Антимикробная активность водных дисперсий наночастиц серебра в отношении возбудителей гнойно-воспалительных заболеваний
- Авторы: Нечаева О.В.1, Шульгина Т.А.2, Зубова К.В.3, Глинская Е.В.3, Беспалова Н.В.1, Дарьин Н.И.4, Тихомирова Е.И.1, Афиногенова А.Г.5
-
Учреждения:
- Саратовский государственный технический университет имени Ю.А. Гагарина
- НИИ травматологии, ортопедии и нейрохирургии ФГБОУ ВО «Саратовский государственный медицинский университет имени В.И. Разумовского» Министерства здравоохранения Российской Федерации
- Саратовский национальный исследовательский государственный университет имени Н.Г. Чернышевского
- ООО «М9»
- ФБУН НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Пастера
- Выпуск: Том 12, № 4 (2022)
- Страницы: 755-764
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ
- Дата подачи: 25.04.2022
- Дата принятия к публикации: 15.05.2022
- Дата публикации: 15.11.2022
- URL: https://iimmun.ru/iimm/article/view/1937
- DOI: https://doi.org/10.15789/2220-7619-AAO-1937
- ID: 1937
Цитировать
Полный текст
Аннотация
В настоящее время в медицинской, микробиологической и ветеринарной практике широко используются металлические наноструктуры. Особенно перспективными в качестве антимикробных агентов являются наночастицы серебра, так как в литературе отсутствуют данные о формировании у микроорганизмов устойчивости к ним. При разработке препаратов на основе металлических наночастиц важным вопросом остается выбор стабилизатора, введение которого в процессе синтеза обеспечивает сохранение структур в наноразмерном диапазоне, а, следовательно, и их основных характеристик, в том числе биоцидных свойств. Объектом исследования являлись водные дисперсии наночастиц серебра, стабилизированные природными и синтетическими полимерными соединениями. В качестве экспериментальных моделей использовали стандартные штаммы грамположительных и грамотрицательных бактерий: S. aureus 209 Р, Escherichia coli ATCC 25922, Proteus mirabilis ATCC 3177 (О-форма), Klebsiella pneumoniae АТСС 31488, полученные из Научного центра экспертизы средств медицинского применения. Оценку антимикробной активности различных вариантов водных дисперсий наночастиц серебра проводили методом серийных разведений в плотной питательной среде. В работе не проводили исследование влияния наночастиц серебра без стабилизаторов, так как их отсутствие приводило к быстрой агломерации наноструктур и утрате наноразмерных характеристик. Наибольшая чувствительность грамположительных и грамотрицательных бактерий установлена к действию водной дисперсии наночастиц серебра, стабилизированных полиазолидинаммонием, модифицированным гидрат-ионами йода. Рабочие концентрации препарата от 0,5 до 3% оказывали бактерицидное действие в отношении возбудителей гнойно-воспалительных заболеваний, а минимальная рабочая концентрация 0,125% приводила к снижению колониеобразующих единиц на 20–57% разных штаммов бактерий. Наночастицы серебра, стабилизированные додецилсульфатом натрия, показали высокую эффективность в отношении исследуемых тест-штаммов, что, вероятно, связано с высокой токсичностью используемого стабилизатора, которая была установлена ранее при проведении комплексной оценки безопасности с использованием биотест-объектов и культур клеток. В связи с этим его использование в качестве компонента антимикробных препаратов нежелательно. Результаты проведенных исследований показали, что среди вариантов водных дисперсий наночастиц серебра наиболее перспективными для использования в медико-биологической практике являются препараты, стабилизированные поливиниловым спиртом и полиазолидинаммонием, модифицированным гидрат-ионами йода, поскольку они демонстрируют высокий уровень антибактериальной активности в отношении как грамположительных, так и грамотрицательных бактерий — возбудителей гнойно-воспалительных заболеваний — и низкий уровень токсичности. Это позволяет рекомендовать их в качестве безопасных и эффективных антимикробных компонентов дезинфицирующих средств, а также антисептических препаратов для профилактики и лечения инфекционных заболеваний кожи и мягких тканей.
Полный текст
Введение
Рост и распространение возбудителей инфекционных заболеваний, характеризующихся множественной лекарственной устойчивостью, является одной из основных проблем современной прикладной биологии, медицины и ветеринарии [6, 21]. Это связано прежде всего с чрезмерным назначением антимикробных средств медицинскими специалистами, нарушением сроков приема препаратов, а также низким уровнем информированности населения о сложившейся ситуации, что приводит к самостоятельному бесконтрольному применению этиотропных препаратов [7, 20, 22]. Введение антибиотиков в корма сельскохозяйственных животных и использование их в растениеводстве также повышает вероятность формирования полирезистентных штаммов бактерий. Например, метициллинрезистентные Staphylococcus aureus, Escherichia coli, продуцирующие бета-лактамазы расширенного спектра, могут передаваться сотрудникам животноводческих ферм при непосредственном контакте с животными, а населению — алиментарным путем при употреблении продуктов животноводства [11, 13].
Научный поиск альтернативных методов и средств борьбы с возбудителями инфекционных заболеваний, является крайне актуальным. В настоящее время в медицинской, микробиологической и ветеринарной практике широко используются металлические наностуктуры [8, 9, 18, 27, 35, 36]. В качестве наиболее перспективных компонентов антимикробных средств следует рассматривать наночастицы серебра, для которых характерен широкий спектр антимикробной активности, а у возбудителей до настоящего времени не установлены пути формирования устойчивости к ним [1, 14, 19, 24, 26, 28]. Это обусловлено особым механизмом их действия, основанным на электростатических силах, возникающих при адсорбции положительно заряженных ионов серебра на бактериальных клетках, имеющих отрицательный заряд [29, 33]. Вследствие этого происходит нарушение синтеза ДНК и РНК, блокировка процессов клеточного дыхания, разобщение окислительных реакций, а взаимодействие с поверхностными структурами микробных клеток приводит к снижению их адгезивной способности и нарушению дальнейшей реализации факторов вирулентности в клетках макроорганизма [25, 30].
При разработке препаратов на основе металлических наночастиц важным вопросом остается выбор стабилизатора, введение которого в процессе синтеза обеспечивает сохранение структур в наноразмерном диапазоне, а, следовательно, и их основных характеристик, в том числе биоцидных свойств [2, 3, 37]. Использование малоэффективного стабилизатора приводит к росту токсичности и снижает показатели стабильности препарата, что приводит к агрегации наночастиц и потере уникальных антимикробных свойств.
Целью настоящего исследования являлось изучение антимикробных свойств водных дисперсий наночастиц серебра, стабилизированных природными и синтетическими полимерными соединениями.
Материалы и методы
Объектом исследования являлись водные дисперсии наночастиц серебра (производитель ООО «М9», Тольятти), стабилизированные различными полимерами (табл. 1).
Таблица 1. Характеристика наночастиц серебра / Table 1. Characterization of silver nanoparticles
Наночастицы Nanoparticles | Стабилизатор (Концентрация) Stabilizer (Concentration) | Природа стабилизатора Nature of the stabilizer | Концентрация наночастиц в исходном препарате Concentration of nanoparticles in the original preparation |
AgPVA | поливиниловый спирт (0,7%) polyvinylalcohol (0.7%) | синтетический полимер synthetic polymer | 0,5 г/л 0.5 g/l |
AgCMC | карбоксиметилцеллюлоза (0,01%) carboxymethylcellulose (0.01%) | натуральный полимер natural polymer | 0,5 г/л 0.5 g/l |
AgOleNa | олеат натрия (0,15%) sodium oleate (0.15%) | натуральное ПАВ natural SAS | 0,5 г/л 0.5 g/l |
AgSDS | додецилсульфат натрия (0,15%) sodium dodecylsulfate (0.15%) | синтетическое ПАВ synthetic SAS | 0,5 г/л 0.5 g/l |
AgPG-m | полиазолидиламмоний, модифицированный гидрат-ионами йода/ПААГ-М (0,15%) polyazolidylammonium modified with iodinehydrate ions (0.15%) | синтетический полимер synthetic polymer | 0,5 г/л 0.5 g/l |
Исследования проводили на модели референс-штаммов условно-патогенных бактерий: Staphylococcus aureus 209 Р, Escherichia coli ATCC 25922, Proteus mirabilis ATCC 3177 (О-форма), Klebsiella pneumoniae АТСС 31488, предоставленные ФГБУ «НЦЭСМП» Минздрава России (Москва). Антимикробную активность исследуемых препаратов определяли методом серийных разведений в плотной питательной среде [10]. Для этого рабочие концентрации водных дисперсий наночастиц серебра, рекомендованные фирмой производителем, 3, 2, 1, 0,5, 0,25, 0,125, добавляли в расплавленный и остуженный ГРМ-агар (ФБУН ГНЦ ПМБ), тщательно перемешивали и разливали его в стерильные чашки Петри. Аналогичным образом была проведена оценка антимикробной активности полимерных соединений, используемых в качестве стабилизаторов наночастиц серебра в составе водных дисперсий. Для проведения исследования из суточных культур исследуемых бактерий готовили взвеси по оптическому стандарту мутности 5 Ед (ФГБУ «НЦЭСМП» Минздрава России, Москва) в 0,9%-м растворе NaCl. Полученную взвесь титровали до концентрации 104 м.к./мл и проводили мерный высев (по 100 мкл) на поверхность подготовленной питательной среды. В питательные среды контрольных образцов тестовых культур наноструктуры и стабилизаторы не вносили. Контрольные и опытные посевы культивировали в суховоздушном термостате ТС-1/80 СПУ при температуре 37°С в течение суток, а затем расчитывали количество жизнеспособных бактерий по показателям колониеобразующих единиц (КОЕ) и определяли характер действия водных дисперсий наночастиц серебра. Наночастицы серебра без добавления полимеров в работе не использовали, поскольку отсутствие стабилизаторов способствовало их быстрой агрегации и выходу из нанорамерного диапазона.
Статистическую обработку полученных экспериментальных данных осуществляли с помощью определения средней арифметической (М) и ошибки репрезентативности (m) с использованием программного обеспечения Statistica 10.0 и Microsoft Еxcel 2010. Результаты считали статистически значимыми при p ≤ 0,05.
Результаты
Исследуемые препараты наночастиц серебра содержали известные концентрации стабилизаторов, поэтому была проведена оценка их антимикробной активности в отношении тестовых культур микроорганизмов. Для этого предварительно рассчитывали концентрации стабилизаторов, присутствующих в рабочих разведениях водных дисперсий наночастиц серебра: для поливинилового спирта они составили 4, 8, 16, 35, 70 и 100 мкг/мл, для карбоксиметилцеллюлозы — 0,05, 0,1, 0,2, 0,5, 1,0 и 1,5 мкг/мл, для олеата натрия, додецилсульфата натрия и ПААГ-М — 1, 2, 4, 8, 16, 24 мкг/мл. Полученные результаты показали, что рабочие концентрации стабилизаторов не влияли на жизнеспособность референс-штаммов бактерий (табл. 2), следовательно, их наличие обеспечивало только сохранение наноразмерности металлических наноструктур.
Таблица 2. Антимикробная активность стабилизаторов (М±m, p ≤ 0,05) / Table 2. Stabilizer-related antimicrobial activity (М±m, p ≤ 0,05)
Штаммы Strains | PVA, мкг/мл | µg/ml | |||||
100 | 70 | 35 | 16 | 8 | 4 | |
S. aureus 209 Р | 2,99±0,61 | 2,99±0,53 | 2,98±0,32 | 3,00±0,67 | 2,99±0,24 | 2,98±0,33 |
E. coli ATCC 25922 | 3,00±0,56 | 3,01±0,52 | 2,99±0,50 | 2,99±0,51 | 3,00±0,52 | 3,00±0,51 |
P. mirabilis ATCC 3177 | 2,98±0,23 | 2,98±0,25 | 3,00±0,27 | 3,00±0,29 | 3,01±0,28 | 3,00±0,28 |
K. pneumoniae АТСС 31488 | 2,98±0,31 | 2,99±0,38 | 2,98±0,34 | 3,00±0,33 | 3,00±0,34 | 3,00±0,36 |
Штаммы Strains | CMC, мкг/мл | µg/ml | |||||
1,5 | 1 | 0,5 | 0,2 | 0,1 | 0,05 | |
S. aureus 209 Р | 2,98±0,39 | 2,99±0,37 | 2,99±0,37 | 2,98±0,39 | 2,98±0,40 | 2,98±0,37 |
E. coli ATCC 25922 | 3,00±0,52 | 2,98±0,49 | 2,98±0,54 | 2,99±0,53 | 3,00±0,48 | 3,00±0,52 |
P. mirabilis ATCC 3177 | 3,01±0,44 | 2,99±0,43 | 2,99±0,42 | 3,00±0,45 | 3,01±0,42 | 3,00±0,47 |
K. pneumoniae АТСС 31488 | 2,99±0,39 | 2,98±0,41 | 2,98±0,42 | 2,99±0,44 | 2,99±0,41 | 2,98±0,42 |
Штаммы Strains | OleNa, мкг/мл | µg/ml | |||||
24 | 16 | 8 | 4 | 2 | 1 | |
S. aureus 209 Р | 3,01±0,52 | 3,00±0,54 | 3,00±0,55 | 2,99±0,56 | 2,99±0,54 | 2,98±0,55 |
E. coli ATCC 25922 | 2,99±0,57 | 2,99±0,56 | 2,98±0,59 | 2,98±0,59 | 3,01±0,60 | 3,01±0,57 |
P. mirabilis ATCC 3177 | 3,00±0,55 | 3,00±0,52 | 2,99±0,56 | 2,98±0,54 | 2,99±0,54 | 2,98±0,55 |
K. pneumoniae АТСС 31488 | 2,99±0,57 | 2,99±0,56 | 2,98±0,57 | 2,98±0,59 | 3,00±0,58 | 3,01±0,59 |
Штаммы Strains | SDS, мкг/мл | µg/ml | |||||
24 | 16 | 8 | 4 | 2 | 1 | |
S. aureus 209 Р | 3,00±0,23 | 3,00±0,21 | 3,01±0,20 | 2,98±0,23 | 2,98±0,22 | 2,98±0,21 |
E. coli ATCC 25922 | 2,98±0,30 | 2,99±0,31 | 2,98±0,35 | 2,99±0,33 | 2,98±0, 35 | 2,99±0,32 |
P. mirabilis ATCC 3177 | 3,00±0,19 | 3,01±0,20 | 3,00±0,23 | 3,01±0,22 | 3,00±0,19 | 3,01±0,19 |
K. pneumoniae АТСС 31488 | 2,98±0,24 | 2,99±0,25 | 2,99±0,23 | 2,98±0,22 | 2,98±0,23 | 2,98±0,23 |
Штаммы Strains | PG-M, мкг/мл | µg/ml | |||||
24 | 16 | 8 | 4 | 2 | 1 | |
S. aureus 209 Р | 3,00±0,26 | 3,01±0,24 | 2,98±0,26 | 2,99±0,22 | 3,00±0,24 | 3,01±0,23 |
E. coli ATCC 25922 | 2,99±0,18 | 2,99±0,19 | 2,98±0,20 | 2,98±0,17 | 3,01±0,18 | 3,00±0,20 |
P. mirabilis ATCC 3177 | 2,98±0,22 | 2,98±0,23 | 2,99±0,25 | 3,00±0,26 | 3,00±0,25 | 3,00±0,22 |
K. pneumoniae АТСС 31488 | 3,01±0,29 | 3,00±0,27 | 3,01±0,26 | 2,99±0,24 | 2,98±0,28 | 2,99±0,27 |
Анализ антимикробной активности водных дисперсий наночастиц серебра позволил установить бактерицидный характер действия AgCMC стандартных штаммов S. aureus 209 Р и E. coli ATCC 25922 для концентраций 1–3%, а в отношении P. mirabilis ATCC 3177 и K. pneumoniae АТСС 31488 — 2–3% (рис. 1). Наибольшую чувствительность к AgCMC проявил штамм S. aureus 209 Р, поскольку при действии рабочих концентраций 0,125, 0,25 и 0,5% наблюдали достоверное снижение показателей КОЕ по сравнению с контролем на 18,5, 30,7 и 40,6% соответственно. Для штаммов грамотрицательных бактерий действие рабочих концентраций 0,25 и 0,5% незначительно снижало число КОЕ, а минимальная концентрация 0,125% не влияла на выживаемость бактерий.
Рисунок 1. Антимикробная активность водной дисперсии наночастиц серебра, стабилизированных карбоксиметилцеллюлозой (М±m, p ≤ 0,05) / Figure 1. Antimicrobial activity of carboxymethyl cellulose-stabilized silver nanoparticle aqueous dispersion (М±m, p ≤ 0.05)
Аналогичные результаты получены при изучении биоцидных свойств AgOleNa (рис. 2). Бактерицидное действие в отношении штаммов S. aureus 209 Р и E. coli ATCC 25922 показано для концентраций 1–3%, для штаммов P. mirabilis ATCC 3177 и K. pneumoniae АТСС 31488 — 2–3%. Установлено, что рабочая концентрация препарата 0,5% приводила к снижению показателей КОЕ бактерий P. mirabilis ATCC 3177 и E. coli ATCC 25922 на 15,0 и 16,1% соответственно, однако не было установлено статистически значимых отличий значений КОЕ K. pneumoniae АТСС 31488 по сравнению с контролем. Наибольшая чувствительность к действию AgOleNa также установлена для штамма грамположительных бактерий S. aureus 209 Р, при действии рабочих концентраций 0,125, 0,25 и 0,5% наблюдали статистически значимое уменьшение значений КОЕ на 33,9, 22,4 и 9,2% соответственно по сравнению с контрольными показателями.
Рисунок 2. Антимикробная активность водной дисперсии наночастиц серебра, стабилизированных олеатом натрия (М±m, p ≤ 0,05) / Figure 2. Antimicrobial activity of ansodium oleate-stabilized silver nanoparticle aqueous dispersion (М±m, p ≤ 0.05)
Неодинаковую чувствительность проявили референс-штаммы бактерий к действию AgPVA: большая эффективность биоцидного действия была установлена в отношении S. aureus 209 Р и E. coli ATCC 25922, для которых бактерицидный характер действия наблюдали в диапазоне концентраций 0,5–3% (рис. 3). Минимальная рабочая концентрация 0,125% способствовала статистически значимому уменьшению значений КОЕ по сравнению с контрольными значениями на 11,1% для E. coli ATCC 25922 и 25,7% для S. aureus 209 Р. Меньшая чувствительность к действию AgPVA установлена для стандартных штаммов P. mirabilis ATCC 3177 и K. pneumoniae АТСС 31488, так как бактерицидный характер действия в их отношении проявляли только концентрации препарата от 1 до 3%, более низкие концентрации водных дисперсий серебра способствовали достоверному снижению показателей КОЕ, не вызывая полной гибели микробных клеток. Концентрация препарата, равная 0,125%, не оказывала подавляющего действия на штамм K. pneumoniae АТСС 31488, поскольку значения КОЕ не имели статистически значимых отличий от контрольных показателей.
Рисунок 3. Антимикробная активность водной дисперсии наночастиц серебра, стабилизированных поливиниловым спиртом, додецилсульфатом натрия и полиазолидинаммонием, модифицированным гидрат-ионами йода (М±m, p ≤ 0,05) / Figure 3. Antimicrobial activity of aqueous dispersion of silver nanoparticles stabilized by polyvinyl alcohol, sodium dodecyl sulfate and iodine hydrate ion-modified polyazolidylammonium (М±m, p ≤ 0.05)
Высокий уровень чувствительности к действию AgSDS установлен для всех исследуемых штаммов бактерий (рис. 3), поскольку рабочие концентрации от 0,5 до 3% оказывали бактерицидное действие, а концентрации 0,125 и 0,25% приводили к значительному снижению показателей КОЕ для большинства исследуемых штаммов: S. aureus 209 Р — на 32,3 и 47,2%, E. coli ATCC 25922 — на 21,1 и 36,2%, P. mirabilis ATCC 3177 — на 20,3 и 33,3%, K. pneumoniae АТСС 31488 — на 5,9 и 19,9% соответственно по сравнению с контрольными значениями.
Высокой эффективностью антимикробного действия в отношении возбудителей гнойно-воспалительных заболеваний характеризовалась водная дисперсия AgPG-m, которая проявляла бактерицидный характер действия в диапазоне концентраций 0,5–3% (рис. 3). При действии рабочих концентраций 0,125 и 0,25% происходило достоверное снижение показателей КОЕ S. aureus 209 Р — на 33,9 и 57,1%, E. coli ATCC 25922 — на 21,1 и 36,2%, P. mirabilis ATCC3177 — на 20,0 и 41,7%, K. pneumoniae АТСС 31488 — на 7,8 и 21,6% соответственно по сравнению с контролем.
Обсуждение
Проведенные исследования позволили установить, что наночастицы серебра в составе водных дисперсий характеризовались широким спектром антимикробной активности в отношении референс-штаммов грамположительных и грамотрицательных бактерий, которая зависела от стабилизирующего полимера и концентрации наноструктур. Среди тестовых штаммов бактерий наибольшая чувствительность к действию исследуемых препаратов установлена для грамположительных бактерий вида S. aureus 209 Р. Меньшая чувствительность грамотрицательных бактерий E. coli ATCC 25922, P. mirabilis ATCC 3177 и K. pneumoniae АТСС 31488 к действию водных дисперсий наночастиц Ag, возможно, обусловлена спецификой структурной организации их клеточной стенки, наличием внешней мембраны и ограниченной доступностью коллоидных систем серебра для действия на мишени клеток из-за высокомолекулярных стабилизаторов, не способных пройти через пориновые каналы [4, 23]. Наиболее устойчивым к действию водных дисперсий металлических наночастиц оказался стандартный штамм K. pneumoniae АТСС 31488, что, вероятно, связано с наличием у клеток истинной капсулы, которая нарушает проникновение наноструктур к мишеням этих бактерий [12, 15].
Наименьшей антимикробной активностью обладали наночастицы серебра, имеющие в составе поверхностно активное вещество олеат натрия. Низкая стабилизирующая способность полимера подтверждена экспериментами по влиянию гидродинамического размера олеата натрия на высокую скорость агрегации наночастиц серебра [5].
Наночастицы серебра, стабилизированные додецилсульфатом натрия, показали высокую эффективность в отношении исследуемых грамположительных и грамотрицательных бактерий, что, возможно, обусловлено высокой степенью токсичности полимера, данные по которой были получены ранее на биотест-объектах при проведении биотестирования и культурах клеток млекопитающих. Остальные природные и синтетические полимерные стабилизаторы, используемые в работе, по показателям острой токсичности были отнесены к малоопасным соединениям [32, 34].
Детальный анализ биоцидного действия водных дисперсий наночастиц серебра позволил рекомендовать для дальнейших исследований варианты препаратов, в которых в качестве стабилизаторов были использованы синтетические полимеры — поливиниловый спирт и полиазолидинаммоний, модифицированный гидрат-ионами йода. Широкий спектр антимикробной активности, установленный в отношении референс-штаммов грамположительных и грамотрицательных бактерий, и отсутствие токсического действия их рабочих концентраций [16, 17, 31] позволяет рассматривать исследуемые соединения в качестве высокоэффективных и безопасных биоцидных субстанций при разработке антисептических и дезинфицирующих средств, которые могут быть использованы в медико-биологической и ветеринарной практике для профилактики и лечения гнойно-воспалительных заболеваний кожных покровов и мягких тканей.
Заключение
Результаты проведенного исследования позволили установить, что наночастицы серебра в составе водных дисперсий характеризуются высоким уровнем антимикробной активности в отношении широкого спектра грамположительных и грамотрицательных условно-патогенных бактерий — потенциальных возбудителей гнойно-воспалительных заболеваний. Наиболее выраженный биоцидный эффект отмечен для стандартного штамма S. aureus 209 Р. Поскольку грамположительные кокки являются значимыми этиологическими агентами гнойно-воспалительных заболеваний кожи и мягких тканей, это определяет дальнейшее применение препаратов на основе наночастиц серебра. Важное значение для проявления антибактериального действия имеет выбор стабилизатора. Среди изученных образцов наноструктур наиболее перспективными оказались препараты серебра, стабилизированные поливиниловым спиртом, додецилсульфатом натрия и ПААГ-М, поскольку даже их низкие рабочие концентрации приводили к гибели клеток большинства исследуемых штаммов бактерий. Ограничивающим фактором применения в качестве стабилизатора додецилсульфата натрия является его высокая токсичность. Поэтому для разработки высокоэффективных и безопасных препаратов с широким спектром антимикробного действия могут быть использованы наночастицы серебра в составе водных дисперсий, в которых в качестве стабилизаторов выступают синтетические полимеры — поливиниловый спирт и полиазолидинаммоний, модифицированный гидрат-ионами йода.
Об авторах
Ольга Викторовна Нечаева
Саратовский государственный технический университет имени Ю.А. Гагарина
Email: olgav.nechaeva@rambler.ru
ORCID iD: 0000-0003-3331-1051
SPIN-код: 9984-9594
д.б.н., профессор кафедры экологии и техносферной безопасности
Россия, СаратовТатьяна Андреевна Шульгина
НИИ травматологии, ортопедии и нейрохирургии ФГБОУ ВО «Саратовский государственный медицинский университет имени В.И. Разумовского» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Email: tshylgina2012@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-2393-6402
SPIN-код: 4148-3558
биолог отделения лабораторной и функциональной диагностики
Россия, СаратовКсения Валерьевна Зубова
Саратовский национальный исследовательский государственный университет имени Н.Г. Чернышевского
Email: zubovaksushechka@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-9406-080X
SPIN-код: 2858-5323
аспирант кафедры микробиологии и физиологии растений биологического факультета
Россия, СаратовЕлена Владимировна Глинская
Саратовский национальный исследовательский государственный университет имени Н.Г. Чернышевского
Email: elenavg-2007@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-1675-5438
SPIN-код: 2724-1359
к.б.н., доцент, доцент кафедры микробиологии и физиологии растений биологического факультета
Россия, СаратовНаталья Викторовна Беспалова
Саратовский государственный технический университет имени Ю.А. Гагарина
Email: n.v.bespalova.sstu@gmail.ru
ORCID iD: 0000-0003-3733-3119
SPIN-код: 1676-8226
к.ф.-м.н., доцент кафедры информационной безопасности автоматизированных систем
Россия, СаратовНиколай Иванович Дарьин
ООО «М9»
Email: nickel@nmt-9.com
ORCID iD: 0000-0002-7009-3308
SPIN-код: 1708-6649
технический директор
Россия, ТольяттиЕлена Ивановна Тихомирова
Саратовский государственный технический университет имени Ю.А. Гагарина
Email: tichomirova_ei@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-6030-7344
SPIN-код: 7673-8480
зав. кафедрой экологии и техносферной безопасности
Россия, СаратовАнна Геннадьевна Афиногенова
ФБУН НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Пастера
Автор, ответственный за переписку.
Email: spbtestcenter@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-8175-0708
SPIN-код: 9188-3533
д.б.н., ведущий научный сотрудник, руководитель испытательного лабораторного центра
Россия, 197101, Санкт-Петербург, ул. Мира, 14Список литературы
- Александрова В.А., Футорянская А.М., Садыкова В.С. Синтез и антибактериальная активность наночастиц серебра, стабилизированных сукцинамидом хитозана // Прикладная биохимия и микробиология. 2020. T. 56, № 5. С. 497–502. [Aleksandrova V.A., Futoryanskaya A.M., Sadykova V.S. Synthesis and antibacterial activity of silver nanoparticles stabilized with chitosan succinamide. Prikladnaya biokhimiya i mikrobiologiya = Applied Biochemistry and Microbiology, 2020, vol. 56, no. 5, pp. 497–502. (In Russ.)] doi: 10.31857/S0555109920050025
- Валуева С.В., Боровикова Л.Н. Влияние природы биологически активного стабилизатора на спектральные и размерные характеристики гибридных селенсодержащих наносистем // Журнал физической химии. 2019. T. 93, № 1. С. 113–118. [Valueva S.V., Borovikova L.N. Influence of the nature of a biologically active stabilizer on the spectral and dimensional characteristics of hybrid selenium-containing nanosystems. Zhurnal fizicheskoi khimii = Journal of Physical Chemistry, 2019, vol. 93, no. 1, pp. 113–118. (In Russ.)] doi: 10.1134/S0044453719010308
- Валуева С.В., Назарова О.В., Вылегжанина М.Э., Боровикова Л.Н., Золотова Ю.И., Панарин Е.Ф. Медьсодержащие наносистемы на основе высокомолекулярных гидрофильных стабилизаторов // Доклады академии наук. 2019. Т. 489, № 3. С. 254–257. [Valueva S.V., Nazarova O.V., Vylegzhanina M.E., Borovikova L.N., ZolotovaYu.I., Panarin E.F., Copper-containing nanosystems based on high-molecular hydrophilic stabilizers. Doklady akademii nauk = Reports of the Academy of Sciences, 2019, vol. 489, no. 3, pp. 254–257. (In Russ.)] doi: 10.31857/S0869-56524893254-257
- Габриелян Л.С., Трчунян А.А. Антибактериальные свойства наночастиц серебра и мембранотропные механизмы иx действия // Журнал Белорусского государственного университета. Биология. 2020. № 3. С. 64–71. [Gabrielyan L.S., Trchunyan A.A. Antibacterial properties of silver nanoparticles and membranotropic mechanisms of their action. Zhurnal Belorusskogo gosudarstvennogo universiteta. Biologiya = Journal of the Belarusian State University. Biology, 2020, no. 3, pp. 64–71. (In Russ.)] doi: 10.33581/2521-1722-2020-3-64-71
- Дьяченко C.B., Кондрашкова И.С., Жерновой А.И. Исследование седиментации ферромагнитных наночастиц в магнитной жидкости методом ЯМР // Журнал технической физики. 2017. Т. 87, Вып. 10. С. 1596–1598. [Dyachenko S.V., Kondrashkova I.S., Zhernovoy A.I. Investigation of the sedimentation of ferromagnetic nanoparticles in a magnetic fluid by NMR. Zhurnal tekhnicheskoi fiziki = Journal of Technical Physics, 2017, vol. 87, iss. 10, pp. 1596–1598. (In Russ.)] doi: 10.21883/JTF.2017.10.45007.2213
- Егорова С.А., Кулешов К.В., Кафтырева Л.А., Матвеева З.Н. Чувствительность к антибиотикам, механизмы резистентности и филогенетическая структура популяции S. typhi, выделенных в 2005–2018 гг. в Российской Федерации // Инфекция и иммунитет. 2020. T. 10, № 1. С. 99–110. [Egorova S.A., Kuleshov K.V., Kaftyreva L.A., Matveeva Z.N. The antimicrobial susceptibility, resistance mechanisms and phylogenetic structure of S. typhi isolated in 2005–2018 in the Russian Federation. Infektsiya i immunitet = Russian Journal of Infection and Immunity, 2020, vol. 10, no. 1, pp. 99–110. (In Russ.)] doi: 10.15789/10.15789/2220-7619-ASM-1171
- Козлова Н.С., Баранцевич Н.Е., Баранцевич Е.П. Чувствительность к антибиотикам Klebsiella pheumoniae, выделенных в многопрофильном стационаре // Инфекция и иммунитет. 2018. T. 8, № 1. С. 79–84. [Kozlova N.S., Barantsevich N.E., Barantsevich E.P. Susceptibility to antibiotics in Klebsiella pneumoniae strains isolated in a multidisciplinary medical centre. Infektsiya i immunitet = Russian Journal of Infection and Immunity, 2018, vol. 8, no. 1, pp. 79–84. (In Russ.)] doi: 10.15789/2220-7619-2018-1-79-84
- Мазитова Г.Т., Киенская К.И., Буторова И.А. Зависимость антимикробной активности нанодисперсий оксида цинка от формы и размера частиц // Журнал прикладной химии. 2020. Т. 93, Вып. 6. С. 823–827. [Mazitova G.T., Kienskaya K.I., Butorova I.A. Dependence of the antimicrobial activity of zinc oxide nanodispersions on the shape and size of particles. Zhurnal prikladnoi khimii = Journal of Applied Chemistry, 2020, vol. 93, iss. 6, pp. 823–827. (In Russ.)]
- Мелешко А.А., Афиногенова А.Г., Афиногенов Г.Е., Спиридонова А.А., Толстой В.П. Антибактериальные неорганические агенты: эффективность использования многокомпонентных систем // Инфекция и иммунитет. 2020. Т. 10, № 4. С. 639–654. [MeleshkoА.A., Afinogenova A.G., Afinogenov G.E., Spiridonova A.A., Tolstoy V.P. Аntibacterial inorganic agents: efficiency of using multicomponent systems. Infektsiya i immunitet = Russian Journal of Infection and Immunity, 2020, vol. 10, no. 4, pp. 639–654. (In Russ.)] doi: 10.15789/2220-7619-AIA-1512
- Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам.МУК 4.2.1890-04. Москва: Издательский отдел Федерального центра Госсанэпиднадзора Минздрава РФ, 2004. [Determination of the sensitivity of microorganisms to antibacterial drugs. MUK 4.2.1890-04. Moscow: Publishing Department of the Federal Center for Sanitary and Epidemiological Surveillance of the Ministry of Health of the Russian Federation, 2004. (In Russ.)]
- Панин А.Н., Комаров А.А., Куликовский А.В., Макаров Д.А. Проблема резистентности к антибиотикам возбудителей болезней, общих для человека и животных // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. 2017. № 5. С. 18–24. [Panin A.N., Komarov A.A., Kulikovskiy A.V., Makarov D.A. The problem of resistance to antibiotics of pathogens common to humans and animals. Veterinariya, zootekhniya i biotekhnologiya = Veterinary, Zootechnics and Biotechnology, 2017, no. 5, pp. 18–24. (In Russ.)]
- Петрицкая Е.Н., Рогаткин Д.А., Русанова Е.В. Сравнительная характеристика антибактериального действия препаратов серебра и наносеребра in vitro // Альманах клинической медицины. 2016. Т. 44, № 2. С. 221–226. [Petritskaya E.N., Rogatkin D.A., Rusanova E.V. Comparative characteristics of the antibacterial action of silver and nanosilver preparations in vitro. Al’manakh klinicheskoi meditsiny = Almanac of Clinical Medicine, 2016, vol. 44, no. 2, pp. 221–226 (In Russ.)] doi: 10.18786/2072-0505-2016-44-2-221-226
- Сазыкин И.С., Хмелевцова Л.Е., Селиверстова Е.Ю., Сазыкина М.А. Влияние антибиотиков, использующихся в животноводстве, на распространение лекарственной устойчивости бактерий (обзор) // Прикладная биохимия и микробиология. 2021. Т. 57, № 1. С. 24–35. [Sazykin I.S., Khmelevtsova L.E., Seliverstova E.Yu., Sazykina M.A. Influence of antibiotics used in animal husbandry on the spread of bacterial drug resistance (review). Prikladnaya biokhimiya i mikrobiologiya = Applied Biochemistry and Microbiology, 2021, vol. 57, no. 1, pp. 24–35. (In Russ.)] doi: 10.31857/S0555109921010335
- Сухина М.А., Шелыгин Ю.А., Пиядина А.Ю., Фельдман Н.Б., Ананян М.А., Луценко С.В., Фролов С.А. Исследование ингибирующего и разрушающего действия препарата наночастиц серебра на биопленки, сформированные клинически значимыми микроорганизмами // Колопроктология. 2019. Т. 18, № 3 (69). С. 56–70. [Sukhina M.A., Shelygin Yu.A., Piyadina A.Yu., Feldman N.B., Ananyan M.A., Lutsenko S.V., Frolov S.A. Study of the inhibitory and destructive effect of a silver nanoparticle preparation on biofilms formed by clinically significant microorganisms. Koloproktologiya = Coloproctology, 2019, vol. 18, no. 3 (69), pp. 56–70. (In Russ.)] doi: 10.33878/2073-7556-2019-18-3-56-70
- Удегова Е.С., Гильдеева К.А., Рукосуева Т.В., Сьед Б. Антибактериальный эффект наночастиц металлов на антибиотикорезистентные штаммы бактерий // Инфекция и иммунитет. 2021. Т. 11, № 4. С. 771–776. [Udegova E.S., Gildeeva K.A., Rukosueva T.V., Baker S. Metal nanoparticle antibacterial effect оn antibiotic-resistant strains of bacteria. Infektsiya i immunitet = Russian Journal of Infection and Immunity, 2021, vol. 11, no. 4, pp. 771–776. (In Russ.)] doi: 10.15789/2220-7619-MNA-1359
- Шульгина Т.А., Зубова К.В., Глинская Е.В., Нечаева О.В., Беспалова Н.В. Сравнительная характеристика антимикробной активности водных дисперсий наночастиц серебра и золота, стабилизированных природными и синтетическими полимерами // Обзоры по клинической фармакологии и лекарственной терапии. 2021. Т. 19, № 4. С. 405–411. [Shulgina T.A., Zubova K.V., Glinskaya E.V., Nechaeva O.V., Bespalova N.V. Comparative characteristics of the antimicrobial activity of aqueous dispersions of silver and gold nanoparticles stabilized by natural and synthetic polymers. Obzory po klinicheskoi farmakologii i lekarstvennoi terapii = Reviews of Clinical Pharmacology and Drug Therapy, 2021, vol. 19, no. 4, pp. 405–411. (In Russ.)] doi: 10.17816/RCF194405-411
- Шульгина Т.А., Нечаева О.В., Глинская Е.В., Торгашова А.С., Зубова К.В. Оценка влияния наночастиц серебра, стабилизированных полимерными соединениями, на выживаемость штаммов Staphylococcus aureus // Известия Саратовского университета. Новая серия. Серия: Химия. Биология. Экология. 2019. Т. 19, Вып. 3. С. 331–336. [Shulgina T.A., Nechaeva O.V., Glinskaya E.V., Torgashova A.S., Zubova K.V. Evaluation of the effect of silver nanoparticles stabilized by polymeric compounds on the survival of Staphylococcus aureus strains. Izvestiya Saratovskogo universiteta. Novaya seriya. Seriya: Khimiya. Biologiya. Ekologiya = Izvestiya of Saratov University. Chemistry. Biology. Ecology, 2019, vol. 19, iss. 3, pp. 331–336. (In Russ.)] doi: 10.18500/1816-9775-2019-19-3-331-337
- Шурыгина И.А., Шурыгин М.Г. Перспективы применения наночастиц металлов для целей регенеративной медицины // Сибирское медицинское обозрение. 2018. Т. 4. С. 31–37. [Shurygina I.A., Shurygin M.G. Prospects for the use of metal nanoparticles for the purposes of regenerative medicine. Sibirskoe meditsinskoe obozrenie = Siberian Medical Review, 2018, vol. 4, pp. 31–37. (In Russ.)]
- Hamida R.S., Abdelmeguid N.E., Ali M.A., Bin-Meferij M.M., Khalil M.I. Synthesis of silver nanoparticles using a novel Cyanobacteria desertifilum sp. extract: their antibacterial and cytotoxicity effects. Int. J. Nanomedicine, 2020, vol. 15, pp. 49–63. doi: 10.2147/IJN.S238575
- Hasan C.M., Dutta D., Nguyen A.N.T. Revisiting antibiotic resistance: mechanistic foundations to evolutionary outlook. Antibiotics, 2021, no. 11: 40. doi: 10.3390/antibiotics11010040
- Kyriakidis I., Vasileiou E., Pana Z.D., Tragiannidis A. Acinetobacter baumannii antibiotic resistance mechanisms. Pathogens, 2021, vol. 10, no. 3: 373. doi: 10.3390/pathogens10030373
- Kwon J.N., Powderly W.G. The post-antibiotic era is here. Science, 2021, vol. 373, iss. 6554, p. 471. doi: 10.1126/science.abl5997
- Lee S.H., Jun B.H. Silver nanoparticles: synthesis and application for nanomedicine. Int. J. Mol. Sci., 2019, vol. 20, no. 4, p. 865. doi: 10.3390/ijms20040865
- Liao S., Zhang Y., Pan X., Dai G., Wu G., Chen L., Zhu F., Liu Q., Jiang C., Cheng Z., Wang L. Antibacterial activity and mechanism of silver nanoparticles against multidrug-resistant Pseudomonas aeruginosa. Int. J. Nanomedicine, 2019, vol. 14, pp. 1469–1487. doi: 10.2147/IJN.S191340
- Liu J., Wang Y., Ma J., Peng Y., Wang A. A review on bidirectional analogies between the photocatalysis and antibacterial properties of ZnO. J Alloys Compd., 2019, vol. 783, pp. 898–918. doi: 10.1016/j.jallcom.2018.12.330
- Liu X., Shao X., Liu Z., Deng L., Shan K., Shi X., He Y., Jacob J.A. Nanotoxic effects of silver nanoparticles on normal HEK-293 cells in comparison to cancerous HELA cell line. Int. J. Nanomedicine, 2021, vol. 16, pp. 753–761. doi: 10.2147/IJN.S289008
- Ma C., Yang Z., Wang W., Hao X., Zhang M., Zhu S., Chen S. Fabrication of Ag-Cu2O/PANI nanocomposites for visiblelight photocatalysis triggering super antibacterial activity. J. Mater. Chem., 2020, vol. 8, pp. 2888–2898. doi: 10.1039/ C9TC05891E
- Mirjalili A., Zamanian A., Hadavi M.M. TiO2 nanotubes-polydopamine-silver composites for long-term antibacterial pro perties: preparation and characterization. Biomedical Engineering: Applications, Basis and Communications, 2019, vol. 31, no. 3, pp. 1950023-1–1950023-9. doi: 10.4015/S1016237219500236
- Pareek V., Gupta R., Panwar J. Do physico-chemical properties of silver nanoparticles decide their interaction with biological media and bactericidal action? A review. Mater. Sci. Eng. C Mater. Biol. Appl., 2018, no. 90, pp. 739–749. doi: 10.1016/j.msec.2018.04.093
- Sánchez-Lуpez E., Gomes D., Esteruelas G., Bonilla L., Lopez-Machado A.L., Galindo R., Cano A., Espina M., Ettcheto M., Camins A., Silva A.M., Durazzo A., Santini A., Garcia M.L., Souto E.B. Metal-based nanoparticles as antimicrobial agents: an overview. Nanomaterials, 2020, vol. 10, no. 2, pp. 292–331. doi: 10.3390/nano10020292
- Shulgina T.A., Nechaeva О.V., Tikhomirova E.I., Bespalova N.V., Ushakova O.V. Photodynamic aspects of antimicrobic action of silvernanoparticles on Staphylococcus aureus strains. Optical and Nano-Technologies for Biology and Medicine: proc. of Saratov Fall Meeting 2018, vol. 11065, p. 1106518. doi: 10.1117/12.2522957
- Shulgina T., Nechaeva O., Torgashova A., Darin N. Using the method of biotesting to assess the toxicity of waste medical and biological practices containing nanomaterials. IOP Conf. Ser.: Earth Environ. Sci., vol. 337: 012012. doi: 10.1088/1755-1315/337/1/012012
- Vallet-Regí M., González B., Izquierdo-BarbaI. Nanomaterials as promising alternative in the infection treatment. Int. J. Mol. Sci., 2019, vol. 20, no. 15: 3806. doi: 10.3390/ijms20153806
- Verkhovskii R., Kozlova A., Atkin V., Kamyshinsky R., Shulgina T., Nechaeva О. Physical properties andcytotoxicity of silvernanoparticles under differentpolymeric stabilizers. Heliyon, 2019, vol. 5, iss. 3: e01305. doi: 10.1016/j.heliyon.2019.e01305
- Yang Z., Ma C., Wang W., Zhang M., Hao X., Chen S. Fabrication of Cu2O-Ag nanocomposites with enhanced durability and bactericidal activity. J. Colloid Interface Sci., 2019, vol. 557, pp. 156–167. doi: 10.1016/j.jcis.2019.09.015
- Yao S., Feng X., Lu J., Zheng Y., Wang X., Volinsky A.A., Wang L.N. Antibacterial activity and inflammation inhibition of ZnO nanoparticles embedded TiO2 nanotubes. Nanotechnology, 2018, vol. 29, no. 24, pp. 1–29. doi: 10.1088/1361-6528/aabac1
- Zhao R., Lv M., Li Y., Sun M., Kong W., Wang L., Song S., Fan C., Jia L., Qiu S., Sun Y., Song H., Hao R. Stable nanocomposite based on PEGylated and silver nanoparticles loaded graphene oxide for long-term antibacterial activity. ACS Appl. Mater. Interfaces, 2017, vol. 9, no. 18, pp. 15328–15341. doi: 10.1021/acsami.7b03987