Russian Journal of Infection and ImmunityRussian Journal of Infection and ImmunityИнфекция и иммунитет2220-76192313-7398SPb RAACI78110.15789/2220-7619-2018-3-316-324ORIGINAL ARTICLESОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИIDENTIFICATION MARKERS OF INFECTION DUE TO C. TRACHOMATIS AND C. PNEUMONIAE, IN PATIENTS WITH DISEASES OF THE GASTROINTESTINAL TRACTВЫЯВЛЕНИЕ МАРКЕРОВ ИНФЕКЦИИ, ОБУСЛОВЛЕННОЙ C. TRACHOMATIS И C. PNEUMONIAE, У БОЛЬНЫХ С ЗАБОЛЕВАНИЯМИ ЖЕЛУДОЧНО-КИШЕЧНОГО ТРАКТАBondarevaN. E.БондареваН. E.
Russian Federation

Researcher, Laboratory of Chlamydiosis, Department of Medical Microbiology.

123098, Russian Federation, Moscow, Gamaleya str., 18.

Phone: +7 962 985-07-55 (mobile).

научный сотрудник лаборатории хламидиоза отдела медицинской микробиологии.

123098, Россия, Москва, ул. Гамалеи, 18.

Тел.: 8 962 985-07-55 (моб.).

nataliia.d@mail.ruMorgunovaE. Yu.МоргуноваE. Ю.
Russian Federation

Researcher, Laboratory of Chlamydiosis, Department of Medical Microbiology.

Moscow.

научный сотрудник лаборатории хламидиозов отдела медицинской микробиологии.

Москва.ZigangirovaN. A.ЗигангироваH. А.
Russian Federation

PhD, MD (Biology), Professor, Head of the Department of Medical Microbiology.

Moscow.

д.б.н., профессор, руководитель отдела медицинской микробиологии.

Москва.ShapkinYu. G.ШапкинЮ. Г.
Russian Federation

PhD, MD (Medicine), Professor, Honored Physician of the Russian Federation, Head of the Department of General Surgery.

Saratov.

д.м.н., профессор, заслуженный врач РФ, зав. кафедрой общей хирургии.

Саратов.ChalykYu. V.ЧалыкЮ. В.
Russian Federation

PhD, MD (Medicine), Professor, Professor of the Department of General Surgery.

Saratov.

д.м.н., профессор, профессор кафедры общей хирургии.

Саратов.ChalykR. Yu.ЧалыкР. Ю.
Russian Federation

PhD (Medicine), Physician.

Saratov.

к.м.н., врач ГУЗ Городская клиническая больница № 6 им. академика В.Н. Кошелева.

Саратов.Gamaleya Research Center of Epidemiology and Microbiology.ФГБУ ФНИЦЭМ им. Н.Ф. Гамалеи МЗ РФ.Saratov State Medical University named after V.I. Razumovsky.ФГБОУ ВО Саратовский ГМУ им. В.И. Разумовского МЗ РФ.Saratov City Clinical Hospital No. 6 named after academician V.N. Kosheleva.МУЗ Городская клиническая больница № 6 им. академика В.Н. Кошелева.04112018833163240111201801112018Copyright ©; 2018, Bondareva N.E., Morgunova E.Y., Zigangirova N.A., Shapkin Y.G., Chalyk Y.V., Chalyk R.Y.Copyright ©; 2018, Бондарева Н.E., Моргунова E.Ю., Зигангирова H.А., Шапкин Ю.Г., Чалык Ю.В., Чалык Р.Ю.2018Bondareva N.E., Morgunova E.Y., Zigangirova N.A., Shapkin Y.G., Chalyk Y.V., Chalyk R.Y.Бондарева Н.E., Моргунова E.Ю., Зигангирова H.А., Шапкин Ю.Г., Чалык Ю.В., Чалык Р.Ю.https://creativecommons.org/licenses/by/4.0https://iimmun.ru/iimm/article/view/781

 To date, clinical data have convincingly shown that C. trachomatis and C. pneumoniae infectious can cause serious diseases with severe complications and consequences. There are assumptions that the developed chronic chlamydial infection can become an important factor in the pathogenesis of the gastrointestinal tract diseases, which are manifested in the so-called post-infectious period. It is commonly known that chlamydial infection has a tropism to the cylindrical epithelium, which covers the human mucous membrane of the urethra, cervix, rectum, conjunctiva of the eyes and the throat. However, the role of the causative agents of chlamydial infections, such as C. trachomatis and C. pneumoniae, in the occurrence of the gastrointestinal tract diseases has not been studied. In order to study the possible relationship between the gastrointestinal diseases and the presence of chlamydial infection markers, we have selected a group of patients with the gastrointestinal diseases and detected antibodies to C. trachomatis and C. pneumoniae and DNA of these pathogens in blood serum, liver biopsy and bile ducts. As a result, C. trachomatis DNA in blood serum was detected in 50% of cases, and in liver biopsies — in 59.3%. A new approach has been developed in the serological diagnosis of chlamydial infection caused by C. trachomatis, which allowed for revealing diagnostic antibody titers in 51.9% of cases in this group of patients, and in the comparison group — in 11.6% of cases. Among 50% of patients, in whom DNA was revealed in blood serum, it was also revealed in 64.3% of cases in biopsy samples of gastrointestinal organs. Upon detection of C. trachomatis DNA in blood serum, antibodies to the “cultural” antigen were detected in 60.1% of cases, and with the simultaneous detection of C. trachomatis DNA in blood serum and gastrointestinal organs, they were found in 72.2% of cases. Simultaneous detection of C. trachomatis, both in blood serum and in the gastrointestinal tract, may indicate the ability of C. trachomatis to spread hematogenously and infect organs away from the primary focus of infection. The obtained data absolutely require further study in light of the identification of the relationship between the detection of the pathogen and the development of the gastrointestinal pathology. But in general, the results are not yet studied evidence of the possible gastrointestinal organs infection by C. trachomatis.

К настоящему времени данными клинических наблюдений убедительно показано, что возбудители хламидийных инфекций, C. trachomatis и C. pneumoniae, способны вызывать серьезные заболевания с тяжелыми осложнениями и последствиями. Имеются предположения, что развившаяся хроническая хламидийная инфекция может стать важным фактором в патогенезе заболеваний желудочно-кишечного тракта (ЖКТ), которые проявляются в так называемый постинфекционный период. Как известно, хламидийная инфекция обладает тропизмом к цилиндрическому эпителию, который у человека выстилает слизистую оболочку уретры, цервикального канала, прямой кишки, конъюнктивы глаз и области глотки. Однако роль возбудителей хламидийных инфекций, таких как C. trachomatis и C. pneumoniae, в возникновении заболеваний ЖКТ человека не изучена. С целью изучения возможной взаимосвязи между заболеваниями ЖКТ и наличием маркеров хламидийной инфекции была отобрана группа больных с заболеваниями органов ЖКТ, у которых проводили выявление антител к C. trachomatis и C. pneumoniae и ДНК этих возбудителей в сыворотке крови, биоптатах печени и желчевыводящих протоков. В результате ДНК C. trachomatis в сыворотке крови была выявлена в 50% случаев, а в биоптатах печени в 59,3%. Разработан новый подход в серологической диагностике хламидийной инфекции, вызванной C. trachomatis, который позволил выявить диагностические титры антител в этой группе больных в 51,9% случаев , в группе сравнения в 11,6% случаев. Среди 50% больных, у которых ДНК была выявлена в сыворотке крови, в 64,3% случаев она также выявлялась в биоптатах органов ЖКТ. При обнаружении ДНК C. trachomatis в сыворотке крови антитела к «культуральному» антигену обнаруживались в 60,1% случаев, а при одновременном обнаружении ДНК C. trachomatis в сыворотке крови и органах ЖКТ они обнаруживались в 72,2% случаев. Одновременное выявление C. trachomatis как в сыворотке крови, так и в органах ЖКТ может свидетельствовать о способности C. trachomatis распространяться гематогенным путем и инфицировать органы, удаленные от первичного очага инфекции. Полученные данные, безусловно, требуют даль нейшего изучения в свете выявления связи между обнаружением возбудителя и развитием патологии органов ЖКТ, однако в целом результаты являются еще не изученным свидетельством возможности инфицирования C. trachomatis органов ЖКТ.

C. trachomatisC. pneumoniaechlamydial infectionpersistent infectiongastrointestinal tractPCRtrachomatisC. pneumoniaeхламидийная инфекцияперсистентная инфекцияжелудочно-кишечный трактПЦР1. Абакарова П.Р. Урогенитальный хламидиоз: принципы диагностики и лечения // Гинекология. 2006. Т. 8, № 2. С. 21–23.2. Мавров Г.И. Хламидийные инфекции: биология возбудителей, патогенез, клиника, диагностика, лечение, профилактика. Киев, 2005. 524 с.3. Султанахмедов Э.С., Утц С.Р., Салтыков Ю.В., Мотин В.Л., Федорова В.А. Детекция Chlamydia trachomatis в образцах крови как метод диагностики осложненных и персистирующих форм урогенитальной хламидийной инфекции // Саратовский научно-медицинский журнал. 2015. Т. 11, № 3. С. 381–385.4. Al-Aydie S.N., Obeidat N.M., Al-Younes H.M. Role of Chlamydia pneumoniae in community-acquired pneumonia in hospitalized Jordanian adults // J. Infect. Dev. Ctries, 2016, vol. 10, no. 3, pp. 227–236. doi: 10.3855/jidc.65905. Bartlett J.G., Breiman R.F., Mandell L.A., Fine T.M. Jr. Community-acquired pneumonia in adults: guidelines for management. Clin. Infect. Dis., 1998, vol. 26, no. 4, pp. 811–838. doi: 10.1086/5139536. Beatty W.L., Morrison R.P., Byrne G.I. Persistent chlamydiae: from cell culture to a paradigm for chlamydial pathogenesis. Microbiol. Rev., 1994, vol. 58, no. 4, pp. 686–699.7. Blasi F., Damato S., Cosentini R., Tarsia P., Raccanelli R., Centanni S., Allegra L.; Chlamydia InterAction with COPD (CIAC) Study Group. Chlamydia pneumoniae and chronic bronchitis: association with severity and bacterial clearance following treatment. Thorax, 2002, vol. 57, no. 8, pp. 672–676. doi: 10.1136/thorax.57.8.6728. Caldwell H.D., Wood H., Crane D., Bailey R., Jones R.B., Mabey D., Maclean I., Mohammed Z., Peeling R., Roshick C., Schachter J., Solomon A.W., Stamm W.E., Suchland R.J., Taylor L., West S.K., Quinn T.C., Belland R.J., McClarty G. Polymorphisms in Chlamydia trachomatis tryptophan synthase genes differentiate between genital and ocular isolates. J. Clin. Invest., 2003, vol. 111, no. 11, pp. 1757–1769. doi: 10.1172/JCI179939. Carter J.D., Inman R.D. Chlamydia-induced reactive arthritis: hidden in plain sight? Best Pract. Res. Clin. Rheumatol., 2011, vol. 25, no. 3, pp. 359–374. doi: 10.1016/j.berh.2011.05.00110. Choroszy-Król I., Frej-Mądrzak M., Hober M., Sarowska J., Jama-Kmiecik A. Infections caused by Chlamydophila pneumoniae. Adv. Clin. Exp. Med., 2014, vol. 23, no. 1, pp. 123–12611. Dlugosz A., Törnblom H., Mohammadian G., Morgan G., Veress B., Edvinsson B., Sandström G., Lindberg G. Chlamydia trachomatis antigens in enteroendocrine cells and macrophages of the small bowel in patients with severe irritable bowel syndrome. BMC Gastroenterol., 2010, vol. 10: 19. doi: 10.1186/1471-230X-10-1912. Francis C., Prior A., Whorwell P.J., Morris J. Chlamydia trachomatis infection: is it relevant in irritable bowel syndrome? Digestion, 1998, vol. 59, no. 2, pp. 157–159. doi: 10.1159/00000748113. Haggerty C.L., Gottlieb S.L., Taylor B.D., Low N., Xu F., Ness R.B. Risk of sequelae after Chlamydia trachomatis genital infection in women. J. Infect. Dis., 2010, vol. 201, no. 2, pp. 134–155. doi: 10.1086/65239514. Jakus S., Neuer A., Dieterle S., Bongiovanni A.M., Witkin S.S. Antibody to the Chlamydia trachomatis 60 kDa heat shock protein in follicular fluid and in vitro fertilization outcome. Am. J. Reprod. Immunol., 2008, vol. 59, no. 2, pp. 85–89. doi: 10.1111/j.1600- 0897.2007.00539.x15. Linhares I.M., Witki S.S. Immunopathogenic consequences of Chlamydia trachomatis 60 kDa heat shock protein expression in the female reproductive tract. Cell. Stress Chaperones, 2010, vol. 15, no. 5, pp. 467–473. doi: 10.1007/s12192-010-0171-416. Mascellino M.T., Ciardi M.R., Oliva A., Cecinato F., Hassemer M.P., Borgese L. Chlamydia trachomatis detection in a population of asymptomatic and symptomatic women: correlation with the presence of serological markers for this infection. New Microbiol., 2008, no. 31, pp. 249–256.17. Miyashita N., Fukano H., Yoshida K., Niki Y., Matsushima T. Chlamydia pneumoniae infection in adult patients with persistent cough. J. Med. Microbiol., 2003, no. 52, pp. 265–269.18. Neuer A., Lam K.N., Tiller F.W., Kiesel L., Witkin S.S. Humoral immune response to membrane components of Chlamydia trachomatis and expression of the human 60 kDa heat shock protein in follicular fluid of in-vitru fertilization patients. Hum. Reprod., 1997, vol. 12, no. 5, pp. 925–929.19. Ondondo B.O., Brunham R.C., Harrison W.G., Kinyari T., Sheth P.M., Mugo N.R., Cohen C.R. Frequency and magnitude of Chlamydia trachomatis elementary body- and heat shock protein 60-stimulated interferon γ responses in peripheral blood mononuclear cells and endometrial biopsy samples from women with high exposure to infection. J. Infect. Dis., 2009, vol. 199, no. 12, pp. 1771–1779. doi: 10.1086/59909520. Peeling R.W., Bailey R.L., Conway D.J., Holland M.J., Campbell A.E., Jallow O., Whittle H.C., Mabey C.W. Antibody response to the 60-kDa chlamydial heat-shock protein is associated with scarring trachoma. J. Infect. Dis., 1998, vol. 177, no. 1, pp. 256–259. doi: 10.1086/51736721. Peipert J.F. Clinical practice. Genital chlamydial infections. N. Engl. J. Med., 2003, vol. 349, no. 25, pp. 2424–2430. doi: 10.1056/ NEJMcp03054222. Persson К., Boman J. Comparison of five serologic tests for diagnosis of acute infections by Chlamydia pneumoniae. Clin. Diagn. Lab. Immunol., 2000, vol. 7, no. 5, pp. 739–740.23. Rank R.G., Yeruva L. Hidden in plain sight: chlamydial gastrointestinal infection and its relevance to persistence in human genital infection. Infect. Immun., 2014, vol. 82, no. 4, pp. 1362–1371. doi: 10.1128/IAI.01244-1324. Schachter J., Moncada J., Liska S., Shayevich C., Klausner J.D. Nucleic acid amplification tests in the diagnosis of chlamydial and gonococcal infections of the oropharynx and rectum in men who have sex with men. Sex. Transm. Dis., 2008, vol. 35, no. 7, pp. 637–642. doi: 10.1097/OLQ.0b013e31817bdd7e25. Seraceni S., De Seta F., Colli C., Del Savio R., Pesel G., Zanin V., D’Agaro P., Contini C., Comar M. High prevalence of HPV multiple genotypes in women with persistent chlamydia trachomatis infection. Infect. Agent. Cancer, 2014, vol. 9: 30. doi: 10.1186/1750- 9378-9-3026. Skilton R.J., Cutcliffen L.T., Barlow D., Wang Y., Salim O., Lambden P.R., Clarke I.N. Penicillin induced persistence in Chlamydia trachomatis: high quality time lapse video analysis of the developmental cycle. PLoS ONE, 2009, vol. 4, no. 11: e7723. doi: 10.1371/ journal.pone.000772327. Smith-Norowitz T.A., Chotikanatis K., Erstein D.P., Perlman J., Norowitz Y.M., Joks R., Durkin H.G., Hammerschlag M.R., Kohlhoff S. Chlamydia pneumoniae enhances the Th2 profile of stimulated peripheral blood mononuclear cells from asthmatic patients. Hum. Immunol., 2016, vol. 77, no. 5, pp. 382–388. doi: 10.1016/j.humimm.2016.02.01028. Tiitinen A., Surcel H.M., Halttunen M., Birkelund S., Bloigu A., Christiansen G., Koskela P., Morrison S.G., Morrison R.P., Paavonen J. Chlamydia trachomatis and chlamydial heat shock protein 60-specific antibody and cell-mediated responses predict tubal factor infertility. Hum. Reprod., 2006, vol. 21, no. 6, pp. 1533–1538. doi: 10.1093/humrep/del01429. Zigangirova N.A., Rumyantseva Y.P., Morgunova E.Y., Kapotina L.N., Didenko L.V., Kost E.A., Koroleva E.A., Bashmakov Y.K., Petyaev I.M. Detection of C. trachomatis in the serum of the patients with urogenital chlamydiosis. Biomed. Res. Int., 2013, 7 p. doi: 10.1155/2013/489489