НЕФРИТОГЕННАЯ АКТИВНОСТЬ STREPTOCOCCUS PYOGENES ГЕНОТИПОВ emm1 и emm12, РАЗЛИЧАЮЩИХСЯ ПО ИСТОЧНИКУ ВЫДЕЛЕНИЯ
- Авторы: Бурова Л.А.1, Пигаревский П.В.1, Снегова В.А.1, Кулешевич Е.В.1, Жарков Д.А.2, Шален К.3, Тотолян А.А.1
-
Учреждения:
- ФГБНУ Институт экспериментальной медицины, Санкт-Петербург, Россия
- оенно-медицинская академия им. С.М. Кирова МО РФ, Санкт-Петербург, Россия
- Лундский Университет, Лунд, Швеция
- Выпуск: Том 5, № 3 (2015)
- Страницы: 233-242
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ
- Дата подачи: 30.11.2015
- Дата принятия к публикации: 30.11.2015
- Дата публикации: 30.11.2015
- URL: https://iimmun.ru/iimm/article/view/328
- DOI: https://doi.org/10.15789/2220-7619-2015-3-233-242
- ID: 328
Цитировать
Полный текст
Аннотация
В статье рассматривается нефритогенная активность штаммов Streptococcus pyogenes генотипов emm1 и emm12, различающихся по Fc-рецепции нативного IgG и иммунных комплексов (IC) и выделенных от детей, больных скарлатиной и здоровых носителей. Все штаммы типа emm1 связывали нативный IgG, между тем как IC взаимодействовали только со штаммами от больных и не связывались штаммами от носителей. Наоборот, все штаммы типа emm12 оказались негативными в отношении нативного IgG, а IC связывались исключительно штаммами от больных. Ни один из испытанных штаммов не связывал IgG3. Связывание обеих форм IgG сопровождалось накоплением анти-IgG антител, формированием IC, «серповидной» депозицией IgG в почечной ткани, отложением С3-комплемента, продукцией провоспалительного цитокина TNFα, а также аккумуляцией лимфоцитов в корковом и мозговом слоях ткани. Перечисленные признаки являются по существу проявлениями развивающегося иммунного воспаления, ведущего к моделированию мембранозно-пролиферативного гломерулонефрита (PSGN). По имеющимся данным, в его основе лежат: связывание иммунных комплексов тканевыми FcγR, активация комплемента, провоспалительная активность цитокинов и лимфоцитарная инфильтрация ткани. По данным морфометрической оценки, нефритогенная активность штаммов генотипа emm12 превышала таковую штаммов генотипа emm1. При испытании трех IC-связывающих штаммов emm12 на шести кроликах, выраженный PSGN имел место у 5-ти, а абортивный процесс — лишь у одного животного. В случае же испытания пяти IgG-связывающих штаммов типа emm1 на десяти кроликах выраженный PSGN наблюдался всего у 3-х, абортивный — у 5-ти и негативный результат — у 2-х животных. Изменения не происходили при испытании «носительских» штаммов обоих генотипов, неспособных связывать IC, что, согласно литературе, может быть связано с мутацией в гене Mga-регулятора и, соответственно, нарушениями в синтезе М-белков. Поэтому выделение IC-связывающих штаммов типа emm12 при острой стрептококковой инфекции должно рассматриваться в качестве высокого фактора риска развития постинфекционного осложнения — PSGN. Используемая в работе модель PSGN позволяет вскрыть основные этапы и черты его патогенеза.
Ключевые слова
Об авторах
Л. А. Бурова
ФГБНУ Институт экспериментальной медицины, Санкт-Петербург, Россия
Автор, ответственный за переписку.
Email: fake@neicon.ru
д.м.н., ведущий научный сотрудник отдела молекулярной микробиологии ФГБНУ Институт экспериментальной медицины, Санкт-Петербург, Россия;
П. В. Пигаревский
ФГБНУ Институт экспериментальной медицины, Санкт-Петербург, Россия
Email: fake@neicon.ru
д.б.н., руководитель отдела общей морфологии ФГБНУ Институт экспериментальной медицины, Санкт-Петербург, Россия;
В. А. Снегова
ФГБНУ Институт экспериментальной медицины, Санкт-Петербург, Россия
Email: fake@neicon.ru
научный сотрудник отдела общей морфологии ФГБНУ Институт экспериментальной медицины, Санкт-Петербург, Россия;
Е. В. Кулешевич
ФГБНУ Институт экспериментальной медицины, Санкт-Петербург, Россия
Email: fake@neicon.ru
младший научный сотрудник отдела молекулярной микробиологии ФГБНУ Институт экспериментальной медицины, Санкт-Петербург, Россия;
Д. А. Жарков
оенно-медицинская академия им. С.М. Кирова МО РФ, Санкт-Петербург, Россия
Email: fake@neicon.ru
преподаватель кафедры эпидемиологии Военно-медицинской академии им. С.М. Кирова МО РФ, Санкт-Петербург, Россия;
К. Шален
Лундский Университет, Лунд, Швеция
Email: fake@neicon.ru
д.м.н., отдел медицинской микробиологии Лундского Университета, Лунд, Швеция;
Артем А. Тотолян
ФГБНУ Институт экспериментальной медицины, Санкт-Петербург, Россия
Email: fake@neicon.ru
д.м.н., академик РАН, главный научный сотрудник отдела молекулярной микробиологии ФГБНУ Институт экспериментальной медицины, Санкт-Петербург, Россия.
Список литературы
- Тотолян А.А., Бурова Л.А., Нагорнев В.А., Пигаревский П.В. Анализ механизмов иммунопатологического пост-стрептококкового гломерулонефрита // Терапевтический архив. 2008. Т. 80, № 6. С. 90–95. [Totolian A.A., Burova L.A., Nagornev V.A., Pigarevskay P.V. Analysis mechanisms of immunopathological post-streptococcal glomerulonephritis. Terapevticheskii arkhiv = Therapeutic Archive, 2008, vol. 80, no. 6, pp. 90–95. (In Russ.)]
- Тотолян А.А., Бурова Л.А. Критический анализ предполагаемых механизмов патогенеза постстрептококкового гломерулонефрита // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2001. Т. 3, № 4. С. 316–323. [Totolian A.A., Burova L.A. Critical analysis of suggested mechanisms of pathogenesis of the post-streptococcal glomerulonephritis. Klinicheskaya mikrobiologiya i antimikrobnaya khimioterapiya = Clinical Microbiology and Antimicrobial Chemotherapy, 2001, vol. 3, no. 4, pp. 316–323. (In Russ.)]
- Barabas A.Z., Cole C.D., Lafreniere R., Weir D.M. Immunopathological events initiated and maintained by pathoge nic IgG autoantibodies in an experimental autoimmune kidney disease. Autoimmunity, 2012, vol. 45, no. 7, pp. 495–509. doi: 10.3109/08916-934.2012.702812
- Burova L., Pigarevsky P., Sliverstova V., Gupalova T., Schalen C., Totolian A. Experimental poststreptococcal glomerulonephritis elicited by IgG Fc-binding M family proteins and blocked by IgG Fc fragment. APMIS, 2012, vol. 120, no. 3, pp. 221–230. doi: 10.1111/j.1600-0463.2011.02826.x
- Collan Y. Morphometry in pathology: another look at diagnostic histopathology. Pathol. Res. Pract., 1984, vol. 179, pp. 189–192. doi: 10.1016/S0344-0338(84)80126-0
- Flores A.R., Olsen R.J., Wunsche A., Kumaraswami M., Shelburne S.A., Carroll R.K., Musser J.M. Natural variation in the promoter of the gene encoding the Mga regulator alters host-pathogen interaction in group A Streptococcus carrier strains. Infect. Immun., 2013, vol. 81, no. 11, pp. 4128–4138. doi: 10.1128/IAI.00405-13
- Gomez-Guerrero C., Duque N., Casado M.T., Pastor C., Blanco J., Mampaso F., Vivanco F., Egido J. Administration of IgG Fcfragments prevents glomerular injury in experimental immune complex nephritis. J. Immunol., 2000, vol. 164, no. 4, pp. 2092–2101. doi: 10.4049/jimmunol.164.4.2092
- Kefalides N.A., Pegg M.T., Ohno N., Poon-King T., Zabriskie J., Fillit H. Antibodies to basement membrane collagen and to laminin are present in sera from patients with poststreptococcal glomerulonephritis. J. Exp. Med., 1986, vol. 163, no. 3, pp. 588–602.
- Kovalenko P., Fujinaka H., Yoshida Y., Kawamura H., Qu Z., El-Shemi A., Li H., Matsuki A., Bilim V., Yaoita E., Abo T., Uchiyama M., Yamamoto T. Fc receptor-mediated accumulation of macrophages in crescentic glomerulonephritis induced by antiglomerular basement membrane antibody administration in WKY rats. International Immunology, 2004, vol. 16, no. 5, pp. 625–634. doi: 10.1093/intimm/dxh058
- Nelson D.C., Garbe J., Collin M. Cysteine proteinase SpeB from Streptococcus pyogenes — a potent modifier of immunologically important host and bacterial proteins. Biol. Chem., 2011, vol. 392, pp. 1077–1088. doi: 10.1515/BC.2011.208
- Otten M.A., Groeneveld T.W.L., Flierman R., Rastaldi M.P., Trouw L.A., Faber-Krol M.C., Visser A., Essers M.C., Claassens J., Verbeek J.S., van Kooten C., Roos A., Daha M.R. Both complement and IgG Fc receptors are required for development of attenuated antiglomerular basement membrane nephritis in mice. J. Immunol., 2009, vol. 183, pp. 3980–3988. doi: 10.4049/jimmunol. 0901301
- Qu Z., Cui Z., Liu G., Zhao M.H. The distribution of IgG subclass deposition on renal tissues from patients with anti-glomerular basement membrane disease. BMC Immunol., 2013, vol. 14, pp. 19–26. doi: 10.1186/1471-2172-14-19
- Schalen C., Kurl D., Christensen P. Independent binding of native and aggregated IgG in group A streptococci. APMIS, 1986, vol. 94B, iss. 1–6, pp. 333–338. doi: 10.1111/j.1699-0463.1986.tb03062.x
- Stenberg L., O’Toole P., Lindahl G. Many group A streptococcal strains express two different immunoglobulin-binding proteins, encoded by closely linked genes: characterization of the proteins expressed by four strains of different M-type. Mol. Microbiol., 1992, vol. 6, no. 9, pp. 1185–1194. doi: 10.1111/j.1365-2958.1992.tb01557.x
- Stenberg L., O’Toole P.W., Mestecky J., Lindahl G. Molecular characterization of protein Sir, a streptococcal cell surface protein that binds both immunoglobulin A and immunoglobulin G. Biol. Chem., 1994, vol. 269, no. 18, pp. 13458–13464.
- Taylor S.R.J., Turner C.M., Elliott J.I., McDaid J., Hewitt R., Smith J., Pickering M.C., Whitehouse D.L., Cook H.T., Burnstock G., Pusey C.D., Unwin R.J., Tam F.W.K. P2X7 deficiency attenuates renal injury in experimental glomerulonephritis. J. Am. Soc. Nephrol., 2009, vol. 20, no. 6, pp. 1275–1281. doi: 10.1681/ASN.2008060559
- Thern A., Wastfelt M., Lindahl G. Expression of two different antiphagocytric M proteins by Streptococcus pyogenes of the OF+ lineage. J. Immunol., 1998, vol. 160, no. 2, pp. 860–869.
- Yang R., Otten M.A., Hellmark T., Mattias C., Björck L., Zhao M.-H., Daha M.R., Segelmark M. Successful treatment of experimental glomerulonephritis with IdeS and EndoS, IgG-degrading streptococcal enzymes. Nephrol. Dial. Transplant., 2010, vol. 25, no. 8, pp. 2479–2486. doi: 10.1093/ndt/gfq115