ECOLOGICAL SCENARIO OF THE PLAGUE MICROBE YERSINIA PESTIS SPECIATION UNDERLYING ADEQUATE MOLECULAR EVOLUTIONARY MODEL


Cite item

Abstract

It is known that the psychrophilic serotype 1 pseudotuberculosis microbe (Y. pseudotuberculosis 0: 1b) causing Far East scarlet-like fever (FESLF) – an intestinal infection found in a wide range of invertebrates and vertebrates inhabiting cold regions in the Northern and Central Asia as well as Far East directly originates from the plague causative agent the microbe Yersinia pestis. However, the mechanism of Y. pestis speciation remains poorly elucidated. Numerous Y. pestis phylogenies created by using molecular genetic (MG) technologies are largely contradictory, being not in line with reliable data obtained by natural science approaches (e.g., ecology, epizootology, biogeography, and paleontology), which disagree with current evolutionary doctrine (synthetic theory of evolution). The MG approach provides no definitive answer to the questions of where, when, how, and under what circumstances the species Y. pestis arose. One of the reasons for such situation might be due to inadequacy of using the molecular evolutionary model for Y. pestis phylogenetics. Knowledge of the life cycles for the ancestral pseudotuberculosis and derivative plague microbes as well as related unique environmental features allows to create a reliable ecological model for the plague microbe evolution to be further used for assessing patterns of molecular variability and building proper molecular model that might be accepted for MG-reconstruction of plague microbe history. According to the ecological model, the species Y. pestis was formed in a tritopic manner (almost) simultaneously from FESLF clones (populations) in the three geographical populations of the Mongolian marmot-tarbagan (Marmota sibirica) and the flea Oropsylla silantiewi parasitizing on it. The inducer of speciation was coupled to the last maximum (Sartan) cooling in Central Asia occurred 22-15 thousand years ago. Soil cooling and deep freezing resulted in altered behavior of the marmot flea larvae with emergence of facultative hematophagy, which, in turn, led to a unique traumatic (compared to routine alimentary) infection route of sleeping marmots with FESLF and, as a result, a unique way of Y. pestis speciation. The molecular model should predict a Y. pestis peripatric tritope speciation, existing numerous parallelisms in intraspecific variability associated with tritope speciation, and the quantum principle of speciation in the highly variable heterothermic (heteroimmune) stressful marmot-flea (Marmota sibirica– Oropsylla silantiewi) host-vector environment involving stress-induced mutagenesis. Such molecular model of evolution may be useful for improving molecular methodology of phylogenetic constructions for a wide range of parasitic microorganisms.

Full Text

Обзоры

ЭКОЛОГИЧЕСКИЙ СЦЕНАРИЙ ВИДООБРАЗОВАНИЯ  МИКРОБА ЧУМЫ YERSINIA PESTIS КАК ОСНОВА АДЕКВАТНОЙ МОЛЕКУЛЯРНОЙ ЭВОЛЮЦИОННОЙ МОДЕЛИ

В.В. Сунцов

Институт проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова РАН,  Москва, Россия

Резюме. Известно, что прямым предком возбудителя чумы – микроба Yersinia pestis – является психрофильный псевдотуберкулезный микроб 1-го серотипа (Y. pseudotuberculosis 0:1b) – возбудитель дальневосточной скарлатиноподобной лихорадки – кишечный инфекции широкого круга беспозвоничных и позвоночных животных, обитающих в холодных районах Северной и Центральной Азии и Дальнего Востока. Однако механизм видообразования Y. pestis остается не вполне ясным. Многочисленные филогении возбудителя, созданные на основе молекулярно-генетических (МГ) технологий, во многом противоречивы, не согласуются с надежными фактами классических естественнонаучных направлений – экологии, эпизоотологии, биогеографии, палеонтологии и других и не соответствуют положениям современного эволюционного учения (синтетической теории эволюции). На вопросы: где, когда, каким образом и при каких обстоятельствах возник вид Y. pestis – МГ-подход доверительного ответа не дает. Одной из причин сложившейся ситуации видится неадекватность используемой в филогенетике Y. pestis молекулярной эволюционной модели. Знание жизненных циклов предкового псевдотуберкулезного и производного чумного микробов и их уникальных экологических особенностей, позволяет создать доверительную экологическую модель эволюции чумного микроба, на основе которой следует оценивать закономерности молекулярной изменчивости и выстраивать адекватную молекулярную модель, которую можно будет принять для МГ-реконструкции истории этого патогена. Молекулярная модель должна предусматривать перипатрическое тритопное видообразование Y. pestis, наличие многочисленных параллелизмов внутривидовой изменчивости, связанной с тритопным видообразованием, и квантовый принцип видообразования в высокоизменчивой гетеротермной (гетероиммунной) стрессовой гостально-векторной среде сурок–блоха (Marmota sibiricaOropsylla silantiewi) с участием стресс-индуцированного мутагенеза. Такая молекулярная модель эволюции может быть полезной для совершенствования молекулярной методологии филогенетических построений других паразитических микроорганизмов.

Ключевые слова: Yersinia pestis, Yersinia pseudotuberculosis, speciation, phylogenesis, evolutionary models, ecological scenario.

ECOLOGICAL SCENARIO OF SPECIATION OF THE PLAGUE MICROBE YERSINIA PESTIS AS A BASIS OF ADEQUATE MOLECULAR EVOLUTIONARY MODEL

Suntsov V.V.

A.N. Severtsov Institute of Problems of Ecology and Evolution of  Russian Academy of Science, Moscow, Russian Federation

Abstract. The direct ancestor of the causative agent of plague - the microbe Yersinia pestis - is the psychrophilic pseudotuberculous microbe of the 1st serotype (Y. pseudotuberculosis 0: 1b), which is the causative agent of Far Eastern scarlet fever. This microbe infects the intestinal tracts of a wide range of invertebrates and vertebrates living in the cold regions of North and Central Asia and the Far East. However, the mechanism of speciation of Y. pestis remains not entirely clear. Numerous phylogenies of the causative agent of plague, created on the basis of molecular genetic (MG) technologies, are largely contradictory, do not agree with reliable facts of natural science directions (e.g., ecology, epizootology, biogeography, and paleontology) and do not correspond to the provisions of modern evolutionary doctrine (synthetic theory of evolution). To the questions where, when, how, and under what circumstances the species Y. pestis arose,- the MG approach does not give a definitive answer. One of the reasons for this situation is assumed to be the inadequacy of the molecular evolutionary model used in Y. pestis phylogenetics. Knowledge of the life cycles of the ancestral pseudotuberculous and derivative plague microbes and their unique environmental features makes it possible to create a reliable ecological model of the evolution of the plague microbe, on the basis of which it is necessary to assess the patterns of molecular variability and build an adequate molecular model that can be adopted for the MG-reconstruction of the history of this pathogen. The molecular model should provide for the peripatric tritope speciation of Y. pestis, the presence of numerous parallelisms of intraspecific variability associated with tritope speciation, and the quantum principle of speciation in the highly variable heterothermic (heteroimmune) stressful host-vector environment of the marmot-flea (Marmota sibirica– Oropsylla silantiewi) involving stress-induced mutagenesis. Such a molecular model of evolution may be useful for improving the molecular methodology of phylogenetic constructions of a wide range of parasitic microorganisms.

Key words: Yersinia pestis, Yersinia pseudotuberculosis, speciation, phylogenesis, evolutionary models, ecological scenario.

Введение

Возбудитель чумы – микроб Yersinia pestis – был открыт Александром Йерсеном в Гонконге в 1894 г. в начале 3-й пандемии. С этого момента началось глубокое всесторонне изучение возбудителя и вызываемой им болезни. Еще на начальных этапах исследований было высказано предположение о происхождении чумного микроба от псевдотуберкулезного: возбудители этих болезней имеют некоторые сходные морфологические признаки и биохимические свойства. На рубеже нового тысячелетия в инфектологии стали широко применять молекулярно-генетические (МГ) методы исследований, которые возвели диагностику возбудителя чумы до высокой степени совершенства. К настоящему времени определены структуры геномов популяций чумного микроба из большинства природных очагов мира [21]. Обнаружены и описаны фрагменты “археологической” ДНК, извлеченной из останков (зубы, кости) человеческих жертв былых пандемий [31, 32, 35]. Полученные МГ-данные позволили в общих чертах представить молекулярную эволюционную модель микроба Y. pestis и на ее основе предложить молекулярную версию истории возникновения, высказать предположения о хронологии, географии и исторической динамике мирового распространения возбудителя чумы, иными словами, реконструировать его филогению [21, 22, 29]. Однако все предложенные МГ-филогении видятся крайне противоречивыми, не поддерживаются фактами, представленными классическими естественнонаучными направлениями: экологией, эпизоотологией, биогеографией, палеонтологией и другими и не соответствуют положениям современного эволюционного учения (синтетической теории эволюции). Возникла парадоксальная ситуация. С одной стороны, МГ-методология филогенетических реконструкций возбудителя чумы хорошо разработана, созданы и адаптированы алгоритмы и многочисленные компьютерные программы для анализа молекулярных признаков, имеется продвинутая технологическая база молекулярных исследований, молекулярные технологии стали мэйнстримными в филогенетике Y. pestis. С другой стороны, за прошедшие почти четверть века интенсивных МГ-исследований силами многих специализированных лабораторий в развитых странах мира создать доверительный сценарий происхождения и мировой экспансии этого патогена так и не удалось. На тривиальные вопросы: где, когда, каким образом и при каких обстоятельствах возникла чума и как распространялась в мире – МГ-подход удовлетворительного ответа дать не в состоянии. Насколько впечатляющими являются достижения МГ-подхода в диагностике возбудителя, выявлении его генетического и молекулярного разнообразия, настолько удручающими выглядят озвученные закономерности молекулярной эволюции. Богатое внутривидовое МГ-разнообразие Y. pestis пока не удается ранжировать в доверительные эволюционные линии. Как правило, работы по филогенетике чумного микроба завершаются демонстрацией филогенетических дендрограмм, показывающих молекулярно-статистические взаимоотношения геновариантов (подвидов, географических популяций), и эти отношения не привязаны к природным и/или историческим событиям. К примеру, все молекулярные филогенетические дендрограммы фиксируют наличие политомии (узел N07, “Big Bang”), которая возникла в Азии, якобы, накануне 2-й пандемии (“Черной смерти”, 1346 г.). Но причин возникновения этого совершенно не тривиального природного события – недавнего в эволюционном масштабе времени почти одновременного, взрывного возникновения основных генеалогических ветвей Y. pestis (branchs 1–4) – МГ-подход не называет и даже не предполагает (рис. 1).

 

Рисунок 1. Типичная молекулярная филогенетическая дендрограмма Yersinia pestis, созданная на основе анализа молекулярных SNP маркеров [21]. MRCA (most recent common ancestor) – абстрактный наиболее современный статистически обоснованный предок вида Y. pestis. N07 – узел политомии (branches 1–4), возникший перед началом 2-й пандемии чумы (“Черной смерти”). Овалом выделены “полевковые” геноварианты 0.PE (подвиды) возбудителя чумы, образовавшие зону наиболее древних природных очагов в Евразии.

Figure 1. A typical molecular phylogenetic dendrogram of Yersinia pestis, created on the basis of the analysis of molecular SNP markers [21]. MRCA (most recent common ancestor) is the abstract most modern statistically grounded ancestor of the species Y. pestis. N07 is a polytomy node (branches 1–4) that arose before the onset of the 2nd plague pandemic (the “Black Death”). The oval identified “vole” genovariantes 0.PE (subspecies) of the causative agent of the plague, which formed the zone of the most ancient natural foci in Eurasia.

 

Явным несоответствием МГ-выводов классическим положениям эпизоотологии видится прокламируемая МГ-подходом двухволновая экспансия возбудителя чумы из района видо- формообразования в Азии [14]. Полагают, что сначала возникли “полевковые” (Microtinae) природные очаги в Азии – или на Кавказе [29], или на Цинхайском плато (восточный Тибет) [21], которые очень быстро, в течение сотен или нескольких тысяч лет, широко распространились на гигантской по площади территории в Евразии – от Маньчжурии и восточного Тибета на востоке до Предкавказья и Ближнего Востока на западе и от Забайкалья и северного Прикаспия на севере до Гималаев на юге – образовав зону первичных природных “полевковых” очагов (рис. 1). Полагают, что возбудитель в этих очагах был слабовирулентным или авирулентным для сусликов, сурков, песчанок и человека, не имел полноценного набора факторов вирулентности. Затем через тысячи лет существования некоторый слабовирулентный “полевковый” подвид (возможно Y. pestis ssp. ulegeica, 0.PE5, циркулирующий в популяциях монгольской пищухи на Алтае, цит. по [22]) при неизвестных обстоятельствах “мигрировал” из Монголии на Тянь-Шань в популяции алтайского сурка (Marmota baibacina), приобрел свойство высокой вирулентности и второй волной распространился в пределах “полевковых” очагов, также проник на Индостан и Ближний Восток. Так, согласно МГ-подходу, в два этапа возникли существующие ныне симпатричные, смежные и аллопатричные природные очаги Евразии со слабо- и высокопатогенными возбудителями. Эта молекулярная схема двух волн азиатской экспансии природных очагов чумы не поддается эпизоотологической и биогеографической логике: в природе чума распространяется последовательно по принципу “масляного пятна” при внутри- и межпопуляционных и внутри- и межвидовых паразитарных контактах через укусы блох-переносчиков; один вид Y. pestis не может формировать один и тот же первичный природный ареал дважды, в противном случае такое уникальное явление должно иметь доверительное объяснение [14].

Другим казусным примером может служить обоснование монофилии вновь предложенного подвида Y. pestis central-asiatica только сходством молекулярных маркеров [25]. Этот подвид включает, якобы, близкородственные биовары hissarica (0.PE4h), talassica (0.PE4t), altaica (0.PE4a) и microtus (0.PE4m), циркулирующие в разделенных огромными расстояниями природных очагах чумы на Гиссаре, Таласе, в Горном Алтае и на Хэнтэе и во Внутренней Монголии (Китай). На основании сходства SNP-маркеров полагают, что перечисленные биовары образуют голофилетическую группу (т.е. реальный подвид). При этом известно, что основными хозяевами инфекции в этих разрозненных, широко разбросанных на азиатских пространствах очагах являются млекопитающие, относящиеся к разным видам, родам, даже к разным отрядам (Rodentia и Lagomorpha). С экологических и биогеографических позиций утверждение близкого родства выше перечисленных биоваров и их монофилетическое (голофилетическое) происхождение только по сходству нуклеотидных SNP-маркеров представляются логическим нонсенсом.

Корректность результатов любого филогенетического анализа зависит от выбора адекватной эволюционной модели, наиболее точно описывающей исследуемые объекты. Судя по очевидным в МГ-филогенетических схемах противоречиям, применяемые для реконструкции филогенеза микроба чумы эволюционные модели не срабатывают. Напрашивается вопрос – почему? Ответ, по нашему представлению, следует искать в эволюционной уникальности чумного микроба. Этот патоген занимает уникальное систематическое положение. По молекулярно-генетическим признакам он относится к семейству возбудителей кишечных инфекций Enterobacteriaceae и к роду Yersinia. В то же время по экологическим (этиологическим, клиническим) свойствам он является возбудителем системной (“кровяной”) инфекции. Т.е. этот патоген занимает отличную от кишечных бактерий экологическую нишу и адаптивную зону. Микроб чумы – единственный среди кишечных возбудителей семейства Enterobacteriaceae, насчитывающего более 250 видов [27], который передается трансмиссивным (не пищевым!) способом. Уникальность положения чумного микроба в семействе кишечных микроорганизмов предписывает разработку для него ad hoc молекулярной эволюционной модели. Такая модель может быть создана на основе экологических знаний о жизненных циклах микроба чумы и его предковой формы – псевдотуберкулезного микроба.

Внедрение МГ-методологий в исследования возбудителей чумы и псевдотуберкулеза в последние два десятка лет привело к двум краеугольным открытиям, позволившим пересмотреть положения классической теории природной очаговости чумы и приблизившим решение проблемы происхождения и мировой экспансии этой инфекции. В предлагаемом обзоре описаны некоторые параметры экологической модели (сценария) видообразования и мировой экспансии возбудителя чумы и приведено сравнение ее параметров с параметрами молекулярной модели. Сравнительный анализ двух моделей позволит наметить пути создания адекватной молекулярной модели.

Прямой предок возбудителя чумы.

Генетическими исследованиями О-антигена чумного и псевдотуберкулезного микробов было установлено, что прямым предком возбудителя чумы является возбудитель псевдотуберкулеза 1-го серотипа Y. pseudotuberculosis 0:1b, вызывающий дальневосточную скарлатиноподобную лихорадку (ДСЛ) – кишечную инфекцию, широко распространенную в холодных районах Северной и Центральной Азии и Дальнего Востока [8, 23, 24, 34]. Таким образом, был надежно определен корень филогенетического дерева Y. pestis, что c учетом экологической фактологии сделало избыточным в филогенетической методологии сложный молекулярно-статистический поиск абстрактной анцестральной формы чумного микроба MRCA. Это открытие инициировало дедуктивную переоценку известных экологических фактов, на которых выстраивались гипотезы о филогенезе возбудителя в классической версии теории природной очаговости чумы. Возник вопрос – каким образом и при каких уникальных обстоятельствах произошел эволюционный переход возбудителя ДСЛ из пищеварительного тракта в принципиально иную среду обитания – кровь теплокровных хозяев-грызунов?

Ответ на этот вопрос был получен экологическими исследованиями природных очагов в Центральной Азии [15, 16]. Было показано, что вид Y. pestis сформировался из клона (популяции) возбудителя ДСЛ в популяциях монгольского сурка-тарбагана (Marmota sibirica) и паразитирующей на нем блохи Oropsylla silantiewi. Видообразовательный процесс проходил в популяциях монгольского сурка, находящегося в состоянии зимней спячки. В течение спячки сурки в зимовочном гнезде регулярно просыпаются. С октября по апрель состояние глубокого сна (торпора) до 15–20 раз сменяется состоянием бодрствования (эутермии). Во время торпора температура тела зимоспящих грызунов (сурков, сусликов, бурундуков) составляет 2–10 оС, и иммунные процессы подавлены. Во время эутермии температура тела возвращается к норме, около 37 оС, и активность иммунных ответов нормализуется [19, 30]. Выход из торпорного состояния у сурков проходит в течение 3–6 часов. Т.е. в течение этих нескольких часов возбудители инфекций, оказавшиеся в крови сурков, подвергаются колоссальному температурно-иммунному стрессу. Но как кишечный возбудитель ДСЛ оказался в крови спящих монгольских сурков в зимний период, когда сурки не питаются? Однозначный ответ на этот вопрос дают экологические наблюдения [15, 16].

Сурки зимуют семьями, включающими до 20 и более зверьков. Перед залеганием в спячку входы зимовочной норы, кроме одного, засыпают снаружи растительной ветошью, мелкоземом, щебнем и камнями. Последний лаз закрывают “пробкой” изнутри.  Монгольский сурок обитает в Центральной Азии – аридном районе, где выпадает мало осадков и почва сухая. “Пробка”, изготовленная из сухих сыпучих материалов непрочная, может быть легко раскопана хищниками – степным хорьком и корсаком. В связи с этим у монгольского сурка выработано специфичное защитное поведение – использование для изготовления пробки собственной метаболической воды. Накануне ухода в спячку сурки в отнорках-уборных накапливают строительный материал и экскременты, которые используются в качестве цементирующего состава сухой сыпучей строительной смеси. В процессе устройства пробки камни, обвалянные в экскрементах, сурки из отнорков-уборных перемещают в зубах. Таким необычным способом с фекалиями возбудитель ДСЛ в массе попадает в ротовую полость готовящихся к спячке сурков. При этом сурки перед спячкой не питаются, возбудитель ДСЛ не проникает в тонкий кишечник и популяция сурков не инфицируется ДСЛ. Описанное видоспецифическое норостроительное поведение монгольского сурка сложилось в течение второй половины кайнозоя как поведенческая адаптация к обитанию в аридных условиях Центральной Азии. Но как кишечный возбудитель ДСЛ из ротовой полости сурков эволюционным путем проник в лимфо-миелоидный комплекс животных, преодолев барьер между пищеварительной и кровеносной (лимфо-миелоидной) системами теплокровного хозяина, и преобразовался в нового патогена?

 

Эволюционная молодость возбудителя чумы.

Согласно классической версии теории природной очаговости чумы ее возбудитель сформировался в процессе коэволюции сочленов эпизоотической триады грызун-блоха-возбудитель в отдаленные геологические эпохи, олигоцене-плиоцене, от 30 до 5 млн. лет назад [5, 7]. Полагали, что видообразование могло пройти либо в популяциях песчанок (Gerbillinae) в Старом Свете, вероятно в Евразии, либо в Новом Свете в популяциях сурков (Marmotini). Межконтинентальное распространение возбудителя могло проходить при миграциях и расселении норовых грызунов по межконтинентальным сухопутным мостам, периодически возникавшим в геологическое время. Но современные исследования, проведенные на основе молекулярной методологии, надежно показали, что микроб чумы является эволюционно молодым патогеном. Время его появления на Земле как вида Y. pestis оценивается в диапазоне от 1500 до 20000 лет назад [17, 18] или не ранее 30000 лет назад [26].

Согласно экологическому подходу, индуктором видообразования стал известный физико-климатический фактор – наступление в финале плейстоцена 22–15 тыс. лет назад максимального (сартанского) похолодания в Северной и Центральной Азии и на Дальнем Востоке [15, 16]. В Центральной Азии грунт стал промерзать на глубину более 3 м [28]. Глубокое промерзание грунта вызвало изменение поведения личинок сурковой блохи: в силу положительного термотаксиса в холодные месяцы года блошиные личинки стали перемещаться из промерзающей гнездовой выстилки зимовочных нор монгольского сурка, располагающиеся на глубине 2–2,5 м,  на более теплые тела спящих животных (5… 37оС). Этот феномен сохранился до настоящего времени и может быть изучен актуалистическими методами. Личинки со стохастической закономерностью проникают в ротовую полость спящих животных, создают на слизистой скарификации и питаются кровью [10]. Раны на слизистой стали входными воротами для инфекции ДСЛ, т.е. заражение популяции монгольского сурка в зимний период проходило уникальным травматическим (не традиционным пищевым!) способом (помним, что в зимне-весенние месяцы в ротовой полости спящих сурков вместе с личинками блох присутствуют экскременты и, соответственно, возбудитель ДСЛ). Уникальный способ заражения привел к формированию уникального возбудителя новой инфекции.

Cогласно МГ и экологическим выводам, видообразование Y. pestis прошло в короткий промежуток времени [21]. Экологические факты дают основания полагать, что в быстром “квантовом” видообразовании чумного мироба решающую роль сыграли два пока еще слабо изученных явления – кислородный “взрыв” макрофагов в организме гибернирующих гетеротермных (гетероиммунных) сурков, создавший быстро изменяющиеся (“in an eye blink” [36]) стрессовые условия для предкового возбудителя ДСЛ, и стресс-индуцированный мутагенез в эволюционирующей микробной популяции, на порядки ускоряющий изменчивость и скорость эволюции [9, 11].

 

Тритопное происхождение возбудителя чумы

Для того, чтобы понять, как проходило преобразование клона возбудителя ДСЛ в популяцию чумного микроба, необходимо иметь представление о территориальной структуре среды обитания чумного и псевдотуберкулезного микробов, прежде всего о структуре ареала монгольского сурка, с которым экологический подход связывает истоки  чумы.

Как было показано [15, 16], триггером видообразования Y. pestis послужило максимальное сартанское похолодание в Центральной Азии, охватившее (почти) одновременно весь ареал монгольского сурка. Ареал этого вида включает три относительно изолированные географические популяции, представленные отдельными подвидами. Подвид M. sibirica sibirica обитает в восточной части ареала, на Хэнтэе, в Забайкалье, Маньчжурии и в китайской провинции Внутренняя Монголия. M. sibirica caliginosus заселяет Хангайское горное плато в центральных районах Монголии. В западной Монголии и в Тыве на Хархира-Турген-Монгун-Тайгинском горном поднятии обитает пока не описанный подвид M. sibirica ssp. [2, 20]. Сурочьи очаги чумы имеются во всех трех географических популяциях, и в каждом очаге циркулирует свой определенный геновариант (подвид) возбудителя: 2. ANT3, 3.ANT2 и 4.ANT1, соответственно [1, 3, 4, 6, 25, 33]. Так как максимальное похолодание охватило все географические популяции монгольского сурка (почти) одновременно [28], можно полагать, что видообразование чумного микроба из клонов возбудителя ДСЛ прошло (почти) одновременно во всех трех популяциях сурка. Дальнейшая территориальная экспансия трех геновариантов (подвидов) возбудителя сурочьей чумы проходила самостоятельными параллельными маршрутами [13] (рис. 2). В таком случае, три исходных геноварианта (подвида) чумного микроба 2. ANT3, 3.ANT2 и 4.ANT1 образовали три самостоятельных голофилетических группы, имеющих разные эволюционные судьбы. Этот факт принципиально важен при создании эволюционной модели Y. pestis: сходные признаки геновариантов из разных филогенетических линий (голофилетических групп) могут быть гомоплазиями, которые следует исключать из филогенетического анализа.

 

Рисунок 2. Тритопное происхождение трех геновариантов (подвидов)  чумного микроба Yersinia pestis 2.ANT3, 3.ANT2 и 4.ANT1 в трех географических популяциях монгольского сурка Marmota sibirics sibirica (I), M. sibirica caliginosus (II) и M. sibirica ssp. (III) и три самостоятельных маршрута их территориальной экспансии. Пунктирная линия очерчивает южную границу зоны глубокого промерзания грунта.

Figure 2. The tritopic origin of the three geneovariantes (subspecies) of the plague microbe Yersinia pestis 2.ANT3, 3.ANT2 and 4.ANT1 in three geographic populations of the Mongolian marmot Marmota sibirics sibirica (I), M. sibirica caliginosus (II) and M. sibirica ssp. (III) and three independent routes of their territorial expansion. The dotted line outlines the southern boundary of the zone of deep freezing of the soil.

 

Параметры эволюционных моделей

Приведенное выше частичное описание жизненных циклов и экологических особенностей предкового псевдотуберкулезного и производного чумного микробов позволяет сравнить некоторые параметры экологической и молекулярной моделей эволюции, которые используются в реконструкции филогенеза возбудителя чумы (таблица).

Таблица

Некоторые параметры молекулярной и экологической эволюционных моделей Yersinia pestis

Table

Some parameters of molecular and ecological evolutionary models of Yersinia pestis

Параметры

Экологическая модель

Молекулярная модель

Базовая модель

Модель прогрессивной эволюции. Анализируются адаптивные генетические и экологические признаки.

Модель нейтральной эволюции. Анализируются нейтральные мутации нуклеотидных признаков-маркеров.

Предковая(ые) форма(ы) микроба чумы

Y. pseudotuberculosis 0:1b. Три геноварианта (популяции) возбудителя ДСЛ на Хэнтэе, Хангае и Хархира-Турген-Монгун-Тайгинском горном поднятии.

Y. pseudotuberculosis 0:1b. MRCA (most recent common ancestor) – абстрактная статистически обоснованная предковая форма Y. pestis.

Способ видообразования

Перипатрическое. “Миграция” возбудителя ДСЛ в кровь монгольского сурка в трех географических популяциях. Автономное постепенное  тритопное популяционно-генетическое преобразование клонов-основателей.

Генетическая сальтация. Горизонтальный перенос генных структур от других микроорганизмов или из внешней среды, делеции и инактивации генов, утративших функции в новой среде.

Эволюционный возраст возбудителя чумы

Эволюционно молодой, сформировался  под влиянием последнего максимального (сартанского) похолодания в Центральной Азии 22–15 тыс. лет назад.

Эволюционно молодой, “генетическое” видообразование прошло не ранее 30 тыс. лет назад.

Скорость видообразования

Быстрое, квантовое, постепенное (не сальтационное) формирование популяции Y. pestis с участием кислородного взрыва макрофагов в организме исходного хозяина – монгольского сурка и стресс-индуцированного мутагенеза предкового возбудителя ДСЛ и переходных форм.

Быстрое, сальтационное видообразование путем несколько генетических актов аквизиций, делеций и инактиваций.

Район видообразования

Одновременное тритопное видообразование в Центральной Азии (Монголии): на Хэнтэе, Хангае и Хархира-Турген-Монгун-Тайгинском горном комплексе.

Не определен. Предположительно Кавказ или восточный Тибет (Цинхайское плато).

Исходный хозяин микроба чумы

Монгольский сурок Marmota sibirica.

Не определен. Предположительно сибирский тушканчик Allactaga sibirica (Цинхайское плато), обыкновенная полевка Microtus arvalis (Кавказ), или какой-либо вид сурка.

Родственные отношения в видовой группе Y. pestis

Три самостоятельных голофилетических группы.

Единая монофилетическая (голофилетическая) группа.

Структура эволюционного процесса Y. pestis

Видообразование и территориальная экспансия – принципиально разные процессы. Видообразование – тритопный “квантовый” процесс, экспансия – относительно равномерное территориальное расселение по принципу “масляного пятна”.

Единый относительно равномерный процесс видообразования и последующей дивергенции, совершающийся по единому эволюционному принципу – накоплению нейтральных мутаций.

 

Сравнение параметров моделей позволяет заключить, что экологический сценарий происхождения и мировой экспансии возбудителя чумы является более доверительным, более очевидным, так как согласуется с широким кругом природных событий, произошедших в позднем плейстоцене и голоцене и описанных в научных публикациях [9–16]. В таком случае, экологический сценарий может быть принят за вербальную модель, на которую следует ориентироваться при разработке молекулярной модели и для оценки достоверности выводов и заключений, которые следуют из МГ-филогенетичекого анализа [12].

Заключение

Экологический сценарий в настоящее время является путеводной “нитью Ариадны” в проблеме происхождения и мировой экспансии чумы и стимулом для создания адекватной модели молекулярной эволюции чумного микроба и методологии филогенетической реконструкции, в целом. Установить отношения родства или филогенетические взаимоотношения между таксонами и группами живых организмов можно только в том случае, если известен прямой общий предок изучаемых объектов. В МГ-подходе при изучении возбудителя чумы общим предком всего разнообразия внутривидовых форм Y. pestis называют абстрактную, только статистически обоснованную предковую форму MRCA, а совокупность внутривидовых форм (геновариантов, подвидов, биоваров) без каких-либо обоснований интуитивно рассматривают как монофилетическую (голофилетическую) группу близкородственных микроорганизмов. Экологические факты указывают на ошибочность выстраивания МГ-филогенетической схемы по монофилетическому (голофилетическому) принципу. Совокупность внутривидовых форм Y. pestis образована не одной, а тремя голофилетическими группами. Родство геновариантов, входящих в каждую из голофилетических групп, опосредуется псевдотуберкулезными предками. Это следует учитывать при создании филогенетической эволюционной модели Y. pestis. Молекулярная модель должна предусматривать тритопное видообразование Y. pestis, наличие многочисленных параллелизмов внутривидовой изменчивости, связанной с тритопным видообразованием, и квантовый принцип видообразования в высокоизменчивой гетеротермной (гетероиммунной) гостально-векторной среде сурок–блоха (Marmota sibiricaOropsylla silantiewi) с участием стресс-индуцированного мутагенеза.

Экологический сценарий происхождения и мировой экспансии возбудителя чумы раскрывает панораму природных событий, на фоне которых разворачивалась “молекулярная” история чумы и с которой молекулярный сценарий не должен иметь каких-либо противоречий. Аналитическая оценка молекулярных сценариев по отношению к экологическому поможет выявить закономерности молекулярной эволюции и составит важный вклад в развитие теории молекулярной эволюции чумного патогена. После того как будут выявлены молекулярные закономерности эволюции, конгруэнтные с многочисленными фактами и факторами других естественнонаучных направлений, можно будет заявить о рождении полноценной теории молекулярной эволюции Y. pestis, обладающей прогностическими свойствами.

 

Список литературы/References

  1. Балахонов С.В., Ярыгина М.Б., Гладких А.С., Миронова Л.В., Феранчук С.И., Бочалгин Н.О., Рождественский Е.Н., Витязева С.А., Нацагдорж Б., Цэрэнноров Д., Цогбадрах Н., Косилко С.А., Корзун В.М. Молекулярно-генетическая характеристика штаммов Yersinia pestis, выделенных на монгольской территории трансграничного Сайлюгемского природного очага чумы. Пробл. особо опасн. инф., 2019, № 3, с. 34–42. DOI: 10.21055/0370-1069-2019-3-34-42 [Balakhonov S.V., Yarygina M.B., Gladkikh A.S., Mironova L.V., Feranchuk S.I., Bochalgin N.O., Rozhdestvensky E.N., Vityazeva S.A., Natsagdorzh B., Tserennorov D., Tsogbadrakh N., Kosilko S.A., Korzun V.M. Molecular-Genetic Characteristics of Yersinia pestis Strains Isolated in the Mongolian Territory of Transboundary Sailyugem Natural Plague Focus. Problems of Particularly Dangerous Infections, 2019, 3, pp.34 (In Russ.) https://doi.org/10.21055/0370-1069-2019-3-34-42]
  2. Банников А.Г. Млекопитающие Монгольской Народной Республики. М.: Изд-во АН СССР, 1954. 670 с. [Bannikov A.G. Mammals of Mongol People Republic. Moscow:Acad. Sci. USSR, 1954. 670 p.]
  3. Ерошенко Г.А., Попов Н.В., Краснов Я.М., Никифоров К.А., Кузнецов А.А., Матросов А.Н., Кутырев В.В. Природный мегаочаг основного подвида Yersinia pestis античного биовара филогенетической ветви 4.ANT в Горном Алтае. Пробл. особо опасн. инф., 2018, № 2. С. 49–56. DOI: 10.21055/0370-1069-2018-2-49-56 [Eroshenko G.A., Popov N.V., Krasnov Y.M., Nikiforov K.A., Kuznetsov A.A., Matrosov A.N., Kutyrev V.V. Natural Mega-Focus of Yersinia pestis Main Subspecies, Antique Biovar, Phylogenetic Line 4.ANT in Gorny Altai. Problems of Particularly Dangerous Infections, 2018, № 2, pp. 49https://doi.org/10.21055/0370-1069-2018-2-49-56. (In Russ.)].
  4. Куклева Л.М., Шавина Н.Ю., Одиноков Г.Н., Оглодин Е.Г., Носов Н.Ю. Анализ разнообразия и определение геновариантов штаммов возбудителя чумы из очагов Монголии. Генетика, 2015, т. 51, № 3. С. 298–305. DOI: 10.7868/S0016675815010063 [ M. Kukleva, N. Yu. Shavina, G. N. Odinokov, E. G. Oglodin, N. Yu. Nosov, N. A. Vinogradova, N. P. Guseva, G. A. Eroshenko, and V. V. Kutyrev. Analysis of Diversity and Identification of the Genovariants of Plague Agent Strains from Mongolian Foci. Genetics, 2015, vol. 51, № 3, pp. 298–305. (In Russ).]
  5. Кучерук В.В. Вопросы палеогенезиса природных очагов чумы в связи с историей фауны грызунов. Фауна и экология грызунов, 1965, № 7. С. 5–86. [Kucheruk V.V. Issues of paleogenesis of natural foci of plague in connection with the history of the rodent fauna. Fauna and Ecology of Rodents, 1965, № 7, pp. 5–86. (In Russ.)]
  6. Павлова А.И., Ерошенко Г.А., Одиноков Г.Н., Куклева Л.М., Шавина Н.Ю., Краснов Я.М., Кутырев В.В. Анализ генетической изменчивости штаммов Yersinia pestis средневекового биовара из природных очагов чумы России и Монголии.  Пробл. особо опасн. инф., 2012, № 114. С. 49–53. [I.Pavlova, G.A.Eroshenko, G.N.Odinokov, L.M.Koukleva, N.Yu.Shavina, Ya.M.Krasnov, V.V.KutyrevAnalysis of Genetic Variability of Yersinia pestis Strains (Medieval Biovar) Isolated in Natural Plague Foci of the Russian Federation and Mongolia. Problemy osobo opasnih inf., 2012, № 114, pp. 49–53. (In Russ.) ].
  7. Ралль Ю.М. Природная очаговость и эпизоотология чумы. М.: Медицина, 1965. 363 с. [Natural focility and epizootologe of plague. Moscow:Medecine, 1965. 363 p. (In Russ.)]
  8. Сомов Г.П. Дальневосточная скарлатиноподобная лихорадка. М.:Медицина, 1979. 184 с. [Far Eastern Scarlet-like fever. Moscow:Medicine, 1979. 184 p. (In Russ.)].
  9. Сунцов В.В. “Квантовое” видообразование микроба чумы Yersinia pestis в гетероиммунной среде – популяциях гибернирующих сурков-тарбаганов (Marmota sibirica). Сиб. экол. журн. 2018. № 4. С. 379–394. DOI: 15372/SEJ20180401 [V. V. Suntsov. Quantum Speciation of Yersinia pestis Plague Microbe in a Heteroimmune Environment: In the Populations of Hibernating Tarbagan Marmots (Marmota sibirica). Contemporary Problems of Ecology, 2018, vol. 11, No. 4, pp. 343–354. DOI: 10.1134/S199542551804008X]
  10. Сунцов В.В. Исключительная роль специфической блохи сурков Oropsylla silantiewi (Ceratophyllidae: Siphonaptera) в видообразованиии микроба чумы – микроба Yersinia pestis. Паразитология, 2018, т. 52, № 1. С. 3–18. [Suntsov V.V. The exceptional role of the specific marmot flea Oropsylla silantiewi (Ceratophyllidae: Siphonaptera) in the speciation of the plague microbe Yersinia pestis. Parazitologia, 2018, vol. 1, pp. 3–18. (In Russ.)]
  11. Сунцов В.В. Происхождение чумы. Перспективы эколого-молекулярного генетического синтеза. Вестник РАН, 2019, т. 89, № 3. С. 260– doi.org/10.31857/S0869-5873893260-269 [V. V. Suntsov. Origin of the Plague: Prospects of Ecological–Molecular–Genetic Synthesis.  Herald of the Russian Academy of Sciences, 2019, Vol. 89, No. 3, pp. 271–278. DOI: 10.1134/S1019331619010118]
  12. Сунцов В.В. Перспективы синтеза молекулярно-генетического и экологического подходов к проблеме видообразования микроба чумы Yersinia pestis. Успехи совр. биол., 2020, т. 140, № 1, c. 43–57. DOI: 31857/S0042132420010068 [Suntsov V. V. Prospects for the Synthesis of Ecological and Molecular-Genetic Approaches to the Problem of the Speciation of the Plague Microbe Yersinia pestis. Biology Bulletin Reviews, 2020, Vol. 10, No. 4, pp. 324–337. DOI: 10.1134/S2079086420040088]
  13. Сунцов В.В. Гостальный аспект территориальной экспансии микроба чумы Yersinia pestis из популяций монгольского сурка-тарбагана (Marmota sibirica). Зоол. журн., 2020, т. 99, № 11, с. 1307–1320. DOI: 31857/S0044513420090160 [Suntsov V.V. Host Aspect of Territorial Expansion of the Plague Microbe Yersinia pestis from the Populations of the Tarbagan Marmot (Marmota sibirica). Biol. Bull., 2021, № 8, pp. 211–223.]
  14. Сунцов В.В. Политопное видообразование микроба чумы Yersinia pestis как причина филогенетической трихотомии в географических популяциях монгольского сурка-тарбагана (Marmota sibirica). Журн. общей биол., 2021, т. 82, № 6, с. 431– DOI: 10.31857/S0044459621060075 [Suntsov V.V. Polytopic speciation of the plague microbe Yersinia pestis as a cause of phylogenetic trichotomy in geographical populations of the Mongolian marmot-tarbagan (Marmota sibirica). Zhurnal obschey biologii, 2021, vol. 82, № 6, pp. 431–444. (In Russ.)]
  15. Сунцов В.В., Сунцова Н.И. Экологические аспекты эволюции микроба чумы Yersinia pestis и генезис природных очагов. Изв. РАН. Сер. биол., 2000, № 6, с. 645–657. [Suntsov V.V., Suntsova N.I. Ecological aspects of the evolution of the plague microbe Yersinia pestis and the genesis of natural foci. Biology Bulletin, 2000, v 27, № 6, pp. 541–552.]
  16. Сунцов В.В., Сунцова Н.И. Чума. Происхождение и эволюция эпизоотической системы (экологические, географические и социальные аспекты). М.: КМК, 2006. 247 с. [Suntsov V.V., Suntsova N.I. The Plague. Origin and Evolution of Epizootic system (ecological, geographical and social aspects). Moscow: KMK, 2006. 247 p.]
  17. Achtman M., Zurth K., Morelli G. Torrea G., Guiyoule A., Carniel Yersinia pestis, the cause of plague, is a recently emerged clone of Yersinia pseudotuberculosis. PNAS, 1999, vol. 96, № 24, pp. 14043–14048. DOI:10.1073/pnas.96.24.14043
  18. Achtman M., Morelli G., Zhu P., Wirth T., Diehl I., Kusecek B., Vogler A.J., Wagner D.M., Allender C.J., Easterday W.R., Chenal-Francisque V., Worsham P., Thomson N.R., Parkhill J., Lindler L.E., Carniel E., Keim P. Microevolution and history of the plague bacillus, Yersinia pestis. PNAS, 2004, V. 101, № 51. Р. 17837– doi10.1073pnas.0408026101
  19. Bouma H.R., Carey H.V., Kroese F.G.M. Hibernation: the immune system at rest? Leukoc. Biol., 2010, vol. 88, pp. 619–624. DOI: 10.1189/jlb.0310174
  20. Brandler O. Molecular diversity and taxonomy in marmots. 7th Intern. Conf. on the Genus Marmota “Marmots of the old and new world”, Ulan-Bator, 2018, pp. 97–104.
  21. Cui Y., Yu C., Yan Y., Li D., Li Y., Jombart T., Weinert L.A., Wang Z., Guo Z., Xu L., Zhang Y., Zheng H., Qin N., Xiao X., Wu M., Wang X., Zhou D., Qi Z Du Z., Wu H., Yang X., Cao H., Wang H., Wang J., Yao S., Rakin A., Li Y., Falush D., Balloux F., Achtman M., Song Y., Wang J., Yang R. Historical variations in mutation rate in an epidemic pathogen, Yersinia pestis. PNAS, 2013, vol. 110, № 2, pp. 577–582. org/10.1073/pnas.1205750110
  22. Demeure C.E., Dussurget O., Fiol G.M., Le Guern A.-S., Savin C., Pizarro-Cerdá J. Yersinia pestis and plague: An updated view on evolution, virulence determinants, immune subversion, vaccination, and diagnostics. Genes Immun., 2019, vol. 20, № 5, 357–370. doi.org/10.1038/s41435-019-0065-0
  23. Fukushima H., Gomyoda M., Hashimoto N., Takashima, Shubin F.N.,Isachikova L.M., Paik I.K., Zheng X.B. Putative origin of Yersinia pseudotuberculosis in western and eastern countries. A comparison of restriction endonuclease analysis of virulence plasmids. Int. J. Med. Microbiol., 1998, vol. 288, pp. 93–102. DOI: 10.1016/s0934-8840(98)80105-9
  24. Fukushima H., Matsuda Y., Seki R., Tsubokura M., Takeda N., Shubin F.N., Paik I.K., Zheng X.B. Geographical heterogeneity between Far Eastern and Western countries in prevalence of the virulence plasmid, the superantigen Yersinia pseudotuberculosis-derived mitogen, and the high-pathogenicity island among Yersinia pseudotuberculosis J. Clin. Microbiol., 2001, vol. 39, № 10, pp. 3541–3547. DOI: 10.1128/JCM.39.10.3541–3547.2001
  25. Kutyrev V.V., Eroshenko G.A., Motin V.L., Nosov N.Y., Krasnov J.M., KuklevaM., Nikiforov K.A., Al’kova Z.V., Oglodin E.G., Guseva N.P. Phylogeny and classification of Yersinia pestis through the lens of strains from the plague foci of Commonwealth of Independent States. Front. Microbiol., 2018, vol. 9, art. 1106. doi.org/10.3389/fmicb.2018.01106
  26. Morelli G., Song Y., Mazzoni C.J., Eppinger M., Roumagnac P., Wagner D.M., Feldkamp M., Kusecek B., Vogler A.J., Li Y., Cui Y., Thomson N.R., Jombart T., Leblois R., Lichtner P., Rahalison L., PetersenJ.M., Balloux F., Keim P., Wirth T., Rave J., Yang R., Carniel E., Achtman M. Yersinia pestis genome sequencing identifies patterns of global phylogenetic diversity. Nature Genetics, 2010, vol. 42, № 12, pp. 1140–1145. doi:10.1038/ng.705
  27. Octavia S., Lan R. The family Enterobacteriaceae. The Prokaryotes. Eds Rosenberg E., DeLong E.F., Lory S., Stackebrandt E., Thompson F. Berlin; Heidelberg: Springer, 2014. P. 225–286.
  28. Owen L.A., Richards B., Rhodes E.J. et al. Relict permafrost structures in the Gobi of Mongolia: age and significance . Quaternary Sci., 1998, vol. 13, № 6, pp. 539–547.
  29. Pisarenko S.V., Evchenko A.Yu., Kovalev D.A., M., Bobrysheva O.V., Shapakov N.A., Volynkina A.S., Kulichenko A.N. Yersinia pestis strains isolated in natural plague foci of Caucasus and Transcaucasia in the context of the global evolution of species. Genomics, 2021, vol. 113, pp. 1952–1961. doi.org/10.1016/j.ygeno.2021.04.021
  30. Prendergast B. J., Freeman D.A., Zucker I., Nelson R.J. Periodic arousal from hibernation is necessary for initiation of immune responses in ground squirrels. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol., 2002, vol. 282, №4, pp. 1054–1062. doi: 10.1152/ajpregu.00562.2001
  31. Rascovan N., Sjogren K.G., Kristiansen K., Nielsen R., Willerslev E., Desnues C., Rasmussen S. Emergence and Spread of Basal Lineages of Yersinia pestis during the Neolithic Decline. Cell, 2019, № 176, pp. 295–305. doi.org/10.1016/j.cell.2018.11.005
  32. Rasmussen S., Allentoft M.E., Nielsen K., Orlando L., Sikora M., Sjogren K.-G., Pedersen A.G., Schubert M., Dam A.V., Kapel C.M.O., Nielsen H.B., Brunak S., Avetisyan P., Epimakhov A., Khalyapin M.V., Gnuni A., Kriiska A., Lasak I., Metspalu M., Moiseyev V., Gromov A., Pokutta D., , Saag L., Varul L., Yepiskoposyan L., Sicheritz-Ponte T., Foley R.A., Lahr M.M., Nielsen R., Kristiansen K., Willerslev E. Early divergent strains of Yersinia pestis in Eurasia 5,000 years ago. Cell, 2015, № 163, pp. 571e82. doi.org/10.1016/j.cell.2015.10.009
  33. Riehm J.M., Vergnaud G., Kiefer D., Damdindorj T., Dashdavaa O., Khurelsukh T., Zoller L., Wolfe R., Le Fleche P., Scholz H.C. Yersinia pestis Lineages in Mongolia. PLoS ONE, 2012, vol. 7, № 2, e30624. doi:10.1371/ journal.pone.0030624
  34. Skurnik M., Peippo A., Ervela E. Characterization of the O-antigen gene cluster of Yersinia pseudotuberculosis and the cryptic O-antigen gene cluster of Yersinia pestis shows that the plague bacillus is most closely related to and has evolved from pseudotuberculosis serotype O:1b. Mol. Microbiol., 2000, vol. 37, № 2, pp. 316–330.
  35. Valtuena A.A., Neumann G.U., Spyrou M.A., Musralina L., Aronb F., Beisenov A., Belinskiy A.B., Bos K.I., Buzhilova A., Conrad M., j , Djansugurova L.B., Dobes M., Ernee M., Fernandez-Eraso J., Frohlich B., Furmanek M., Hałuszkon A., Hansen S., Harney E., Hiss A.N., Hubner A., Key F.M., Khussainova E., Kitov E., Kitova A.O., Knipper C., Kuhner D., Lalueza-Foxa C., Littleton J., b, Ken Massy K., Mittnik A., Mujika-Alustiza J.A., Olald I., Papac L., Penske S., Peska J., Pinhasi R., Reich D., Reinhold S., Stah R., Stauble H., Tukhbatova R.I., Vasilyev S., Veselovskaya E., Warinner C., Philipp W., Stockhammer P.W., Haak W., Krause J., Alexander Herbiga A. Stone Age Yersinia pestis genomes shed light on the early evolution, diversity, and ecology of plague. PNAS, 2022, vol. 119, № 17, e2116722119.org/10.1073/pnas.2116722119
  36. Wren B.W. The Yersinia – a model genus to study the rapid evolution of bacterial pathogens. Nat. Rev. Microbiol., 2003, vol.1, № 1, pp 55–64. doi:10.1038/nrmicro730

 

Адрес для переписки: Сунцов Виктор Васильевич, 119071, Россия, Москва, Ленинский просп., дом 33, Институт проблем экологии и эволюции им. А.Н. Северцова РАН.

Тел 8-985-17-18-904. E-mail: vvsuntsov@rambler.ru

×

About the authors

Viktor Vasilievich Suntsov

A.N. Severtsov Institute of Problems of Ecology and Evolution of Russian Academy of Science

Author for correspondence.
Email: vvsuntsov@rambler.ru
ORCID iD: 0000-0002-3346-494X

Doctor of Biological Sciences, Leading Researcher, Laboratory of Population Ecology

Russian Federation, 119071 Moscow Leninsky prosp. 33

References

  1. Балахонов С.В., Ярыгина М.Б., Гладких А.С., Миронова Л.В., Феранчук С.И., Бочалгин Н.О., Рождественский Е.Н., Витязева С.А., Нацагдорж Б., Цэрэнноров Д., Цогбадрах Н., Косилко С.А., Корзун В.М. Молекулярно-генетическая характеристика штаммов Yersinia pestis, выделенных на монгольской территории трансграничного Сайлюгемского природного очага чумы. Пробл. особо опасн. инф., 2019, № 3, с. 34–42. doi: 10.21055/0370-1069-2019-3-34-42 [Balakhonov S.V., Yarygina M.B., Gladkikh A.S., Mironova L.V., Feranchuk S.I., Bochalgin N.O., Rozhdestvensky E.N., Vityazeva S.A., Natsagdorzh B., Tserennorov D., Tsogbadrakh N., Kosilko S.A., Korzun V.M. Molecular-Genetic Characteristics of Yersinia pestis Strains Isolated in the Mongolian Territory of Transboundary Sailyugem Natural Plague Focus. Problems of Particularly Dangerous Infections, 2019, № 3, pp.34–42. (In Russ.) https://doi.org/10.21055/0370-1069-2019-3-34-42]
  2. Банников А.Г. Млекопитающие Монгольской Народной Республики. М.: Изд-во АН СССР, 1954. 670 с. [Bannikov A.G. Mammals of Mongol People Republic. Moscow:Acad. Sci. USSR, 1954. 670 p.]
  3. Ерошенко Г.А., Попов Н.В., Краснов Я.М., Никифоров К.А., Кузнецов А.А., Матросов А.Н., Кутырев В.В. Природный мегаочаг основного подвида Yersinia pestis античного биовара филогенетической ветви 4.ANT в Горном Алтае. Пробл. особо опасн. инф., 2018, № 2. С. 49–56. doi: 10.21055/0370-1069-2018-2-49-56 [Eroshenko G.A., Popov N.V., Krasnov Y.M., Nikiforov K.A., Kuznetsov A.A., Matrosov A.N., Kutyrev V.V. Natural Mega-Focus of Yersinia pestis Main Subspecies, Antique Biovar, Phylogenetic Line 4.ANT in Gorny Altai. Problems of Particularly Dangerous Infections, 2018, № 2, pp. 49–56. https://doi.org/10.21055/0370-1069-2018-2-49-56. (In Russ.)].
  4. Куклева Л.М., Шавина Н.Ю., Одиноков Г.Н., Оглодин Е.Г., Носов Н.Ю. Анализ разнообразия и определение геновариантов штаммов возбудителя чумы из очагов Монголии. Генетика, 2015, т. 51, № 3. С. 298–305. doi: 10.7868/S0016675815010063 [L. M. Kukleva, N. Yu. Shavina, G. N. Odinokov, E. G. Oglodin, N. Yu. Nosov, N. A. Vinogradova, N. P. Guseva, G. A. Eroshenko, and V. V. Kutyrev. Analysis of Diversity and Identification of the Genovariants of Plague Agent Strains from Mongolian Foci. Genetics, 2015, vol. 51, № 3, pp. 298–305. (In Russ).]
  5. Кучерук В.В. Вопросы палеогенезиса природных очагов чумы в связи с историей фауны грызунов. Фауна и экология грызунов, 1965, № 7. С. 5–86. [Kucheruk V.V. Issues of paleogenesis of natural foci of plague in connection with the history of the rodent fauna. Fauna and Ecology of Rodents, 1965, № 7, pp. 5–86. (In Russ.)]
  6. Павлова А.И., Ерошенко Г.А., Одиноков Г.Н., Куклева Л.М., Шавина Н.Ю., Краснов Я.М., Кутырев В.В. Анализ генетической изменчивости штаммов Yersinia pestis средневекового биовара из природных очагов чумы России и Монголии. Пробл. особо опасн. инф., 2012, № 114. С. 49–53. [A.I.Pavlova, G.A.Eroshenko, G.N.Odinokov, L.M.Koukleva, N.Yu.Shavina, Ya.M.Krasnov, V.V.KutyrevAnalysis of Genetic Variability of Yersinia pestis Strains (Medieval Biovar) Isolated in Natural Plague Foci of the Russian Federation and Mongolia. Problemy osobo opasnih inf., 2012, № 114, pp. 49–53. (In Russ.) ].
  7. Ралль Ю.М. Природная очаговость и эпизоотология чумы. М.: Медицина, 1965. 363 с. [Natural focility and epizootologe of plague. Moscow:Medecine, 1965. 363 p. (In Russ.)]
  8. Сомов Г.П. Дальневосточная скарлатиноподобная лихорадка. М.:Медицина, 1979. 184 с. [Far Eastern Scarlet-like fever. Moscow:Medicine, 1979. 184 p. (In Russ.)].
  9. Сунцов В.В. “Квантовое” видообразование микроба чумы Yersinia pestis в гетероиммунной среде – популяциях гибернирующих сурков-тарбаганов (Marmota sibirica). Сиб. экол. журн. 2018. № 4. С. 379–394. doi: 10.15372/SEJ20180401 [V. V. Suntsov. Quantum Speciation of Yersinia pestis Plague Microbe in a Heteroimmune Environment: In the Populations of Hibernating Tarbagan Marmots (Marmota sibirica). Contemporary Problems of Ecology, 2018, vol. 11, No. 4, pp. 343–354. doi: 10.1134/S199542551804008X]
  10. Сунцов В.В. Исключительная роль специфической блохи сурков Oropsylla silantiewi (Ceratophyllidae: Siphonaptera) в видообразованиии микроба чумы – микроба Yersinia pestis. Паразитология, 2018, т. 52, № 1. С. 3–18. [Suntsov V.V. The exceptional role of the specific marmot flea Oropsylla silantiewi (Ceratophyllidae: Siphonaptera) in the speciation of the plague microbe Yersinia pestis. Parazitologia, 2018, vol. 1, pp. 3–18. (In Russ.)]
  11. Сунцов В.В. Происхождение чумы. Перспективы эколого-молекулярного генетического синтеза. Вестник РАН, 2019, т. 89, № 3. С. 260–269. doi.org/10.31857/S0869-5873893260-269 [V. V. Suntsov. Origin of the Plague: Prospects of Ecological–Molecular–Genetic Synthesis. Herald of the Russian Academy of Sciences, 2019, Vol. 89, No. 3, pp. 271–278. doi: 10.1134/S1019331619010118]
  12. Сунцов В.В. Перспективы синтеза молекулярно-генетического и экологического подходов к проблеме видообразования микроба чумы Yersinia pestis. Успехи совр. биол., 2020, т. 140, № 1, c. 43–57. doi: 10.31857/S0042132420010068 [Suntsov V. V. Prospects for the Synthesis of Ecological and Molecular-Genetic Approaches to the Problem of the Speciation of the Plague Microbe Yersinia pestis. Biology Bulletin Reviews, 2020, Vol. 10, No. 4, pp. 324–337. doi: 10.1134/S2079086420040088]
  13. Сунцов В.В. Гостальный аспект территориальной экспансии микроба чумы Yersinia pestis из популяций монгольского сурка-тарбагана (Marmota sibirica). Зоол. журн., 2020, т. 99, № 11, с. 1307–1320. doi: 10.31857/S0044513420090160 [Suntsov V.V. Host Aspect of Territorial Expansion of the Plague Microbe Yersinia pestis from the Populations of the Tarbagan Marmot (Marmota sibirica). Biol. Bull., 2021, № 8, pp. 211–223.]
  14. Сунцов В.В. Политопное видообразование микроба чумы Yersinia pestis как причина филогенетической трихотомии в географических популяциях монгольского сурка-тарбагана (Marmota sibirica). Журн. общей биол., 2021, т. 82, № 6, с. 431–444. doi: 10.31857/S0044459621060075 [Suntsov V.V. Polytopic speciation of the plague microbe Yersinia pestis as a cause of phylogenetic trichotomy in geographical populations of the Mongolian marmot-tarbagan (Marmota sibirica). Zhurnal obschey biologii, 2021, vol. 82, № 6, pp. 431–444. (In Russ.)]
  15. Сунцов В.В., Сунцова Н.И. Экологические аспекты эволюции микроба чумы Yersinia pestis и генезис природных очагов. Изв. РАН. Сер. биол., 2000, № 6, с. 645–657. [Suntsov V.V., Suntsova N.I. Ecological aspects of the evolution of the plague microbe Yersinia pestis and the genesis of natural foci. Biology Bulletin, 2000, vol. 27, № 6, pp. 541–552.]
  16. Сунцов В.В., Сунцова Н.И. Чума. Происхождение и эволюция эпизоотической системы (экологические, географические и социальные аспекты). М.: КМК, 2006. 247 с. [Suntsov V.V., Suntsova N.I. The Plague. Origin and Evolution of Epizootic system (ecological, geographical and social aspects). Moscow: KMK, 2006. 247 p.]
  17. Achtman M., Zurth K., Morelli G. Torrea G., Guiyoule A., Carniel E. Yersinia pestis, the cause of plague, is a recently emerged clone of Yersinia pseudotuberculosis. PNAS, 1999, vol. 96, № 24, pp. 14043–14048. doi: 10.1073/pnas.96.24.14043
  18. Achtman M., Morelli G., Zhu P., Wirth T., Diehl I., Kusecek B., Vogler A.J., Wagner D.M., Allender C.J., Easterday W.R., Chenal-Francisque V., Worsham P., Thomson N.R., Parkhill J., Lindler L.E., Carniel E., Keim P. Microevolution and history of the plague bacillus, Yersinia pestis. PNAS, 2004, V. 101, № 51. Р. 17837–17842. doi10.1073pnas.0408026101
  19. Bouma H.R., Carey H.V., Kroese F.G.M. Hibernation: the immune system at rest? J. Leukoc. Biol., 2010, vol. 88, pp. 619–624. doi: 10.1189/jlb.0310174
  20. Brandler O. Molecular diversity and taxonomy in marmots. Proceed. 7th Intern. Conf. on the Genus Marmota “Marmots of the old and new world”, Ulan-Bator, 2018, pp. 97–104.
  21. Cui Y., Yu C., Yan Y., Li D., Li Y., Jombart T., Weinert L.A., Wang Z., Guo Z., Xu L., Zhang Y., Zheng H., Qin N., Xiao X., Wu M., Wang X., Zhou D., Qi Z Du Z., Wu H., Yang X., Cao H., Wang H., Wang J., Yao S., Rakin A., Li Y., Falush D., Balloux F., Achtman M., Song Y., Wang J., Yang R. Historical variations in mutation rate in an epidemic pathogen, Yersinia pestis. PNAS, 2013, vol. 110, № 2, pp. 577–582. doi.org/10.1073/pnas.1205750110
  22. Demeure C.E., Dussurget O., Fiol G.M., Le Guern A.-S., Savin C., Pizarro-Cerdá J. Yersinia pestis and plague: An updated view on evolution, virulence determinants, immune subversion, vaccination, and diagnostics. Genes Immun., 2019, vol. 20, № 5, pp. 357–370. doi.org/10.1038/s41435-019-0065-0
  23. Fukushima H., Gomyoda M., Hashimoto N., Takashima I., Shubin F.N., Isachikova L.M., Paik I.K., Zheng X.B. Putative origin of Yersinia pseudotuberculosis in western and eastern countries. A comparison of restriction endonuclease analysis of virulence plasmids. Int. J. Med. Microbiol., 1998, vol. 288, pp. 93–102. doi: 10.1016/s0934-8840(98)80105-9
  24. Fukushima H., Matsuda Y., Seki R., Tsubokura M., Takeda N., Shubin F.N., Paik I.K., Zheng X.B. Geographical heterogeneity between Far Eastern and Western countries in prevalence of the virulence plasmid, the superantigen Yersinia pseudotuberculosis-derived mitogen, and the high-pathogenicity island among Yersinia pseudotuberculosis strains. J. Clin. Microbiol., 2001, vol. 39, № 10, pp. 3541–3547. doi: 10.1128/JCM.39.10.3541–3547.2001
  25. Kutyrev V.V., Eroshenko G.A., Motin V.L., Nosov N.Y., Krasnov J.M., Kukleva L.M., Nikiforov K.A., Al’kova Z.V., Oglodin E.G., Guseva N.P. Phylogeny and classification of Yersinia pestis through the lens of strains from the plague foci of Commonwealth of Independent States. Front. Microbiol., 2018, vol. 9, art. 1106. doi.org/10.3389/fmicb.2018.01106
  26. Morelli G., Song Y., Mazzoni C.J., Eppinger M., Roumagnac P., Wagner D.M., Feldkamp M., Kusecek B., Vogler A.J., Li Y., Cui Y., Thomson N.R., Jombart T., Leblois R., Lichtner P., Rahalison L., PetersenJ.M., Balloux F., Keim P., Wirth T., Rave J., Yang R., Carniel E., Achtman M. Yersinia pestis genome sequencing identifies patterns of global phylogenetic diversity. Nature Genetics, 2010, vol. 42, № 12, pp. 1140–1145. doi: 10.1038/ng.705
  27. Octavia S., Lan R. The family Enterobacteriaceae. The Prokaryotes. Eds Rosenberg E., DeLong E.F., Lory S., Stackebrandt E., Thompson F. Berlin; Heidelberg: Springer, 2014. P. 225–286.
  28. Owen L.A., Richards B., Rhodes E.J. et al. Relict permafrost structures in the Gobi of Mongolia: age and significance . J. Quaternary Sci., 1998, vol. 13, № 6, pp. 539–547.
  29. Pisarenko S.V., Evchenko A.Yu., Kovalev D.A., EvchenkoY.M., Bobrysheva O.V., Shapakov N.A., Volynkina A.S., Kulichenko A.N. Yersinia pestis strains isolated in natural plague foci of Caucasus and Transcaucasia in the context of the global evolution of species. Genomics, 2021, vol. 113, pp. 1952–1961. doi.org/10.1016/j.ygeno.2021.04.021
  30. Prendergast B. J., Freeman D.A., Zucker I., Nelson R.J. Periodic arousal from hibernation is necessary for initiation of immune responses in ground squirrels. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol., 2002, vol. 282, №4, pp. 1054–1062. doi: 10.1152/ajpregu.00562.2001
  31. Rascovan N., Sjogren K.G., Kristiansen K., Nielsen R., Willerslev E., Desnues C., Rasmussen S. Emergence and Spread of Basal Lineages of Yersinia pestis during the Neolithic Decline. Cell, 2019, № 176, pp. 295–305. doi.org/10.1016/j.cell.2018.11.005
  32. Rasmussen S., Allentoft M.E., Nielsen K., Orlando L., Sikora M., Sjogren K.-G., Pedersen A.G., Schubert M., Dam A.V., Kapel C.M.O., Nielsen H.B., Brunak S., Avetisyan P., Epimakhov A., Khalyapin M.V., Gnuni A., Kriiska A., Lasak I., Metspalu M., Moiseyev V., Gromov A., Pokutta D., , Saag L., Varul L., Yepiskoposyan L., Sicheritz-Ponte T., Foley R.A., Lahr M.M., Nielsen R., Kristiansen K., Willerslev E. Early divergent strains of Yersinia pestis in Eurasia 5,000 years ago. Cell, 2015, № 163, pp. 571e82. doi.org/10.1016/j.cell.2015.10.009
  33. Riehm J.M., Vergnaud G., Kiefer D., Damdindorj T., Dashdavaa O., Khurelsukh T., Zoller L., Wolfe R., Le Fleche P., Scholz H.C. Yersinia pestis Lineages in Mongolia. PLoS ONE, 2012, vol. 7, № 2, e30624. doi:10.1371/ journal.pone.0030624
  34. Skurnik M., Peippo A., Ervela E. Characterization of the O-antigen gene cluster of Yersinia pseudotuberculosis and the cryptic O-antigen gene cluster of Yersinia pestis shows that the plague bacillus is most closely related to and has evolved from Y. pseudotuberculosis serotype O:1b. Mol. Microbiol., 2000, vol. 37, № 2, pp. 316–330.
  35. Valtuena A.A., Neumann G.U., Spyrou M.A., Musralina L., Aronb F., Beisenov A., Belinskiy A.B., Bos K.I., Buzhilova A., Conrad M., j , Djansugurova L.B., Dobes M., Ernee M., Fernandez-Eraso J., Frohlich B., Furmanek M., Hałuszkon A., Hansen S., Harney E., Hiss A.N., Hubner A., Key F.M., Khussainova E., Kitov E., Kitova A.O., Knipper C., Kuhner D., Lalueza-Foxa C., Littleton J., b, Ken Massy K., Mittnik A., Mujika-Alustiza J.A., Olald I., Papac L., Penske S., Peska J., Pinhasi R., Reich D., Reinhold S., Stah R., Stauble H., Tukhbatova R.I., Vasilyev S., Veselovskaya E., Warinner C., Philipp W., Stockhammer P.W., Haak W., Krause J., Alexander Herbiga A. Stone Age Yersinia pestis genomes shed light on the early evolution, diversity, and ecology of plague. PNAS, 2022, vol. 119, № 17, e2116722119. doi.org/10.1073/pnas.2116722119
  36. Wren B.W. The Yersinia – a model genus to study the rapid evolution of bacterial pathogens. Nat. Rev. Microbiol., 2003, vol.1, № 1, pp 55–64. doi: 10.1038/nrmicro730

Supplementary files

There are no supplementary files to display.


Copyright (c) Suntsov C.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 64788 от 02.02.2016.


This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies