрасГМУ им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого МЗ РФ, г. Красноярск, Россия

Россия

О. В. Первова

ФГБОУ ВПО Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого МЗРФ

Email: fake@neicon.ru

д.м.н., профессор кафедры и клиники хирургических болезней им. проф. А.М.  Дыхно с курсом эндоскопии и эндохирургии ФГБОУ ВО КрасГМУ им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого МЗ РФ, г. Красноярск, Россия

Россия

И. В. Кудрявцев

ФГБНУ Институт экспериментальной медицины

ФГБОУ ВПО Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова МЗ РФ

Автор, ответственный за переписку.
Email: igorek1981@yandex.ru

к.б.н., старший научный сотрудник лаборатории общей иммунологии ФГБНУ  Институт экспериментальной медицины, Санкт-Петербург, Россия; доцент  кафедры иммунологии ФГБОУ ВПО Первый Санкт- Петербургский  Государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова МЗ РФ, Санкт- Петербург, Россия

197376, Россия, Санкт-Петербург, ул. Акад. Павлова, 12

Тел.: 8 (812) 234-29-29.

Россия

В. Д. Беленюк

ФГБНУ Федеральный исследовательский центр Красноярский научный центр Сибирского отделения Российской академии наук, обособленное подразделение «НИИ медицинских проблем Севера»

Email: fake@neicon.ru

младший научный сотрудник лаборатории клеточно-молекулярной физиологии и  патологии ФГБНУ НИИ медицинских проблем Севера, г. Красноярск, Россия

Россия

Список литературы

  1. Головкин А.С., Матвеева В.Г., Кудрявцев И.В., Григорьев Е.В., Великанова Е.А., Байракова Ю.В. Субпопуляции моноцитов крови при неосложненном течении периоперационного периода коронарного шунтирования // Медицинская иммунология. 2012. Т. 14, № 4–5. С. 305–312. [Golovkin A.S., Matveeva V.G., Kudryavtsev I.V., Grigoriev E.V., Velikanova E.A., Bairakova Y.V. Blood monocyte subpopulations during uncomplicated coronary artery bypass surgery. Meditsinskaya immunologiya = Medical Immunology (Russia), 2012, vol. 14, no. 4–5, pp. 305–312. doi: 10.15789/1563-0625-2012-4-5-305-312 (In Russ.)]
  2. Евстратова В.С., Ригер Н.А., Никитюк Д.Б., Ханферьян Р.А. Особенности секреции хемокинов мононуклеарными и дендритными клетками: роль гистаминовых рецепторов H3/H4-типа // Медицинская иммунология. 2016. Т. 18, № 5. С. 437–442. [Evstratova V.S., Riger N.A., Nikityuk D.B., Khanferyan R.A. Chemokine secretion patterns in mononuclear and dendritic cells: role of histamine type h3/h4 receptors. Meditsinskaya immunologiya = Medical Immunology (Russia), 2016, vol. 18, no. 5, pp. 437–442. doi: 10.15789/1563-0625-2016-5-437-442 (In Russ.)]
  3. Кудрявцев И.В., Субботовская А.И. Опыт измерения параметров иммунного статуса с использованием шестицветного цитофлуоримерического анализа // Медицинская иммунология. 2015. Т. 17, № 1. С. 19–26. [Kudryavtsev I.V., Subbotovskaya A.I. Application of six-color flow cytometric analysis for immune profile monitoring. Meditsinskaya immunologiya = Medical Immunology (Russia), 2015, vol. 17, no. 1, pp. 19–26. doi: 10.15789/1563-0625-2015-1-19-26 (In Russ.)]
  4. Савченко А.А., Борисов А.Г., Анисимова Е.Н., Беленюк В.Д., Кудрявцев И.В., Решетников И.В., Квятковская С.В., Цейликман В.Э., Зорин А.Н. Исследование фенотипа лейкоцитов крови у больных онихомикозами с помощью метода Hematoflow // Инфекция и иммунитет. 2015. Т. 5, № 4. С. 339–348. [Savchenko A.A., Borisov A.G., Anisimova E.N., Belenyuk V.D., Kudryavtsev I.V., Reshetnikov I.V., Kvjatkovskaja S.V., Cejlikman V.J., Zorin A.N. Blood leukocytes phenotyping by hematoflow method in patients with onychomycosis. Infektsiya i immunitet = Russian Journal of Infection and Immunity, 2015, vol. 5, no. 4, pp. 339–348. doi: 10.15789/2220-7619-2015-4-339-348 (In Russ.)]
  5. Савченко А.А., Борисов А.Г., Здзитовецкий Д.Э., Гвоздев И.И. Особенности цитокиновой регуляции респираторного взрыва нейтрофилов крови в прогнозе развития абдоминального сепсиса у больных распространенным гнойным перитонитом // Медицинская иммунология. 2016. Т. 18, № 5. С. 475–482. [Savchenko A.A., Borisov A.G., Zdzitovetsky D.E., Gvozdev I.I. Cytokine regulation of respiratory burst in blood neutrophils for prediction of abdominal sepsis in patients with extended purulent peritonitis. Meditsinskaya immunologiya = Medical Immunology (Russia), 2016, vol. 18, no. 5, pp. 475–482. doi: 10.15789/1563-0625-2016-5-475-482 (In Russ.)]
  6. Савченко А.А., Борисов А.Г., Модестов А.А., Мошев А.В., Кудрявцев И.В., Тоначева О.Г., Кощеев В.Н. Фенотипический состав и хемилюминесцентная активность моноцитов у больных почечноклеточным раком // Медицинская иммунология. 2015. Т. 17, № 2. С. 141–150. [Savchenko A.A., Borisov A.G., Modestov A.A., Moshev A.V., Kudryavtsev I.V., Tonacheva O.G., Koshcheev V.N. Monocytes subpopulations and chemiluminescent activity in patients with renal cell carcinoma. Meditsinskaya immunologiya = Medical Immunology (Russia), 2015, vol. 17, no. 2, pp. 141–150. doi: 10.15789/1563-0625-2015-2-141-150 (In Russ.)]
  7. Савченко А.А., Здзитовецкий Д.Э., Борисов А.Г., Лузан Н.А. Хемилюминесцентная активность нейтрофильных гранулоцитов и уровни концентрации цитокинов у больных распространенным гнойным перитонитом // Цитокины и воспаление. 2013. Т. 12, № 1–2. С. 115–119. [Savchenko A.A., Zdzitovetskiy D.E., Borisov A.G., Luzan N.A. Neutrophil chemiluminescent activity and cytokine concentration levels in patients with extensive purulent peritonitis. Tsitokiny i vospalenie = Cytokines and Inflammation, 2013, vol. 12, no. 1–2, pp. 115–119. (In Russ.)]
  8. Agrawal A., Agrawal S., Gupta S. Role of dendritic cells in inflammation and loss of tolerance in the elderly. Front. Immunol., 2017, vol. 8: 896. doi: 10.1155/2015/794072
  9. Allen R.C. Neutrophil leukocyte: combustive microbicidal action and chemiluminescence. J. Immunol. Res., 2015, vol. 2015: 794072, 11 p. doi: 10.1155/2015/794072
  10. Baek K., Chung I. Cadmium exposure is associated with monocyte count and monocyte to HDL ratio, a marker of inflammation and future cardiovascular disease in the male population. J. Korean Med. Sci., 2017, vol. 32, no. 9, pp. 1415–1422. doi: 10.3346/jkms.2017.32.9.1415
  11. Cortjens B., Lutter R., Boon L., Bem R.A., van Woensel J.B. Pneumovirus-induced lung disease in mice is independent of neutrophil-driven inflammation. PLoS ONE, 2016, vol. 11, no. 12: e0168779. doi: 10.1371/journal.pone.0168779
  12. Cox S.N., Serino G., Sallustio F., Blasi A., Rossini M., Pesce F., Schena F.P. Altered monocyte expression and expansion of nonclassical monocyte subset in IgA nephropathy patients. Nephrol. Dial. Transplant., 2015, vol. 30, iss. 7, pp. 1122–1232. doi: 10.1093/ndt/gfv017
  13. El-Benna J., Hurtado-Nedelec M., Marzaioli V., Marie J.C., Gougerot-Pocidalo M.A., Dang P.M. Priming of the neutrophil respiratory burst: role in host defense and inflammation. Immunol. Rev., 2016, vol. 273, iss. 1, pp. 180–193. doi: 10.1111/imr.12447
  14. Fine N., Dimitriou I.D., Rullo J., Sandí M.J., Petri B., Haitsma J., Ibrahim H., La Rose J., Glogauer M., Kubes P., Cybulsky M., Rottapel R. GEF-H1 is necessary for neutrophil shear stress-induced migration during inflammation. J. Cell Biol., 2016, vol. 215, no. 1, pp. 107–119. doi: 10.1083/jcb.201603109
  15. Gilmore J.F., Kim M., LaSalvia M.T., Mahoney M.V. Treatment of enterococcal peritonitis with intraperitoneal daptomycin in a vancomycin-allergic patient and a review of the literature. Perit. Dial. Int., 2013, vol. 33, no. 4, pp. 353–357. doi: 10.3747/pdi.2012.00277
  16. Gordon S. Targeting a monocyte subset to reduce inflammation. Circ. Res., 2012, iss. 110, no. 12, pp. 1546–1548. doi: 10.1161/RES.0b013e31825ec26d
  17. Ichibangase T., Ohba Y., Kishikawa N., Nakashima K., Kuroda N. Evaluation of lophine derivatives as L-012 (luminol analog)-dependent chemiluminescence enhancers for measuring horseradish peroxidase and H2O2. Luminescence, 2014, vol. 29, iss. 2, pp. 118– 121. doi: 10.1002/bio.2513
  18. Jha J.C., Watson A.M.D., Mathew G., de Vos L.C., Jandeleit-Dahm K. The emerging role of NADPH oxidase NOX5 in vascular disease. Clin. Sci., 2017, vol. 131, no. 10, pp. 981–990. doi: 10.1042/CS20160846
  19. Kahng J., Kim Y., Kim M., Oh E.J., Park Y.J., Han K. Flow cytometric white blood cell differential using CytoDiff is excellent for counting blasts. Ann. Lab. Med., 2015, vol. 35, no. 1, pp. 28–34. doi: 10.3343/alm.2015.35.1.28
  20. Laborde R.R., Lin Y., Gustafson M.P., Bulur P.A., Dietz A.B. Cancer vaccines in the world of immune suppressive monocytes (CD14+HLA-DRlo/neg cells): the gateway to improved responses Front. Immunol., 2014, vol. 5, pp. 147. doi: 10.3389/fimmu.2014.00147
  21. Lan F., Yuan B., Liu T., Luo X., Huang P., Liu Y., Dai L., Yin H. Interleukin-33 facilitates neutrophil recruitment and bacterial clearance in S. aureus-caused peritonitis. Mol. Immunol., 2016, vol. 72, pp. 74–80. doi: 10.1016/j.molimm.2016.03.004
  22. Maecker H., McCoy P., Nussenblatt R. Standardizing immunophenotyping for the human immunology project. Nat. Rev. Immunol., 2012, vol. 12, pp. 191–200. doi: 10.1038/nri3158
  23. Mao Y., Koga J.I., Tokutome M., Matoba T., Ikeda G., Nakano K., Egashira K. Nanoparticle-mediated delivery of pitavastatin to monocytes/macrophages inhibits left ventricular remodeling after acute myocardial infarction by inhibiting monocyte-mediated Inflammation. Int. Heart J., 2017, vol. 58, iss. 4, pp. 615–623. doi: 10.1536/ihj.16-457
  24. Oishi Y., Manabe I. Macrophages in age-related chronic inflammatory diseases. NPJ Aging Mech. Dis., 2016, vol. 2: 16018. doi: 10.1038/npjamd.2016.18
  25. Schwartz C., Eberle J.U., Voehringer D. Basophils in inflammation. Eur. J. Pharmacol., 2016, vol. 778, pp. 90–95. doi: 10.1016/j.ejphar.2015.04.049
  26. Singal R., Dhar S., Zaman M., Singh B., Singh V., Sethi S. Comparative evaluation of intra-operative peritoneal lavage with super oxidized solution and normal saline in peritonitis cases; randomized controlled trial. Maedica, 2016, vol. 11, no. 4, pp. 277–285.
  27. Singh T.P., Zhang H.H., Borek I., Wolf P., Hedrick M.N., Singh S.P., Kelsall B.L., Clausen B.E., Farber J.M. Monocyte-derived inflammatory Langerhans cells and dermal dendritic cells mediate psoriasis-like inflammation. Nat. Commun., 2016, vol. 7:13581. doi: 10.1038/ncomms13581
  28. Tan S.Y., Weninger W. Neutrophil migration in inflammation: intercellular signal relay and crosstalk. Curr. Opin. Immunol., 2017, vol. 44, pp. 34–42. doi: 10.1016/j.coi.2016.11.002
  29. Van Biesen W., Brown E.A. Diagnostic and therapeutic approach to peritonitis. Nephrol. Dial. Transplant., 2017, vol. 32, iss. 8, pp. 1283–1284. doi: 10.1093/ndt/gfx226
  30. Wang H., Hartnett M.E. Roles of nicotinamide adenine dinucleotide phosphate (NADPH) oxidase in angiogenesis: isoformspecific effects. Antioxidants, 2017, vol. 6, no. 2: 40. doi: 10.3390/antiox6020040
  31. Watzlawick R., Kenngott E.E., Liu F.D., Schwab J.M., Hamann A. Anti-inflammatory effects of IL-27 in zymosan-induced peritonitis: inhibition of neutrophil recruitment partially explained by impaired mobilization from bone marrow and reduced chemokine levels. PLoS ONE, 2015, vol. 10, no. 9: 0137651. doi: 10.1371/journal.pone.0137651
  32. Winkler M.S., Rissiek A., Priefler M., Schwedhelm E., Robbe L., Bauer A., Zahrte C., Zoellner C., Kluge S., Nierhaus A. Human leucocyte antigen (HLA-DR) gene expression is reduced in sepsis and correlates with impaired TNFα response: a diagnostic tool for immunosuppression? PLoS ONE, 2017, vol. 12, no. 8: e0182427. doi: 10.1371/journal.pone.0182427
  33. Yamanishi Y., Karasuyama H. Basophils and mast cells in immunity and inflammation. Semin. Immunopathol., 2016, vol. 38, iss. 5, pp. 535–537. doi: 10.1007/s00281-016-0582-0
  34. Ziegler-Heitbrock L. Monocyte subsets in man and other species. Cell. Immunol., 2014, vol. 289, iss. 1–2, pp. 135–139. doi: 10.1016/j.cellimm.2014.03.019

© Савченко А.А., Борисов А.Г., Черданцев Д.В., Первова О.В., Кудрявцев И.В., Беленюк В.Д., 2018

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 64788 от 02.02.2016.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах