Комплексный препарат на основе антибиотика, кластерного серебра и бактериофага для лечения инфекционных заболеваний, вызванных Staphylococcus aureus,в том числе MRSA-штаммами

Обложка


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Проблемы бактериальных инфекций в медицине и ветеринарии требуют тщательного изучения и быстрого решения. Из-за постоянного, а в ряде случаев нерационального применения антибиотиков, эффективность их воздействия на организм заметно падает, кроме того, устойчивость к антибактериальным препаратам неуклонно растет, появляются антибиотикорезистентные штаммы, которые не поддаются общепринятому медикаментозному лечению. Беспрецедентный рост устойчивости патогенных бактерий к антибиотикам требует создания новых лекарственных средств для борьбы с ними. Одним из способов повышения эффективности антибактериальной терапии является применение комбинированных препаратов. Комбинированные лекарственные формы обеспечивают повышение терапевтического эффекта и не должны быть токсичными для организма. Для преодоления резистентности микроорганизмов, снижения нагрузки антибиотиков на организм, нами предложен комплексный препарат на основе антибиотика, кластерного серебра и специфического бактериофага для лечения инфекционных заболеваний, вызванных S. aureus, в том числе MRSA-штаммов. Каждый компонент уже хорошо зарекомендовал себя при лечении инфекционных заболеваний, вызываемых патогенными микроорганизмами. Но при использовании этого комплексного препарата появилась возможность снизить количество антибиотика и избавиться от антибиотикорезистентных и фагоустойчивых форм бактерий. В результате исследования показана эффективность применения комплексного препарата на бактериях S. aureus MRSA, при снижении количества антибиотика в такой композиции в 2–4 раза по сравнению с использованием только антибиотика. Эффективность препарата, содержащего 10 мкг/мл гентамицина, 7 мкг/мл кластерного серебра и 106 БОЕ/мл бактериофага, на бактериях S. aureus MRSA в суспензии сравнима с эффективностью гентамицина с концентрацией 40 мкг/мл. Для бактерий S. aureus 209 и S. aureus ssp., с пониженной резистентностью к антибиотикам, использование двухкомпонентных композиций (антибиотик + кластерное серебро; антибиотик + бактериофаг) также дает возможность снизить концентрацию антибиотика в 2–3 раза. Необходимо отметить, что увеличение количества кластерного серебра в 4–5 раз при постоянном количестве антибиотика усиливает бактерицидные свойства полученных препаратов. Повторное внесение дозы препарата позволяет добиться значительного снижения концентрации патогенных микроорганизмов в исследуемой суспензии. Данный препарат не имеет ограничений в зависимости от состояния и степени резистентности микроорганизма.

Полный текст

Введение

Существует целый ряд заболеваний, вызываемых бактериями Staphylococcus aureus. Наиболее распространенными заболеваниями, причиной которых может стать золотистый стафилококк, являются заболевания желудочно-кишечного тракта, верхних дыхательных путей, кожные болезни, раневые инфекции, а также пневмонии при внутрибольничных инфекциях. Среди факторов патогенности стафилококков выделяют как структурные компоненты клеток — капсула, белки клеточной стенки, так и секретируемые молекулы — экзотоксины, экзоферменты.

Существенным является возможное взаимодействие между Staphylococcus aureus и респираторными вирусами в дыхательных путях.

Долгое время препаратами для лечения инфекций, вызванных S. aureus, оставались бета-лактамные антибиотики. Однако в последнее время все чаще выявляется золотистый стафилококк, устойчивый к этой группе препаратов (в том числе MRSA (methicillin-resistant S. aureus) — бактерии, устойчивые к метициллину) [3]. Устойчивость микроорганизмов к бета-лактамным препаратам в одних случаях объясняется продукцией бета-лактамазы расширенного спектра (БЛРС), а в других — с наличием специфического белка ПСБ2а (пенициллинсвязывающего белка). Кроме того, низкую эффективность терапии хронических бактериальных инфекций можно объяснить образованием ими биопленок, которые препятствуют проникновению антибиотиков. К настоящему времени достоверно доказана роль микробных биопленок в возникновении и развитии ряда широко распространенных заболеваний. К ним относятся инфекции, связанные с катетеризацией сосудов, вызванные S. aureus и другими грамположительными микроорганизмами; инфекции сердечных клапанов и суставных протезов, вызываемые стафилококками; пародонтит, обусловленный рядом микроорганизмов полости рта; инфекции мочевых путей, обусловленные Еscherichia coli, и другими патогенами; инфекции среднего уха, причиной которых может быть, например, Haemophilus influenzae; инфекционные осложнения муковисцидоза, вызываемые Pseudomonas аeruginosa и др. Все эти заболевания с трудом поддаются терапии, имеют высокую частоту рецидивов, некоторые из них могут явиться причиной летальных исходов [6]. Поэтому стоит задача разработки новых препаратов для медицины и ветеринарии. Изучаются возможности использования комбинированных препаратов. Цель комбинированной антибиотикотерапии — достижение синергидного и аддитивного эффектов и расширение спектра антибиотической активности.

Препараты антибактериального действия на основе бактериофагов (БФ) — перспективное направление лечения широкого спектра бактериальных инфекции у животных и человека. Достоинство таких препаратов заключается в высокой специфичности фагов, чувствительности к ним патогенной микрофлоры, эффективность в терапии хронических инфекций, особенно ассоциированных с образованием бактериальных биопленок, сочетаемости со всеми видами традиционной антибактериальной терапии, отсутствии противопоказаний к фагопрофилактике и фаготерапии, отсутствии аллергических реакций, низкой токсичности, отсутствии влияния на нормальную бактериальную флору кишечника и препараты пробиотиков, что дает возможность для их совместного применения [2]. Бактериофаги стимулируют активизацию факторов специфического и неспецифического иммунитета, что усиливает их эффективность в терапии хронических инфекций [4, 8].

Антибактериальная активность ионов серебра обусловлена его взаимодействием с мембраносвязанными и ДНК-связанными белками,что приводит к нарушению функционирования бактерии. Также ионы серебра способствуют образованию активных форм кислорода, что приводит к процессу окисления [5]. Установлено усиление бактерицидного эффекта в результате комплексного воздействия на S. aureus раствора коллоидного серебра и неомицина [1]. Использование наночастиц серебра в комплексе с бактериофагом и антибиотиком дает возможность снизить концентрацию последнего без потери антибактериальной активности [4].

В связи с высоким распространением MRSA-штаммов, когда лечение рекомендованными антибиотиками оказывается неэффективным, альтернативным средством может быть комплексный препарат, где действие антибиотика усиливается такими компонентами как бактериофаги, ионы металлов, муколитики или бактериоцины.

Наша стратегия создания новых антибактериальных препаратов заключалась в использовании комбинации вирулентного БФ, препарата, усиливающего его эффективность, — кластерного серебра (КлС) и антибиотика широкого спектра действия, применение которых не вызывает появления устойчивых форм бактерий S. aureus на суспензионной культуре и биопленках [9, 10].

Материалы и методы

Объектами исследования были три штамма бактерий S. aureus из коллекции ГНЦВБ «Вектор»: S. aureus 209; S. aureus spp.; S. aureus MRSA; штамм бактериофага С-47, специфичный к S. aureus.

В работе были использованы антибиотики — гентамицин (ГМН) производства «Биолот» и цефтазидим (ЦАЗ) производства АО «Рафарма», набор дисков индикаторных с антибиотиком ООО «НИЦФ», препарат КлС отечественного производства ООО НПЦ «Вектор-Вита». Питательные среды — Invitrogen™ LB Broth base, Difco™ LB Agar.

Чувствительность бактерий к антибиотическим препаратам определяли диско-диффузионным методом, а минимальную подавляющую концентрацию (МПК) препаратов в суспензионной культуре — методом серийных разведений в бульоне [7].

Суспензию бактерий для экспериментов готовили разведением «ночной» культуры, выращенной в LB-бульоне, до необходимых концентраций. Суспензию бактерий и опытные образцы культивировали на качалке при 37°С, 160 об/мин. Отбор проб осуществляли через 3 и 24 ч. Для определения концентрации бактерий делали десятикратные разведения образцов и высевали на чашки Петри с LB-агаром, которые инкубировали в термостате на 37°С, 24 ч. Для определения концентрации БФ использовали метод агаровых слоев по Грациа.

Все эксперименты проводили в трех повторностях. Статистическую обработку проводили на компьютере с использованием критерия Стьюдента.

Рабочие концентрации подготовленных препаратов:

  • A – 7,5 мкг/мл ГМН + 7 мкг/мл КлС + 106 БОЕ/мл БФ;
  • B — 10 мкг/мл ГМН + 1,7 мкг/мл КлС + 106 БОЕ/мл БФ;
  • C — 10 мкг/мл ГМН + 7 мкг/мл КлС + 106 БОЕ/мл БФ;
  • D — 10 мкг/мл ГМН + 10 мкг/мл КлС + 106 БОЕ/мл БФ;
  • E — 20 мкг/мл ГМН + 3,5 мкг/мл КлС + 106 БОЕ/мл БФ;
  • F — 10 мкг/мл ГМН + 3,5 мкг/мл КлС + 106 БОЕ/мл БФ;
  • G — 5 мкг/мл ГМН + 3,5 мкг/мл КлС + 106 БОЕ/мл БФ;
  • H — 5 мкг/мл ГМН + 1,7 мкг/мл КлС + 5 × 105 БОЕ/мл БФ;
  • M — 2 мкг/мл ГМН + 0,8 мкг/мл КлС + 2 × 105 БОЕ/мл БФ;
  • К — 20 мкг/мл ЦАЗ + 3,5 мкг/мл КлС + 106 БОЕ/мл БФ.

Результаты

Частое и бесконтрольное использование антибиотиков приводит к возникновению множественной устойчивости бактерий к препаратам, снижению эффективности антибактериальной терапии, необходимости применения комбинации известных лекарственных средств, обладающих синергидным действием.

Предложен для использования трехкомпонентный препарат, обладающий бактерицидным действием в отношении патогенных микроорганизмов S. aureus, показана возможность соединения компонентов, имеющих принципиально разные механизмы антимикробного действия, для снижения дозы антибиотика при сочетанном использовании их с КлС и БФ.

Исследовали влияние препарата и отдельных его компонентов на динамику роста патогенных бактерий.

В экспериментах показано, что внесение БФ С-47 к суспензионным культурам S. aureus 209; S. aureus spp., S. aureus MRSA приводит к развитию фаговых частиц, урожай фага достигает 108–109 БОЕ/мл, при этом остаются устойчивые бактерии, способные к инфекции, в количестве 105–106 КОЕ/мл.

Показано, что внесение КлС в количестве от 3,5 до 10 мкг/мл к суспензионным культурам S. aureus 209; S. aureus spp., S. aureus MRSA с концентрацией 104–106 КОЕ/мл бактериостатического и бактерицидного эффекта не оказывает. Динамика роста подобна контрольным образцам.

Исследование антибиотической устойчивости бактерий S. aureus диско-диффузионным методом показало, что штаммы S. aureus 209 и S. aureus spp. чувствительны ко всем использованным антибиотикам — оксациллин 1 мкг, ванкомицин 30 мкг, цефтазидим (ЦАЗ) 30 мкг, эритромицин 15 мкг, бензилпенициллин 10 ЕД, гентамицин (ГМН) 10 мкг, ципрофлоксацин 5 мкг, клиндамицин 2 мкг, левофлоксацин 5 мкг, тогда как S. aureus MRSA проявляет чувствительность лишь к ванкомицину и ГМН.

Для суспензионной культуры S. aureus MRSA с концентрацией 104–106 КОЕ/мл количество ГМН от 10 до 30 мкг/мл не является бактерицидным, а для бактерии S. aureus 209; S. aureus spp. в количестве до 106 КОЕ/мл концентрации ГМН от 5 до 7,5 мкг/мл являются бактерицидными, выше 106 КОЕ/мл — бактериостатическими.

На основании полученных данных предложен комплексный препарат на основе антибиотика, КлС и БФ C-47 для лечения инфекционных заболеваний, вызванных S. aureus, в том числе MRSA-штаммов.

Подготовили разные варианты препаратов и апробировали их на штаммах бактерий S. aureus.

Исследование показало, что при обработке суспензии бактерий S. aureus MRSA с концентрациями от 103 до 5 × 104 КОЕ/мл, препаратами A, B, C, D, E уже через 3 ч наблюдается бактерицидный эффект. Через 24 ч жизнеспособные бактерии в суспензии отсутствуют.

Препараты A, B оказывают бактериостатический эффект на суспензионную культуру с концентрацией бактерий от 7 × 104 до 5 × 106 КОЕ/мл (рис. 1). Увеличение количества как антибиотика, так и КлС оказывает бактерицидный эффект на бактерии с концентрацией от 7 × 104 до 5 × 105 КОЕ/мл (рис. 1, образцы 3, 4, 5, 8, 9, 10) в течение 24 ч. Бактериостатический эффект наблюдается и при использовании более высокой концентрации бактерий (рис. 1, образцы 11–15).

 

Рисунок 1. Динамика роста Staphylococcus aureus MRSA в присутствии препаратов

Примечание. Образцы: 16 — контроль, исходная концентрация бактерий 104 КОЕ/мл; 1–5 с исходной концентрацией бактерий 7 × 104 КОЕ /мл; образцы 6–10 с исходной концентрацией 7 × 105 КОЕ /мл; образцы 11–15 с исходной концентрацией 5 × 106 КОЕ /мл. К образцам 1, 6, 11 добавлен препарат А; к образцам 2, 7, 12 — препарат В; к образцам 3, 8, 13 — препарат С; к образцам 4, 9, 14 — препарат D; к образцам 5, 10, 15 — препарат E.

 

Исследования показывают, что увеличение количества КлС от 1,7 до 10 мкг/мл при постоянной концентрации ГМН 10 мкг/мл позволяет снижать концентрацию бактерий S. aureus MRSA до нулевых значений (рис. 2).

 

Рисунок 2. Бактерицидное действие препарата на S. aureus MRSA в зависимости от количества кластерного серебра

Примечание. Образы: 1 — контроль; 2–4 с исходной концентрацией 7 × 104 КОЕ /мл; 5–7 с исходной концентрацией 7 × 105 КОЕ /мл. К образцам 2, 5 — добавлен препарат B; к образцам 3, 6 — препарат С; к образцам 4, 7 — препарат D.

 

Показано, что бактерицидный эффект достигается обработкой суспензионной культуры S. aureus 209 с концентрацией 104–105 КОЕ/мл препаратами F, G, H, а бактериостатический — препаратом M. Для бактерий в более высокой концентрации — 106 КОЕ/мл — бактерицидным действием обладает лишь препарат F (рис. 3).

 

Рисунок 3. Динамика роста S. aureus 209 в присутствии препаратов

Примечание. Образец 1 — контроль; образцы 2–5 с исходной концентрацией 104 КОЕ/мл; образцы 6–9 с исходной концентрацией 105 КОЕ/мл; образцы 10–12 с исходной концентрацией 106 КОЕ/мл. К образцам 2, 6 добавлен препарат M; к образцам 3, 7, 10 — препарат H; к образцам 4, 8, 11 — препарат G; к образцам 5, 9, 12 — препарат F.

 

Для S. aureus ssp. получены аналогичные результаты: бактерицидный эффект установлен при обработке суспензионной культуры S. aureus ssp. с концентрацией 104–105 КОЕ/мл препаратами F, G, H, а бактериостатический — препаратом M. Для бактерий в более высокой концентрации — 106 КОЕ/мл — бактерицидным действием обладают препараты F, G.

Исследования бактерицидного действия препарата и комбинации отдельных его компонентов показали, что в отношении суспензионной культуры S. aureus MRSA с концентрацией 104–105 КОЕ/мл высокой эффективностью обладает предложенный трехкомпонентный препарат, в отличие от двухкомпонентных композиций, например ГМН + КлС или ГМН + БФ, поскольку только в этом случае наблюдается устойчивый бактерицидный эффект.

Для суспензионных культур S. aureus 209 и S. aureus ssp. с концентрацией 104–105 КОЕ/мл показана возможность использования двухкомпонентных композиций, например антибиотик + КлС, антибиотик + БФ, в связи с пониженной резистентностью данных микроорганизмов. Показано, что использование ЦАЗ в сочетании с КлС или БФ при концентрациях патогенов 104–105 КОЕ/мл дает результат подобный использованию препарата антибиотик + КлС + БФ. Но при увеличении концентрации бактерий использование трехкомпонентного препарата остается единственно возможным вариантом.

Подобные результаты получены в работе с S. aureus 209 и S. aureus ssp. при использовании препарата К, содержащего ЦАЗ: 20 мкг/мл ЦАЗ + 3,5 мкг/мл КлС + 106 БОЕ/мл БФ. Двухкомпонентные смеси готовили в соответствии с используемыми препаратами: 20 мкг/мл ЦАЗ + 3,5 мкг/мл КлС; 20 мкг/мл ЦАЗ + 106 БОЕ/мл БФ. При внесении одного антибиотика показано снижение концентрации бактерий на два порядка через 24 ч инкубирования, что соответствует воздействию трехкомпонентного препарата через 3 ч. Через 24 ч инкубирования в образцах, обработанных препаратами (двух- и трехкомпонентные композиции) живые бактерии отсутствовали.

Необходимо отметить, что препараты, приготовленные на основе разных антибиотиков, обладают стабильным, пролонгированным действием.

В работе показано, что повторное внесение дозы препарата позволяет добиться снижения концентрации патогенных микроорганизмов в исследуемой суспензии. При использовании препаратов А и С на суспензии бактерий S. aureus MRSA с исходной концентрацией 2,6 × 105 КОЕ/мл показано, что однократное внесение препарата оказывает бактериостатический эффект — в суспензии остается 104–105 КОЕ/мл, повторная обработка приводит к снижению концентрации бактерий до нуля. Следовательно, даже для бактерий S. aureus MRSA возможно использование препарата с минимальным количеством антибиотика (7–10 мкг/мл), чтобы достичь бактерицидного эффекта.

Анализ экспериментальных данных показал возможность эффективной борьбы с метициллинрезистентными бактериями — S. aureus MRSA. Обработка бактерий S. aureus MRSA с концентрацией до 106 КОЕ/мл препаратами, содержащими 10–20 мкг/мл ГМН, приводит к их гибели, тогда как использование только антибиотика в таком же количестве не влияет на рост бактерий. При увеличении концентрации бактерий данные препараты оказывают бактериостатический эффект. При обработке S. aureus 209 и S. aureus ssp. препаратом, содержащим 2 мкг/мл ГМН отмечается бактериостатический эффект, а от 5 до 10 мкг/мл — бактерицидный. Для бактерий с более высокой концентрацией — выше 106 КОЕ/мл рекомендуется использовать препарат, содержащий: 10 мкг/мл ГМН + 3,5 мкг/мл КлС + 106 БОЕ/мл.

Обсуждение

Таким образом, предложенный комплексный препарат позволяет снижать дозу используемого антибиотика в 2–4 раза без потери эффективности и подавлять развитие антибиотикорезистентных и фагоустойчивых форм S. aureus.

  1. В ходе исследований показана эффективность применения трехкомпонентного препарата — антибиотик + КлС + БФ — для достижения бактерицидного действия на суспензионной культуре aureus MRSA, причем количество антибиотика в такой композиции можно снизить в 2–3 раза по сравнению с использованиемтолько антибиотика.
  2. Для суспензионных культур aureus 209 и S. aureus ssp. показана возможность использования двухкомпонентных композиций — антибиотик + КлС; антибиотик + БФ, в связи с пониженной резистентностью данных микроорганизмов, что также дает возможность снизить концентрацию антибиотика.
  3. Необходимо отметить, что при постоянном количестве антибиотика, увеличивая количество кластерного серебра в 4–5 раз, наблюдается усиление бактерицидных свойств полученных препаратов.
  4. Данный препарат не имеет ограничений в зависимости от состояния и степени резистентности микроорганизма.
  5. Повторное внесение дозы препарата позволяет добиться значительного снижения концентрации патогенных микроорганизмов в исследуемой суспензии.

Данный препарат можно рекомендовать для использования при закрытом промывном дренаже для тяжелых форм гнойно-септических заболеваний, лечения кожных заболеваний и инфекций верхних дыхательных путей.

Работа была выполнена в рамках ГЗ 4/19 «Применение вирусов для решения задач биотехнологии».

×

Об авторах

Владимир Георгиевич Пугачев

ФБУН Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Роспотребнадзора

Автор, ответственный за переписку.
Email: pugachev@vector.nsc.ru

ведущий научный сотрудник отдела биофизики и экологических исследований

Россия, р.п. Кольцово, Новосибирская область

Ольга Дмитриевна Тотменина

ФБУН Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Роспотребнадзора

Email: pugachev@vector.nsc.ru

научный сотрудник отдела биофизики и экологических исследований

Россия, р.п. Кольцово, Новосибирская область

Список литературы

  1. Афонина И.А., Краева Л.А., Ценева Г.Я. Характеристика чувствительности Staphylococcus aureus и Сandida albicans к противомикробным препаратам и коллоидному серебру. // Инфекция и иммунитет. 2011, Т. 1, № 2. С. 177–180. [Afonina I.A., Kraeva L.A., Tseneva G.Y. Characteristic of sensitivity of staphylococcus aureus and candida albicans to antibacterial preparations and colloidal silver. Infektsiya i immunitet = Russian Journal of Infection and Immunity, 2011, vol. 1, no. 2, pp. 177–180. (In Russ.)]
  2. Асланов Б.И., Зуева Л.П., Кафтырева Л.А., Бойцов А.Г., Акимкин В.Г., Долгий А.А., Брусина Е.Б., Дроздова О.М. Рациональное применение бактериофагов в лечебной и противоэпидемической практике. Федеральные клинические рекомендации. М., 2014. 39 с. [Aslanov B.I., Zueva L.P., Kaftyreva L.A., Boytsov A.G., Akimkin V.G., Dolgiy A.A., Brusina E.B., Drozdova O.M. Rational use of bacteriophages in therapeutic and antiepidemic practice. Federal clinical guidelines. Moscow, 2014. (In Russ.)]
  3. Божкова С.А., Полякова Е.М., Краснова М.В. Преодоление устойчивости к гентамицину у метициллинорезистентных штаммов стафилококка // Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. 2017. № 8, Ч. 1. С. 97–103. [Bozhkova S.A., Polyakova E.M., Krasnova M.V. The breaking of resistance to gentamycin in methicillin resistant Staphylococcus aureus strains. Mezhdunarodnyi zhurnal prikladnykh i fundamental’nykh issledovanii = International Journal of Applied and Fundamental Research, 2017, no. 8, pt 1, pp. 97–103. (In Russ.)]
  4. Патент № 2672869 Российская Федерация, МПК A61K 35/76 (2015.01); A61K 33/38 (2006.01); A61K 47/06 (2006.01); A61P 31/04 (2006.01). Антибактериальное средство на основе бактериофага: № 2017142076; заявлено 2017.12.01: опубликовано 2018.11.20. / Пугачев В.Г., Тотменина О.Д. Патентообладатель: ФБУН ГНЦ ВБ «Вектор» Роспотребнадзора. 14 с. [Patent No. 2672869 Russian Federation, Int. Cl. A61K 35/76 (2015.01); A61K 33/38 (2006.01); A61K 47/06 (2006.01); A61P 31/04 (2006.01). Antibacterial agent based on bacteriophage. No. 2017142076; application: 2017.12.01: date of publication 2018.11.20 / Pugachev V.G., Totmenina O.D. Proprietor: Federalnoe byudzhetnoe uchrezhdenie nauki “Gosudarstvennyj nauchnyj tsentr virusologii i biotekhnologii “Vektor” Federalnoj sluzhby po nadzoru v sfere zashchity prav potrebitelej i blagopoluchiya cheloveka (FBUN GNTS VB “Vektor” Rospotrebnadzora). 14 p.]
  5. Шкиль Н.А., Бурмистров В.А., Соколов М.Ю. Антимикробные свойства, фармакотоксикологические характеристики и терапевтическая эффективность препарата арговит при желудочно-кишечных болезнях телят // Научный журнал КубГАУ. 2011. № 68 (04). 11 c. [Shkil N.A., Burmistrov V.A., Sokolov M.Yu. Antimicrobial properties, pharmacotoxicological characteristics and therapeutic efficacy of argovit in gastrointestinal diseases of calves. Nauchnyi zhurnal KubGAU = KubGAU Scientific Journal, 2011, no. 68 (04), 11 p. (In Russ.)]
  6. Харсеева Г.Г., Фролова Я.Н., Миронов А.Ю. Биопленки патогенных бактерий: биологические свойства и роль в синхронизации инфекционного процесса // Успехи современной биологии. 2015. Т. 135, № 4. С. 346–354. [Kharseeva G.G., Frolova Ya.N., Mironov A.Yu. Biofilms of pathogenic bacteria: biological properties and their role in chronization of inflammatory process. Uspekhi sovremennoi biologii = The Successes of Modern Biology, 2015, vol. 135, no. 4, pp. 346–354. (In Russ.)]
  7. Методические указания по определению чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам. МУК 4.12.1890-04. М., 2004. 65 с. [Guidelines for determining the sensitivity of microorganisms to antibacterial drugs. MUK 4.12.1890-04. Moscow, 2004. 65 p. (In Russ.)]
  8. Miroshnikov K.A., Kulikov E.E., Darbeeva O.S., Lysko K.A., Ignat’ev G.M. [Genetic and molecular principles for the selection of Pseudomonas and Staphylococcus therapeutic bacteriophages]. Prikl. Biokhim. Mikrobiol., 2014, vol. 50, no. 3, pp. 338–344. (In Russ.)
  9. Morones-Ramirez J.R., Winkler J.A., Spina C.S., Collins J.J. Silver enhances antibiotic activity against gram-negative bacteria. Sci. Transl. Med., 2013, vol. 5, no. 190: 190ra81. doi: 10.1126/scitranslmed.3006276
  10. Ruden S., Hilpert K., Berditsch M., Wadhwani P., Ulrich A.S. Synergistic interaction between silver nanoparticles and membrane-permeabilizing antimicrobial peptides. Antimicrob. Agents Chemother., 2009, vol. 53, no. 8, pp. 3538–3540. doi: 10.1128/AAC.01106-08

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рисунок 1. Динамика роста Staphylococcus aureus MRSA в присутствии препаратовПримечание. Образцы: 16 — контроль, исходная концентрация бактерий 104 КОЕ/мл; 1–5 с исходной концентрацией бактерий 7 × 104 КОЕ /мл; образцы 6–10 с исходной концентрацией 7 × 105 КОЕ /мл; образцы 11–15 с исходной концентрацией 5 × 106 КОЕ /мл. К образцам 1, 6, 11 добавлен препарат А; к образцам 2, 7, 12 — препарат В; к образцам 3, 8, 13 — препарат С; к образцам 4, 9, 14 — препарат D; к образцам 5, 10, 15 — препарат E.

Скачать (157KB)
3. Рисунок 2. Бактерицидное действие препарата на S. aureus MRSA в зависимости от количества кластерного серебраПримечание. Образы: 1 — контроль; 2–4 с исходной концентрацией 7 × 104 КОЕ /мл; 5–7 с исходной концентрацией 7 × 105 КОЕ /мл. К образцам 2, 5 — добавлен препарат B; к образцам 3, 6 — препарат С; к образцам 4, 7 — препарат D.

Скачать (115KB)
4. Рисунок 3. Динамика роста S. aureus 209 в присутствии препаратовПримечание. Образец 1 — контроль; образцы 2–5 с исходной концентрацией 104 КОЕ/мл; образцы 6–9 с исходной концентрацией 105 КОЕ/мл; образцы 10–12 с исходной концентрацией 106 КОЕ/мл. К образцам 2, 6 добавлен препарат M; к образцам 3, 7, 10 — препарат H; к образцам 4, 8, 11 — препарат G; к образцам 5, 9, 12 — препарат F.

Скачать (134KB)

© Пугачев В.Г., Тотменина О.Д., 2023

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 64788 от 02.02.2016.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах