Молекулярно-генетические и клинические аспекты социально значимых вирусов в реализации врожденных заболеваний

Обложка
  • Авторы: Васильев В.В.1,2, Рогозина Н.В.1,3, Гринева А.А.1
  • Учреждения:
    1. ФГБУ Детский научно-клинический центр инфекционных болезней ФМБА России
    2. ФГБОУ ВО Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова
    3. ФГБОУ ВО Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет Минздрава России
  • Выпуск: Том 11, № 4 (2021)
  • Страницы: 635-648
  • Раздел: ОБЗОРЫ
  • Дата подачи: 29.04.2021
  • Дата принятия к публикации: 30.05.2021
  • Дата публикации: 07.07.2021
  • URL: https://iimmun.ru/iimm/article/view/1729
  • DOI: https://doi.org/10.15789/2220-7619-MGA-1729
  • ID: 1729


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Врожденные вирусные инфекционные заболевания — полиэтиологичная патология, занимающая важное место в структуре перинатальных потерь. Ввиду их широкого распространения и отсутствия специфической профилактики наибольший интерес представляет проблема герпесвирусных инфекций, а именно герпетической инфекции, вызванной вирусом простого герпеса 1 и 2 типа, герпесвирусной инфекции, вызванной вирусом герпеса человека 6 типа, и цитомегаловирусной инфекции, а также парвовирусной инфекции В19. С развитием методов полногеномного секвенирования и созданием международных банков генетических данных расширились возможности изучения зависимости проявлений инфекционного процесса от молекулярно-генетических характеристик микроорганизмов. Доказано, что генетические вариации герпесвирусов могут определять их нейровирулентность, а различные генотипы цитомегаловируса ассоциированы с гепатоспленомегалией, нарушением слуха и симптомами заболеваний центральной нервной системы. Тем не менее данные о корреляции между генотипами и клиническими проявлениями все еще фрагментарны и противоречивы, а при сравнении геномных последовательностей штаммов становится очевидным чрезвычайно высокий уровень их вариабельности. Для вируса герпеса 6 типа доказана интеграция вируса в герминативные клетки с возможностью последующей вертикальной передачи хромосомно-интегрированного вируса потомству и дальнейшего его наследования от поколения к поколению. Прямая связь между различными геновидами парвовируса B19V и клиническими проявлениями заболевания, в том числе врожденного, до настоящего времени не установлена. Перспективным представляется расширение научного поиска по генотипированию вирусов простого герпеса, цитомегаловируса, вирусов герпеса 6 типа, парвовируса В19V в России с учетом возможных различий в географическом распространении этих вирусов на территории страны, этнических особенностей населения, высокой частоты вызываемых этими вирусами врожденных инфекционных заболеваний с широким спектром клинических проявлений. Результаты этих поисков будут востребованы практическим здравоохранением для разработки и применения более эффективных этиотропных препаратов и средств специфической профилактики с учетом тенденций развития персонифицированной и превентивной медицины.

Об авторах

В. В. Васильев

ФГБУ Детский научно-клинический центр инфекционных болезней ФМБА России; ФГБОУ ВО Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова

Автор, ответственный за переписку.
Email: vcubed@ya.ru
ORCID iD: 0000-0002-7336-8805

Васильев Валерий Викторович,  д.м.н., профессор, зав. научно-исследовательским отделом врожденных инфекционных заболеваний; профессор кафедры инфекционных болезней 

191015, Cанкт-Петербург, ул. Профессора Попова, 9

Тел.: 8 (812) 234-60-04 (служебн.), 8 921 940-93-84 (моб.),

Факс: 8 (812) 234-96-91

Россия

Н. В. Рогозина

ФГБУ Детский научно-клинический центр инфекционных болезней ФМБА России; ФГБОУ ВО Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет Минздрава России

Email: lelekin96@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-0968-6291

к.м.н., старший научный сотрудник научно-исследовательского отдела врожденных инфекционных заболеваний; доцент кафедры инфекционных заболеваний у детей ФП и ДПО 

Санкт-Петербург 

Россия

А. А. Гринева

ФГБУ Детский научно-клинический центр инфекционных болезней ФМБА России

Email: a.a.grineva@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-5796-5896

к.м.н., научный сотрудник научно-исследовательского отдела врожденных инфекционных заболеваний 

Россия

Список литературы

  1. Антипова А.Ю., Хамитова И.В., Останкова Ю.В., Семенов А.В., Бичурина М.А., Лаврентьева И.Н. Молекулярногенетическая характеристика изолятов парвовируса B19, циркулирующих на территории Северо-Западного федерального округа // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2018. № 6. С. 55–61. [Antipova A.Yu., Hamitova I.V., Ostankova Yu.V., Semenov A.V., Bichurina M.A., Lavrent’eva I.N. Molecular genetic characteristics of parvovirus B19 isolates circulating in the Northwestern Federal District. Zhurnal mikrobiologii, epidemiologii i immuno biologii = Journal of Microbiology, Epidemiology and Immunobiology, 2018, no. 6, pp. 55–61. (In Russ.)] doi: 10.36233/0372-9311-2018-6-55-61
  2. Антипова А.Ю., Лаврентьева И.Н. Вирусы семейства Parvoviridae: молекулярно-генетические аспекты репродукции и медицинская значимость // Инфекция и иммунитет. 2017. Т. 7, № 1. С. 7–20. [Antipova A.Yu., Lavrent’eva I.N. Viruses of the Parvoviridae family: molecular genetic aspects of reproduction and medical significance. Infektsiya i immunitet = Russian Journal of Infection and Immunity, 2017, vol. 7, no. 1, pp. 7–20. (In Russ.)] doi: 10.15789/2220-7619-2017-1-7-20
  3. Володин Н.Н. Актуальные проблемы неонатологии. М.: ГЭОТАР-Мед, 2004. 448 с. [Volodin N.N. Actual problems of neonatology. Moscow: GEOTAR-Med, 2004. 448 p. (In Russ.)]
  4. Гринева А.А., Васильев В.В., Каштанова Т.А., Кянксеп И.В. Антенатальная диагностика и терапия врожденной инфекции, вызванной парвовирусом В19 (клинический случай) // Журнал инфектологии. 2020. Т. 12, № 4. С. 109–113. [Grineva A.A., Vasilev V.V., Kashtanova T.A., Kyanksep I.V. Antenatal diagnosis and therapy of congenital infection caused by parvovirus B19 (clinical case). Zhurnal infektologii = Journal of Infectology, 2020, vol. 12, no. 4, pp. 109–113. (In Russ.)] doi: 10.22625/2072-6732-2020-12-4-109-113
  5. Ермолович М.А., Семейко Г.В., Самойлович Е.О. Генетические варианты парвовируса B19, циркулирующие в Беларуси в течение эпидемического цикла инфекции (2005–2016) // Известия Национальной академии наук Беларуси. Серия медицинских наук. 2019. Т. 16, № 1. С. 35–45. [Ermolovich M.A., Semejko G.V., Samojlovich E.O. Genetic variants of parvovirus B19 circulating in Belarus during the epidemic cycle of infection (2005–2016). Izvestiia Natsional’noy akademii nauk Belarusi. Seriia meditsinskikh nauk = News of the National Academy of Sciences of Belarus. Medical Science Series, 2019, vol. 16, no. 1, pp. 35–45. (In Russ.)] doi: 10.29235/1814-6023-2019-16-1-35-45
  6. Ермолович М.А., Семейко Г.В., Самойлович Е.О. Молекулярная эпидемиология парвовирусной инфекции в Республике Беларусь // Вопросы вирусологии. 2010. Т. 55, № 2. С. 26–31. [Ermolovich M.A., Semejko G.V., Samojlovich E.O. Molecular epidemiology of parvovirus infection in the Republic of Belarus. Voprosy virusologii = Problems of Virology, 2010, vol. 55, no. 2, pp. 26–31. (In Russ.)]
  7. Ермолович М.А., Семейко Г.В., Самойлович Е.О., Хрусталев В.В. Разнообразие геновариантов парвовируса В19, циркулировавших в Беларуси в 2017–2018 гг. // Медицинский журнал. 2020. № 2 (72). С. 55–60. [Ermolovich M.A., Semejko G.V., Samojlovich E.O., Hrustalev V.V. Diversity of genovariants of parvovirus B19 circulating in Belarus in 2017–2018. Meditsinskii zhurnal = Medical Journal, 2020, no. 2 (72), pp. 55–60. (In Russ.)]
  8. Куюмчьян С.Х., Васильев В.В., Алексеева Н.П. Факторы риска и прогноз развития некоторых актуальных врожденных (внутриутробных) инфекций // Журнал инфектологии. 2016. Т 8, № 1. С. 38–44. [Kuyumchyan S.H., Vasilev V.V., Alekseeva N.P. Risk factors and prognosis for the development of some actual congenital (intrauterine) infections. Zhurnal infektologii = Journal of Infectology, 2016, vol. 8, no. 1, pp. 38–44. (In Russ.)]
  9. Лаврентьева И.Н., Антипова А.Ю., Семенов А.В., Бичурина М.А. Генотипирование изолятов парвовируса В19, циркулирующих в Северо-Западном федеральном округе России // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2013. № 6. C. 36–43. [Lavrenteva I.N., Antipova A.U., Semenov A.V., Bichurina M.A. Genotyping of parvovirus B19 isolates circulating in the Northwestern Federal District of Russia. Zhurnal mikrobiologii, epidemiologii i immunobiologii = Journal of Microbiology, Epidemiology and Immunobiology, 2013, no. 6, pp. 36–43. (In Russ.)]
  10. Лобзин Ю.В., Скрипченко Н.В., Васильев В.В., Рогозина Н.В., Бабаченко И.В., Левина А.С., Харит С.М., Бехтерева М.К., Рулева А.А., Сиземов А.Н., Иванова М.В., Техова И.Г., Ушакова Г.М., Осипова З.А., Голева О.В., Комарова А.М., Бухалко М.А. Диагностика, лечение и профилактика актуальных врожденных инфекций: учебное пособие для интернов, ординаторов, врачей-педиатров, врачей общей практики, инфекционистов. СПб.: СПбГПМУ, 2017. 64 с. [Lobzin Y.V., Skripchenko N.V., Vasilev V.V., Rogozina N.V., Babachenko I.V., Levina A.S., Harit S.M., Bekhtereva M.K., Ruleva A.A., Sizemov A.N., Ivanova M.V., Tekhova I.G., Ushakova G.M., Osipova Z.A., Goleva O.V., Komarova A.M., Buhalko M.A. Diagnostics, treatment and prevention of actual congenital infections: a textbook for interns, residents, pediatricians, general practitioners, infectious disease specialists. St. Petersburg: St. Petersburg State Pediatric Medical University, 2017. 64 p. (In Russ.)]
  11. Неонатология: национальное руководство. Под ред. Н.Н. Володина. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2007. 896 с. [Neonatology: a national guide. Ed. by N.N. Volodin. Moscow: GEOTAR-Media, 2007. 896 p. (In Russ.)]
  12. Об утверждении перечня социально значимых заболеваний и перечня заболеваний, представляющих опасность для окружающих (в редакции постановлений Правительства Российской Федерации от 13.07.2012 № 710, от 31.01.2020 № 66): постановление Правительства РФ № 715 от 01.12.2004 г. [On approval of the list of socially significant diseases and the list of diseases that pose a danger to others (as amended by decrees of the Government of the Russian Federation of 13.07.2012 No. 710, of 31.01.2020 no. 66): decree of the Government of the Russian Federation No. 715 of 01.12.2004. (In Russ.)] URL: http://government.ru/docs/all/50614
  13. Akhtar L.N., Bowen C.D., Renner D.W., Pandey U., Della Fera A.N., Kimberlin D.W., Prichard M.N., Whitley R.J., Weitzman M.D., Szpara M.L. Genotypic and phenotypic diversity of herpes simplex virus 2 within the infected neonatal population. mSphere, 2019, vol. 4, no. 1: e00590-18. doi: 10.1128/mSphere.00590-18
  14. Alcami A. Viral mimicry of cytokines, chemokines and their receptors. Nat. Rev., 2003, vol. 3, no. 1, pp. 36–50. doi: 10.1038/nri980
  15. Alwan S.N., Shamran H.A., Ghaib A.H., Kadhim H.S., Al-Mayah Q.S., Al-Saffar A.J., Bayati A.H., Arif H.S., Fu J., Wickes B.L. Genotyping of Cytomegalovirus from symptomatic infected neonates in Iraq. AJTHAB, 2019, vol. 100, no. 4, pp. 957–963. doi: 10.4269/ajtmh.18-0152
  16. Arav-Boger R., Willoughby R.E., Pass R.F., Zong J.C., Jang W.J., Alcendor D., Hayward G.S. Polymorphisms of the cytomegalovirus (CMV)-encoded tumor necrosis factor-alpha and beta-chemokine receptors in congenital CMV disease. J. Infect. Dis., 2002, vol. 186, no. 8, pp. 1057–1064. doi: 10.1086/344238
  17. Arbuckle J.H., Medveczky M.M., Luka J., Hadley S.H., Luegmayr A., Ablashi D., Lund T.C., Tolar J., De Meirleir K., Montoya J.G., Komaroff A.L., Ambros P.F., Medveczky P.G. The latent human herpesvirus-6A genome specifically integrates in telomeres of human chromosomes in vivo and in vitro. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2010, vol. 107, no. 12, pp. 5563–5568. doi: 10.1073/pnas.0913586107
  18. Arellano-Galindo J., Villanueva-García D., Cruz-Ramirez J.L., Yalaupari-Mejìa J.P., Uribe-Gutiérrez G., VelazquezGuadarrama N., Nava-Frias M., Munoz-Hernández O., Mejía-Arangure J.M. Detection and gB genotyping of CMV in Mexican preterm infants in the context of maternal seropositivity. JIDC, 2014, vol. 8, no. 6, pp. 758–767. doi: 10.3855/jidc.3501
  19. Attwood L.O., Holmes N.E., Hui L. Identification and management of congenital parvovirus B19 infection. Prenat. Diagn., 2020, vol. 40, no. 13, pp. 1722–1731. doi: 10.1002/pd.5819
  20. Barlinn R., Trogstad L., Rollag H., Frøen F., Magnus P., Dudman S.G. Parvovirus B19 DNAemia in pregnant women in relation to perinatal death: a nested case-control study within a large population-based pregnancy cohort. Acta Obstet. Gynecol. Scand., 2020, vol. 99, no. 7, pp. 856–864. doi: 10.1111/aogs.13801
  21. Bascietto F., Liberati M., Murgano D., Buca D., Iacovelli A., Flacco M.E., Manzoli L., Familiari A., Scambia G., D’Antonio F. Outcome of fetuses with congenital parvovirus B19 infection: systematic review and meta-analysis. Ultrasound Obstet. Gynecol., 2018, vol. 52, no. 5, pp. 569–576. doi: 10.1002/uog.19092
  22. Belanger B.G., Lui F. Embryology, teratology TORCH. In: Treasure Island (FL). StatPearls Publishing, 2019. URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK545148/
  23. Bell A.J., Gallagher A., Mottram T., Lake A., Kane E.V., Lightfoot T., Roman E., Jarrett R.F. Germ-line transmitted, chromoso mally integrated HHV-6 and classical Hodgkin lymphoma. PLoS One, 2014, vol. 9, no. 11: e112642. doi: 10.1371/journal.pone.0112642
  24. Boeckh M., Geballe A.P. Cytomegalovirus: pathogen, paradigm, and puzzle. J. Clin. Investig., 2011, vol. 121, no. 5, pp. 1673– 1680. doi: 10.1172/JCI45449
  25. Bowden R., Sakaoka H., Ward R., Donnelly P. Patterns of Eurasian HSV-1 molecular diversity and inferences of human migrations. Infect. Genet. Evol., 2006, vol. 6, no. 1, pp. 63–74. doi: 10.1016/j.meegid.2005.01.004.20–22
  26. Britt W.J. Human cytomegalovirus infection in women with preexisting immunity: sources of infection and mechanisms of infection in the presence of antiviral immunity. J. Infect. Dis., 2020, vol. 221, no. 1, pp. S1–S8. doi: 10.1093/infdis/jiz464
  27. Cagliani R., Forni D., Mozzi A., Sironi M. Evolution and genetic diversity of primate cytomegaloviruses. Microorganisms, 2020, vol. 8, no. 5: 624. doi: 10.3390/microorganisms8050624
  28. Chee M.S., Bankier A.T., Beck S., Bohni R., Brown C.M., Cerny R., Horsnell T., Hutchison C.A. 3rd, Kouzarides T., Martignetti J.A., Barrell B.G. Analysis of the protein-coding content of the sequence of human cytomegalovirus strain AD169. Curr. Top Microbiol. Immunol., 1990, no. 154, pp. 125–69. doi: 10.1007/978-3-642-74980-3_6
  29. Chou S.W., Scott K.M. Rises in antibody to human herpesvirus 6 detected by enzyme immunoassay in transplant recipients with primary cytomegalovirus infection. J. Clin. Microbiol., 1990, vol. 28, no. 5, pp. 851–854. doi: 10.1128/JCM.28.5.851-854.1990
  30. Clark D.A. Clinical and laboratory features of human herpesvirus 6 chromosomal integration. Clin. Microbiol. Infect., 2016, vol. 22, no. 4, pp. 333–339. doi: 10.1016/j.cmi.2015.12.022
  31. Corey L., Whitley R.J., Stone E.F., Mohan K. Difference between herpes simplex virus type 1 and type 2 neonatal encephalitis in neurological outcome. Lancet, 1988, vol. 331, no. 8575–8576, pp. 1–4. doi: 10.1016/s0140-6736(88)90997-x
  32. Cossart Y.E., Field A.M., Cant B., Widdows D. Parvovirus-like particles in human sera. Lancet, 1975, vol. 305, no. 7898, pp. 72–73. doi: 10.1016/s0140-6736(75)91074-0
  33. Cotmore S.F., Agbandje-McKenna M., Canuti M., Chiorini J.A., Eis-Hubinger A.M., Hughes J., Mietzsch M., Modha S., Ogliastro M., Pénzes J.J., Pintel D.J., Qiu J., Soderlund-Venermo M., Tattersall P., Tijssen P.; ICTV Report Consortium. ICTV virus taxonomy profile: Parvoviridae. J. Gen. Virol., 2019, vol. 100, no. 3, pp. 367–368. doi: 10.1099/jgv.0.001212
  34. Craig J.M., MaCauley J.C., Weller T.H., Wirth P. Isolation of intranuclear inclusion producing agents from infants with illnesses resembling cytomegalic inclusion disease. SEBM, 1957, vol. 94, no. 1, pp. 4–12. doi: 10.3181/00379727-94-22841
  35. Daibata M., Taguchi T., Taguchi H., Miyoshi I. Integration of human herpesvirus 6 in a Burkitt’s lymphoma cell line. Br. J. Haematol., 1998, vol. 102, no. 5, pp. 1307–1313. doi: 10.1046/j.1365-2141.1998.00903.x
  36. De Vries J.J., Wessels E., Korver A.M., van der Eijk A.A., Rusman L.G., Kroes A.C., Vossen A.C. Rapid genotyping of cytomegalovirus in dried blood spots by multiplex real-time PCR assays targeting the envelope glycoprotein gB and gH genes. J. Clin. Microbiol., 2012, vol. 50, no. 2, pp. 232–237. doi: 10.1128/JCM.05253-11
  37. Depledge D.P., Kundu S., Jensen N.J., Gray E.R., Jones M., Steinberg S., Gershon A., Kinchington P.R., Schmid D.S., Balloux F., Nichols R.A., Breuer J. Deep sequencing of viral genomes provides insight into the evolution and pathogenesis of varicella zoster virus and its vaccine in humans. Mol. Biol. Evol., 2014, vol. 31, vol. 2., pp. 397–409. doi: 10.1093/molbev/mst210.27
  38. Ekman A., Hokynar K., Kakkola L., Kantola K., Hedman L., Bondén H., Gessner M., Aberham C., Norja P., Miettinen S., Hedman K., Söderlund-Venermo M. Biological and immunological relations among human parvovirus B19 genotypes 1 to 3. J. Virol., 2007, vol. 81, no. 13, pp. 6927–6935. doi: 10.1128/JVI.02713-06
  39. Emery V.C., Lazzarotto T. Cytomegalovirus in pregnancy and the neonate. F1000Research, 2017, vol. 6: 138. doi: 10.12688/f1000research.10276.1
  40. Enders G., Daiminger A., Bäder U., Exler S., Enders M. Intrauterine transmission and clinical outcome of 248 pregnancies with primary cytomegalovirus infection in relation to gestational age. J. Clin. Virol., 2011, vol. 52, no. 3, pp. 244–246. doi: 10.1016/j.jcv.2011.07.005
  41. Endo A., Watanabe K., Ohye T., Suzuki K., Matsubara T., Shimizu N., Kurahashi H., Yoshikawa T., Katano H., Inoue N., Imai K., Takagi M., Morio T., Mizutani S. Molecular and virological evidence of viral activation from chromosomally integrated human herpesvirus 6A in a patient with X-linked severe combined immunodeficiency. Clin. Infect. Dis., 2014, vol. 59, no. 4, pp. 545–548. doi: 10.1093/cid/ciu323
  42. Fernandes N.D., Arya K., Ward R. Congenital Herpes Simplex. In: Treasure Island (FL). StatPearls Publishing, 2021. URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK507897
  43. Fields B.N., Byers K. The genetic basis of viral virulence. Philosophical Transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological Sciences, 1983, vol. 303, no. 1114, pp. 209–218.
  44. Godet A.N., Soignon G., Koubi H., Bonnafous P., Agut H., Poirot C., Gautheret-Dejean A. Presence of HHV-6 genome in spermatozoa in a context of couples with low fertility: what type of infection? Andrologia, 2015, vol. 47, no. 5, pp. 531–535. doi: 10.1111/and.12299
  45. Gonzalez-Scarano F., Beaty B., Sundin D., Janssen R., Endres M.J., Nathanson N. Genetic determinants of the virulence and infectivity of La Crosse virus. Microb. Pathog., 1988, vol. 4, no. 1, pp. 1–7. doi: 10.1016/0882-4010(88)90041-1
  46. Hubacek P., Hrdlickova A., Spacek M., Zajac M., Muzikova K., Sedlacek P., Cetkovsky P. Prevalence of chromosomally integrated HHV-6 in patients with malignant disease and healthy donors in the Czech Republic. Folia Microbiol. (Praha), 2013, vol. 58, no. 1, pp. 87–90. doi: 10.1007/s12223-012-0180-z
  47. Jaan A., Rajnik M. TORCH Complex. In: Treasure Island (FL). StatPearls Publishing, 2020. URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK560528
  48. Jain P., Jain A., Khan D.N., Kumar M. Human parvovirus B19 associated dilated cardiomyopathy. BMJ Case Reports, 2013: bcr2013010410. doi: 10.1136/bcr-2013-010410
  49. Jain P., Jain A., Prakash S., Khan D.N., Singh D.D., Kumar A., Moulik N.R., Chandra T. Prevalence and genotypic characterization of human parvovirus B19 in children with hemato-oncological disorders in North India. J. Med. Virol., 2015, vol. 87, no. 2, pp. 303–309. doi: 10.1002/jmv.24028
  50. James S.H., Kimberlin D.W. Neonatal herpes simplex virus infection: epidemiology and treatment. Clinics Perinatol., 2015, vol. 42, no. 1, pp. 47–59. doi: 10.1016/j.clp.2014.10.005
  51. James S.H., Kimberlin D.W. Neonatal herpes simplex virus infection. Infect. Dis. Clin. North Am., 2015, vol. 29, no. 3, pp. 391– 400. doi: 10.1016/j.idc.2015.05.001
  52. Kaufer B.B., Flamand L. Chromosomally integrated HHV-6: impact on virus, cell and organismal biology. Curr. Opin. Virol., 2014, vol. 9, pp. 111–118. doi: 10.1016/j.coviro.2014.09.010
  53. Kimberlin D.W., Lin C.Y., Jacobs R.F., Powell D.A., Frenkel L.M., Gruber W.C., Rathore M., Bradley J.S., Diaz P.S., Kumar M., Arvin A.M., Gutierrez K., Shelton M., Weiner L.B., Sleasman J.W., de Sierra T.M., Soong S.J., Kiell J., Lakeman F.D., Whitley R.J.; Natural history of neonatal herpes simplex virus infections in the acyclovir era. Pediatrics, 2001, vol. 108, no. 2, pp. 223–229. doi: 10.1542/peds.108.2.223
  54. Kreilmeier T., Mejri D., Hauck M., Kleiter M., Holzmann K. Telomere transcripts target telomerase in human cancer cells. Genes (Basel), 2016, vol. 7, no. 8: 46. doi: 10.3390/genes7080046
  55. Leong H.N., Tuke P.W., Tedder R.S., Khanom A.B., Eglin R.P., Atkinson C.E., Ward K.N., Griffiths P.D., Clark D.A. The prevalence of chromosomally integrated human herpesvirus 6 genomes in the blood of UK blood donors. J. Med. Virol., 2007, vol. 79, no. 1, pp. 45–51. doi: 10.1002/jmv.20760
  56. Lindenburg I.T., Smits-Wintjens V.E., van Klink J.M., Verduin E., van Kamp I.L., Walther F.J., Schonewille H., Doxiadis I.I., Kanhai H.H., van Lith J.M., van Zwet E.W., Oepkes D., Brand A., Lopriore E; LOTUS study group. Long-term neurodevelopmental outcome after intrauterine transfusion for hemolytic disease of the fetus/newborn: the LOTUS study. Am. J. Obstet. Gynecol., 2012, vol. 206, no. 2, pp. 141.e1–141.e8. doi: 10.1016/j.ajog.2011.09.024
  57. Looker K.J., Magaret A.S., May M.T., Turner K.M.E., Vickerman P., Newman L.M., Gottlieb S.L. First estimates of the global and regional incidence of neonatal herpes infection. Lancet Glob. Health., 2017, vol. 5, no. 3, pp. e300–e309. doi: 10.1016/s2214-109x(16)30362-x
  58. Luppi M., Barozzi P., Marasca R., Torelli G. Integration of human herpesvirus-6 (HHV-6) genome in chromosome 17 in two lymphoma patients. Leukemia, 1994, vol. 8, no. 1, pp. 41–45.
  59. Luppi M., Marasca R., Barozzi P., Ferrari S., Ceccherini-Nelli L., Batoni G., Merelli E., Torelli G. Three cases of human herpesvirus-6 latent infection: integration of viral genome in peripheral blood mononuclear cell DNA. J. Med. Virol., 1993, vol. 40, no. 1, pp. 44–52. doi: 10.1002/jmv.1890400110
  60. Lurain N.S., Kapell K.S., Huang D.D., Short J.A., Paintsil J., Winkfield E., Benedict C.A., Ware C.F., Bremer J.W. Human cytomegalovirus UL144 open reading frame: sequence hypervariability in low-passage clinical isolates. J. Virol., 1999, vol. 73, no. 12, pp. 10040–10050. doi: 10.1128/JVI.73.12.10040-10050.1999
  61. Maisonneuve E., Garel C., Friszer S., Pénager C., Carbonne B., Pernot F., Rozenberg F., Schnuriger A., Cortey A., Moutard M.L., Jouannic J.M. Fetal brain injury associated with parvovirus B19 congenital infection requiring intrauterine transfusion. Fetal. Diagn. Ther., 2019, vol. 46, no. 1, pp. 1–11. doi: 10.1159/000489881
  62. Manandhar T., Hò G.T., Pump W.C., Blasczyk R., Bade-Doeding C. Battle between host immune cellular responses and HCMV immune evasion. Int. J. Mol. Sci., 2019, vol. 20, no. 15: 3626. doi: 10.3390/ijms20153626
  63. Manuel O., Asberg A., Pang X., Rollag H., Emery V.C., Preiksaitis J.K., Kumar D., Pescovitz M.D., Bignamini A.A., Hartmann A., Jardine A.G., Humar A. Impact of genetic polymorphisms in cytomegalovirus glycoprotein B on outcomes in solid-organ transplant recipients with cytomegalovirus disease. Clin. Infect. Dis., 2009, vol. 49, no. 8, pp. 1160–1166. doi: 10.1086/605633
  64. Mao H., Rosenthal K.S. Strain-dependent structural variants ofherpes simplex virus type 1 ICP34.5 determine viral plaque size, efficiency of glycoprotein processing, and viral release and neuroinvasive disease potential. J. Virol., 2003, vol. 77, no. 6., pp. 3409–3417. doi: 10.1128/JVI.77.6.3409-3417.2003
  65. Martí-Carreras J., Maes P. Human cytomegalovirus genomics and transcriptomics through the lens of next-generation sequencing: revision and future challenges. Virus Genes, 2019, vol. 55, no. 2, pp. 138–164. doi: 10.1007/s11262-018-1627-3
  66. McSharry B.P., Avdic S., Slobedman B. Human cytomegalovirus encoded homologs of cytokines, chemokines and their receptors: roles in immunomodulation. Viruses, 2012, vol. 4, no. 11, pp. 2448–2470. doi: 10.3390/v4112448
  67. Mercolini F., Verdi F., Eisendle K., Messner H., Staffler A. Congenital disseminated HSV-1 infection in preterm twins after primary gingivostomatitis of the mother: case report and review of the literature. Z. Geburtshilfe Neonatol., 2014, vol. 218, no. 6, pp. 261–264. doi: 10.1055/s-0034-1385854
  68. Michou V., Liarmakopoulou S., Thomas D., Tsimaratou K., Makarounis K., Constantoulakis P., Angelopoulou R., Tsilivakos V. Herpes virus infected spermatozoa following density gradient centrifugation for IVF purposes. Andrologia, 2012, vol. 44, no. 3, pp. 174–180. doi: 10.1111/j.1439-0272.2010.01121.x
  69. Miura H., Kawamura Y., Hattori F., Kozawa K., Ihira M., Ohye T., Kurahashi H., Yoshikawa T. Chromosomally integrated human herpesvirus 6 in the Japanese population. J. Med. Virol., 2018, vol. 90, no. 10, pp. 1636–1642. doi: 10.1002/jmv.25244
  70. Mühlemann B., Margaryan A., Damgaard P.B., Allentoft M.E., Vinner L., Hansen A.J., Weber A., Bazaliiskii V.I., Molak M., Arneborg J., Bogdanowicz W., Falys C., Sablin M., Smrčka V., Sten S., Tashbaeva K., Lynnerup N., Sikora M., Smith D.J., Fouchier R.A.M., Drosten C., Sjögren K.G., Kristiansen K., Willerslev E., Jones T.C. Ancient human parvovirus B19 in Eurasia reveals its long-term association with humans. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2018, vol. 115, no. 29, pp. 7557–7562. doi: 10.1073/pnas.1804921115
  71. Müller V., Fraser C., Herbeck J.T. A strong case for viral geneticfactors in HIV virulence. Viruses, 2011, vol. 3, no. 3, pp. 204–216. doi: 10.3390/v3030204.17
  72. Murayama T., Takegoshi M., Tanuma J., Eizuru Y. Analysis of human cytomegalovirus UL144 variability in low-passage clinical isolates in Japan. Intervirology, 2005, vol. 48, no. 2–3, pp. 201–206. doi: 10.1159/000081749
  73. Mussi-Pinhata M.M., Yamamoto A.Y., Aragon D.C., Duarte G., Fowler K.B., Boppana S., Britt W.J. Seroconversion for cytomegalovirus infection during pregnancy and fetal infection in a highly seropositive population: “The brachs study”. J. Infect. Dis., 2018, vol. 218, no. 8, pp. 1200–1204. doi: 10.1093/infdis/jiy321
  74. Naing Z., Hamilton S.T., van Zuylen W.J., Scott G.M., Rawlinson W.D. Differential expression of PDGF receptor-α in human placental trophoblasts leads to different entry pathways by human cytomegalovirus strains. Sci. Rep., 2020, vol. 10, no. 1: 1082. doi: 10.1038/s41598-020-57471-3
  75. Nelson J.A., Fleckenstein B., Jahn G., Galloway D.A., McDougall J.K. Structure of the transforming region of human cytomegalovirus AD169. J. Virol., 1984, vol. 49, no. 1, pp. 109–115. doi: 10.1128/JVI.49.1.109-115.1984
  76. Nijman J., Mandemaker F.S., Verboon-Maciolek M.A., Aitken S.C., van Loon A.M., de Vries L.S., Schuurman R. Genotype distribution, viral load and clinical characteristics of infants with postnatal or congenital cytomegalovirus infection. PLoS One, 2014, vol. 9, no. 9: e108018. doi: 10.1371/journal.pone.0108018
  77. Novak Z., Ross S.A., Patro R.K., Pati S.K., Kumbla R.A., Brice S., Boppana S.B. Cytomegalovirus strain diversity in seropositive women. J. Clin. Microbiol., 2008, vol. 46, no. 3, pp. 882–886. doi: 10.1128/JCM.01079-07
  78. Pantry S.N., Medveczky M.M., Arbuckle J.H., Luka J., Montoya J.G., Hu J., Renne R., Peterson D., Pritchett J.C., Ablashi D.V., Medveczky P.G. Persistent human herpesvirus-6 infection in patients with an inherited form of the virus. J. Med. Virol., 2013, vol. 85, no. 11, pp. 1940–1946. doi: 10.1002/jmv.23685
  79. Pantry S.N., Medveczky P.G. Latency, integration, and reactivation of human herpesvirus-6. Viruses, 2017, vol. 9, no. 7: 194. doi: 10.3390/v9070194
  80. Paradowska E., Studzińska M., Nowakowska D., Wilczyński J., Rycel M., Suski P., Gaj Z., Kaczmarek B., Zbróg Z., Leśnikowski Z.J. Distribution of UL144, US28 and UL55 genotypes in Polish newborns with congenital cytomegalovirus infections. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect Dis., 2012, vol. 31, no. 7, pp. 1335–1345. doi: 10.1007/s10096-011-1447-z
  81. Pellett P.E., Ablashi D.V., Ambros P.F., Agut H., Caserta M.T., Descamps V., Flamand L., Gautheret-Dejean A., Hall C.B., Kamble R.T., Kuehl U., Lassner D., Lautenschlager I., Loomis K.S., Luppi M., Lusso P., Medveczky P.G., Montoya J.G., Mori Y., Ogata M., Pritchett J.C., Rogez S., Seto E., Ward K.N., Yoshikawa T., Razonable R.R. Chromosomally integrated human herpesvirus 6: questions and answers. Rev. Med. Virol., 2012, vol. 22, no. 3, pp. 144–155. doi: 10.1002/rmv.715
  82. Pickett B.E., Sadat E.L., Zhang Y., Noronha J.M., Squires R.B., Hunt V., Liu M., Kumar S., Zaremba S., Gu Z., Zhou L., Larson C.N., Dietrich J., Klem E.B., Scheuermann R.H. ViPR: an open bioinformatics database and analysis resource for virology research. Nucleic Acids Res., 2012, vol. 40, no. D1, pp. D593–D598. doi: 10.1093/nar/gkr859
  83. Pignatelli S., Lazzarotto T., Gatto M.R., Dal Monte P., Landini M.P., Faldella G., Lanari M. Cytomegalovirus gN genotypes distribution among congenitally infected newborns and their relationship with symptoms at birth and sequelae. Clin. Infect. Dis., 2010, vol. 51, no. 1, pp. 33–41. doi: 10.1086/653423
  84. Pinninti S.G., Kimberlin D.W. Management of neonatal herpes simplex virus infection and exposure. Arch. Dis. Child. Fetal Neonatal Ed., 2014, vol. 99, no. 3, pp. 240–244. doi: 10.1136/archdischild-2013-303762
  85. Plummer F.A., Hammond G.W., Forward K., Sekla L., Thompson L.M., Jones S.E., Kidd I.M., Anderson M.J. An erythema infectiosum-like illness caused by human parvovirus infection. N. Engl. J. Med., 1985, vol. 313, no. 2, pp. 74–79. doi: 10.1056/NEJM198507113130203
  86. Renner D.W., Szpara M.L. Impacts of genome-wide analyses on our understanding of human herpes-virus diversity and evolution. J. Virol., 2018, vol. 92, no. 1: e00908-17. doi: 10.1128/JVI.00908-17
  87. Renzette N., Gibson L., Jensen J.D., Kowalik T.F. Human cytomegalovirus intrahost evolution — a new avenue for understanding and controlling herpesvirus infections. Curr. Opin. Virol., 2014, vol. 8, pp. 109–115. doi: 10.1016/j.coviro.2014.08.001.26
  88. Revello M.G., Campanini G., Piralla A., Furione M., Percivalle E., Zavattoni M., Gerna G. Molecular epidemiology of primary human cytomegalovirus infection in pregnant women and their families. J. Med. Virol., 2008, vol. 80, no. 8, pp. 1415–1425. doi: 10.1002/jmv.21243
  89. Ribbert H. Ueber protozoenartige Zellen in der Niere eines syphilitischen Neugeborenen und in der Parotis von Kindern. Zbl. Allg. Pathol., 1904, vol. 15, pp. 945–948.
  90. Rinckel L.A., Buno B.R., Gierman T.M., Lee D.C. Discovery and analysis of a novel parvovirus B19 genotype 3 isolate in the United States. Transfusion, 2009, vol. 49, no. 7, pp. 1488–1492. doi: 10.1111/j.1537-2995.2009.02160.x
  91. Robinson C.M., Jesudhasan P.R., Pfeiffer J.K. Bacterial lipopolysaccharide binding enhances virion stability and promotes environmental fitness of an enteric virus. Cell Host Microbe, 2014, vol. 15, no. 1, pp. 36–46. doi: 10.1016/j.chom.2013.12.004.13–18
  92. Rowe W.P., Hartley J.W., Waterman S., Turner H.C., Huebner R.J. Cytopathogenic agent resembling human salivary gland virus recovered from tissue cultures of human adenoids. Proc. Soc. Exp. Biol. Med., 1956, vol. 92, no. 2, pp. 418–424. doi: 10.3181%2F00379727-92-22497
  93. Sakaoka H., Kawana T., Grillner L., Aomori T., Yamiguchi T., Saito H., Fujinaga K. Genome variations in herpes simplex virus type 2 strains isolated in Japan and Sweden. J. Gen. Virol., 1987, vol. 68, no. 8, pp. 2105–2116. doi: 10.1099/0022-1317-68-8-2105.21
  94. Sakaoka H., Kurita K., Iida Y., Takada S., Umene K., Kim Y.T., Ren C.S., Nahmias A.J. Quantitative analysis of genomic polymorphism of herpes simplex virus type 1 strains from six countries: studies of molecular evolution and molecular epidemiology of the virus. J. Gen. Virol., 1994, vol. 75, no. 3, pp. 513–527. doi: 10.1099/0022-1317-75-3-513.22
  95. Salbetti M.B., Pedranti M.S., Barbero P., Molisani P., Lazzari M., Olivera N., Isa M.B., Bertoldi A., Moreno L., Adamo M.P. Molecular screening of the human parvoviruses B19 and bocavirus 1 in the study of congenital diseases as applied to symptomatic pregnant women and children. Access Microbiol., 2019, vol. 1, no. 5: e000037. doi: 10.1099/acmi.0.000037
  96. Sanabani S., Neto W.K., Pereira J., Sabino E.C. Sequence variability of human erythroviruses present in bone marrow of Brazilian patients with various parvovirus B19-related hematological symptoms. J. Clin. Microbiol., 2006, vol. 44, no. 2, pp. 604–606. doi: 10.1128/JCM.44.2.604-606.2006
  97. Sénat M.V., Anselem O., Picone O., Renesme L., Sananès N., Vauloup-Fellous C., Sellier Y., Laplace J.P., Sentilhes L. Prevention and management of genital herpes simplex infection during pregnancy and delivery: guidelines from the french college of gynaecologists and obstetricians (CNGOF). Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol., 2018, vol. 224, pp. 93–101. doi: 10.1016/j.ejogrb.2018.03.011
  98. Servant A., Laperche S., Lallemand F., Marinho V., De Saint Maur G., Meritet J.F., Garbarg-Chenon A. Genetic diversity within human erythroviruses: identification of three genotypes. J. Virol., 2002, vol. 76, no. 18, pp. 9124–9134. doi: 10.1128/jvi.76.18.9124-9134.2002
  99. Sharma S., Wisner T.W., Johnson D.C., Heldwein E.E. HCMV gB shares structural and functional properties with gB proteins from other herpesviruses. Virology, 2013, vol. 435, no. 2, pp. 239–249. doi: 10.1016/j.virol.2012.09.024
  100. Slavov S.N., Kashima S., Silva-Pinto A.C., Covas D.T. Genotyping of Human parvovirus B19 among Brazilian patients with hemoglobinopathies. Can. J. Microbiol., 2012, vol. 58, no. 2, pp. 200–205. doi: 10.1139/w11-119
  101. Smith M.G. Propagation in tissue cultures of a cytopathogenic virus from human salivary gland virus (SGV) disease. Proc. Soc. Exp. Biol. Med., 1956, vol. 92, no. 2, pp. 424–430. doi: 10.3181/00379727-92-22498
  102. Sowmya P., Dhanya V., Madhavan H.N., Therese K.L. Comparative efficacy of PCR-based restriction fragment length polymorphism (RFLP) & multiplex PCR for glycoprotein B (gB) genotyping of human cytomegalovirus. Indian J. Med. Res., 2007, vol. 126, no. 2, pp. 122–127.
  103. Staras S.A., Dollard S.C., Radford K.W., Flanders W.D., Pass R.F., Cannon M.J. Seroprevalence of cytomegalovirus infection in the United States, 1988–1994. Clin. Infect. Dis., 2006, vol. 43, no. 9, pp. 1143–1151. doi: 10.1086/508173
  104. Stranska R., Schuurman R., Toet M., Verboon-Maciolek M., de Vries L.S., van Loon A.M. Application of UL144 molecular typing to determine epidemiology of cytomegalovirus infections in preterm infants. J. Clin. Microbiol., 2006, vol. 44, no. 3, pp. 1108– 1110. doi: 10.1128/JCM.44.3.1108-1110.2006
  105. Tanaka-Taya K., Sashihara J., Kurahashi H., Amo K., Miyagawa H., Kondo K., Okada S., Yamanishi K. Human herpesvirus 6 (HHV-6) is transmitted from parent to child in an integrated form and characterization of cases with chromosomally integrated HHV-6 DNA. J. Med. Virol., 2004, vol. 73, no. 3, pp. 465–473. doi: 10.1002/jmv.20113
  106. Telford M., Navarro A., Santpere G. Whole genome diversity of inherited chromosomally integrated HHV-6 derived from healthy individuals of diverse geographic origin. Sci. Rep., 2018, vol. 8, no. 1: 3472. doi: 10.1038/s41598-018-21645-x
  107. Trincado D.E., Scott G.M., White P.A., Hunt C., Rasmussen L., Rawlinson W.D. Human cytomegalovirus strains associated with congenital and perinatal infections. J. Med. Virol., 2000, vol. 61, no. 4, pp. 481–487. doi: 10.1002/1096-9071(200008) 61:4<481::aidjmv11>3.0.co;2-h
  108. Tscherne D.M., García-Sastre A. Virulence determinants of pandemic influenza viruses. J. Clin. Investig., 2011, vol. 121, no. 1, pp. 6–13. doi: 10.1172/JCI44947.16
  109. Wang C., Zhao L., Lu S. Role of TERRA in the regulation of telomere length. Int. J. Biol. Sci., 2015, vol. 11, no. 3, pp. 316–323. doi: 10.7150/ijbs.10528
  110. Waring G.J. Parvovirus B19 infection: timely diagnosis in pregnancy essential. Case Rep. in Women’s Health, 2018, vol. 18: e00057. doi: 10.1016/j.crwh.2018.e00057
  111. Warnecke J.M., Pollmann M., Borchardt-Lohölter V., Moreira-Soto A., Kaya S., Sener A.G., Gómez-Guzmán E., FigueroaHernández L., Li W., Li F., Buska K., Zakaszewska K., Ziolkowska K., Janz J., Ott A., Scheper T., Meyer W. Seroprevalences of antibodies against TORCH infectious pathogens in women of childbearing age residing in Brazil, Mexico, Germany, Poland, Turkey and China. Epidemiol. Infect., 2020, vol. 30, no. 148: e271. doi: 10.1017/S0950268820002629
  112. Whitley R., Arvin A., Prober C., Burchett S., Corey L., Powell D., Plotkin S., Starr S., Alford C., Connor J., Jacobs R., Nahmias A., Soong S.-J. A controlled trial comparing vidarabine with acyclovir in neonatal herpes simplex virus infection. N. Engl. J. Med., 1991, vol. 324, no. 7, pp. 444–449. doi: 10.1056/nejm199102143240703
  113. Whitley R., Arvin A., Prober C., Corey L., Burchett S., Plotkin S., Starr S., Jacobs R., Powell D., Nahmias A., Sumaya C., Edwards K., Alford C., Caddell G., Soong S.-J. Predictors of morbidity and mortality in neonates with herpes simplex virus infections. N. Engl. J. Med., 1991, vol. 324, no. 7, pp. 450–454. doi: 10.1056/NEJM199102143240704
  114. Xiong Y.Q., Tan J., Liu Y.M., He Q., Li L., Zou K., Sun X. The risk of maternal parvovirus B19 infection during pregnancy on fetal loss and fetal hydrops: a systematic review and meta-analysis. J. Clin. Virol., 2019, no. 114, pp. 12–20. doi: 10.1016/j.jcv.2019.03.004
  115. Yan H., Koyano S., Inami Y., Yamamoto Y., Suzutani T., Mizuguchi M., Ushijima H., Kurane I., Inoue N. Genetic variations in the gB, UL144 and UL149 genes of human cytomegalovirus strains collected from congenitally and postnatally infected Japanese children. Arch. Virol., 2008, vol. 153, no. 4, pp. 667–674. doi: 10.1007/s00705-008-0044-7
  116. Zhi N., Zádori Z., Brown K.E., Tijssen P. Construction and sequencing of an infectious clone of the human parvovirus B19. Virology, 2004, vol. 318, no. 1, pp. 142–152. doi: 10.1016/j.virol.2003.09.011
  117. Zuhair M., Smit G.S.A., Wallis G., Jabbar F., Smith C., Devleesschauwer B., Griffiths P. Estimation of the worldwide seroprevalence of cytomegalovirus: a systematic review and meta-analysis. Rev. Med. Virol., 2019, vol. 29, no. 3: e2034. doi: 10.1002/rmv.2034

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Васильев В.В., Рогозина Н.В., Гринева А.А., 2021

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 64788 от 02.02.2016.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах