Оценка метода мультиплексного выявления антител к возбудителям инфекционных заболеваний
- Авторы: Полтавченко А.Г.1, Нечитайло О.В.1, Филатов П.В.1, Ерш А.В.1
-
Учреждения:
- ФБУН Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор»
- Выпуск: Том 9, № 1 (2019)
- Страницы: 209-215
- Раздел: КРАТКИЕ СООБЩЕНИЯ
- Дата подачи: 27.02.2018
- Дата принятия к публикации: 06.03.2019
- Дата публикации: 30.03.2019
- URL: https://iimmun.ru/iimm/article/view/614
- DOI: https://doi.org/10.15789/2220-7619-2019-1-209-215
- ID: 614
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Первичное обследование групп населения с повышенным риском заражения инфекционными заболеваниями (ИЗ) предполагает выполнение ряда анализов с использованием моноспецифических диагностических систем и представляет собой длительную, трудоемкую и дорогостоящую процедуру. Ранее нами разработан мультиплексный тест, позволяющий оперативно и недорого проводить комплексное первичное тестирование. Создан набор, позволяющий одновременно выявлять в препаратах крови антитела к 6 возбудителям ИЗ: вирусу иммунодефицита человека, вирусам гепатитов B и C, цитомегаловирусу, Treponema pallidum и Toxoplasma gondii. Набор основан на мультиплексном дот-иммуноанализе на плоских белковых матрицах (иммуночипах) с использованием конъюгатов коллоидного золота и серебряного проявления. Он позволяет выполнять комплексный анализ при комнатной температуре в течение 70 мин и не требует высокой квалификации оператора. В настоящей статье представлены результаты лабораторных испытаний экспериментального образца мультиплексного набора в сравнении с наборами для иммуноферментного анализа (ИФА) пяти российских производителей с использованием массива из 240 образцов препаратов крови, включающих 200 клинических проб сывороток (плазмы) крови от больных ИЗ и 40 образцов плазмы доноров. Показано, что мультиплексный тест обладает чувствительностью и специфичностью анализа не менее 95%, а оптические сигналы дот-анализа хорошо коррелируют с показателями оптической плотности, полученными с использованием коммерческих наборов для ИФА, и позволяют проводить полуколичественную оценку содержания специфических антител в образце. При этом мультиплексный дот-анализ более оперативен и экономичен, по сравнению с ИФА и может выполняться во внелабораторных условиях. Набор для мультиплексного дот-иммуноанализа антител может обеспечить комплексный подход к диагностике ИЗ, значительно облегчить проведение первичного тестирования, сделать его более оперативным и доступным для пациентов.
Об авторах
А. Г. Полтавченко
ФБУН Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор»
Email: poltav@vector.nsc.ru
Полтавченко Александр Георгиевич - доктор биологических наук, заведующий лабораторией иммунохимической диагностики.
630559, Новосибирская обл., п. Кольцово.
Тел./факс: 8 (383) 336-74-09 (служебн.); 8 (913) 735-91-74 (моб.).
SPIN-код: 9153-2935
РоссияО. В. Нечитайло
ФБУН Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор»
Email: nechitaylo_ov@vector.nsc.ru
Нечитайло Олег Вячеславович - стажер-исследователь лаборатории иммунохимической диагностики.
630559, Новосибирская обл., п. Кольцово.
РоссияП. В. Филатов
ФБУН Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор»
Email: medic@sibmail.ru
ORCID iD: 0000-0001-7763-3808
Филатов Павел Владимирович - кандидат биологических наук, научный сотрудник лаборатории иммунохимической диагностики.
630559, Новосибирская обл., п. Кольцово.
РИНЦ - 781254
SPIN-код: 2055-2826
Researcher ID: O-8653-2014
Scopus Author ID: 54882522300
РоссияА. В. Ерш
ФБУН Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор»
Автор, ответственный за переписку.
Email: ersh_av@vector.nsc.ru
Ерш Анна Васильевна - кандидат биологических наук, научный сотрудник лаборатории иммунохимической диагностики.
630559, Новосибирская обл., п. Кольцово.
РоссияСписок литературы
- Ляужева Ф.М., Тленкопачев Р.С., Жибурт Е.Б. Выбраковка доноров по маркерам инфекций в Кабардино-Балкарской Республике // Трансфузиология. 2014. № 4. С. 32–36.
- Полтавченко А.Г., Ерш А.В., Пьянков С.А., Никонов А.М., Волков Г.Н, Кривенчук Н.А. Многопрофильная серодиагностика инфекционных заболеваний. Инструментальный учет результатов анализа // Биотехнология. 2013. № 4. С. 74–82.
- Burgess S.T.G., Kenyon F., O’Looney N., Ross A.J., Kwan M.C., Beattie J.S., Petrik J., Ghazal P., Campbell J.C. A multiplexed protein microarray for the simultaneous serodiagnosis of human immunodeficiency virus/hepatitis C virus infection and typing of whole blood. Anal. Biochem., 2008, vol. 382, pp. 9–15. doi: 10.1016/j.ab.2008.07.017
- Corstjens P.L.A.M., Chen Z., Zuiderwijk M., Bau H.H., Abrams W.R., Malamud D., Niedbala R.S., Tanke H.J. Rapid assay format for multiplex detection of humoral immune responses to infectious disease pathogens (HIV, HCV, and TB). Ann. N.Y. Acad. Sci., 2007, vol. 1098, pp. 437–445. doi: 0.1196/annals.1384.016
- Ellington A.A., Kullo I.J., Bailey K.R., Klee G.G. Antibody-based protein multiplex platforms: technical and operational challenges. Clin. Chem., 2010, vol. 56, pp. 186–194. doi: 10.1373/clinchem.2009.127514
- Hartmann M., Roeraade J., Stoll D., Templin M.F., Joos T.O. Protein microarrays for diagnostic assays. Anal. Bioanal. Chem., 2009, vol. 393, pp. 1407–1416. doi: 10.1007/s00216-008-2379-z
- Len O., Garzoni C., Lumbreras C., Molina I., Meije Y., Pahissa A., Grossi P. Recommendations for screening of donor and reci- pient prior to solid organ transplantation and to minimize transmission of donor-derived infections. Clin. Microbiol. Infect., 2014, vol. 20, iss. 7, pp. 10 –18. doi: 10.1111/1469-0691.12557
- Lochhead M.J., Todorof K., Delaney M., Ives J.T., Greef C., Moll K., Rowley K., Vogel K., Myatt C., Zhang X.Q., Logan C., Benson C., Reed S., Schooley R.T. Rapid multiplexed immunoassay for simultaneous serodiagnosis of HIV-1 and coinfections. J. Clin. Microbiol., 2011, vol. 49, pp. 3584–3590. doi: 10.1128/JCM.00970-11
- Myyrylainen T., Talha S.M., Swaminathan S., Vainionpaa R., Soukka T., Khanna N., Pettersson K. Simultaneous detection of human immunodeficiency virus 1 and hepatitis B virus infections using a dual-label time-resolved f luorometric assay. J. Nanobiotechnol., 2010, vol. 8, pp. 27–32. doi: 10.1186/1477-3155-8-27
- Petrik J. Diagnostic applications of microarrays. Transfus. Med., 2006, vol. 16, pp. 233–247. doi: 10.1111/j.1365-148.2006.00673.x
- Poltavchenko A.G., Nechitaylo O.V., Filatov P.V., Ersh A.V., Gureyev V.N. Multiplex method for initial complex testing of antibodies to blood transmitted diseases agents. J. Virol. Meth., 2016, vol. 236, pp. 231–236. doi: 10.1016/j.jviromet.2016.08.003
- Poltavchenko A.G., Zaitsev B.N., Ersh A.V., Korneev D.V., Taranov O.S., Filatov P.V., Nechitaylo O.V. The selection and optimization of the detection system for self-contained multiplexed dot-immunoassay. J. Immunoassay Immunochem., 2016, vol. 37, pp. 540 –554. doi: 10.1080/15321819.2016.1174134
- Talha S.M., Saviranta P., Hattara L., Vuorinen T., Hytönen J., Khanna N., Pettersson K. Array-in-well platform-based multiplex assay for the simultaneous detection of anti-HIV- and treponemal-antibodies, and hepatitis B surface antigen. J. Immunol. Meth., 2016, vol. 429, pp. 21–27. doi: 10.1016/j.jim.2015.12.007
- Tighe P.J., Ryder R.R., Todd I., Fairclough L.C. ELISA in the multiplex era: potentials and pitfalls. Proteomics Clin. Appl., 2015, vol. 9, pp. 406–422. doi: 10.1016/j.jim.2015.12.007
- Wong J., Sibani S., Lokko N.N., LaBaer J., Anderson K.S. Rapid detection of antibodies in sera using multiplexed self-assembling bead arrays. J. Immunol. Meth., 2009, vol. 350, pp. 171–182. doi: 10.1016/j.jim.2009.08.013