<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE root>
<article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/" article-type="other" dtd-version="1.2" xml:lang="en"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">Russian Journal of Infection and Immunity</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="en">Russian Journal of Infection and Immunity</journal-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>Инфекция и иммунитет</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn publication-format="print">2220-7619</issn><issn publication-format="electronic">2313-7398</issn><publisher><publisher-name xml:lang="en">SPb RAACI</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="publisher-id">769</article-id><article-id pub-id-type="doi">10.15789/2220-7619-2019-5-6-648-654</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="en"><subject>ORIGINAL ARTICLES</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="ru"><subject>ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="article-type"><subject></subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title xml:lang="en">Genetic and phenotypic characteristics of <italic>Klebsiella michiganensis</italic> isolates</article-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>Генетическая и фенотипическая характеристика изолятов <italic>Klebsiella michiganensis</italic></trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Sivolodskii</surname><given-names>E. P.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Сиволодский</surname><given-names>Е. П.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>PhD, MD (Medicine), Professor, Department of Microbiology; Senior Researcher, Laboratory of Molecular Biological Techniques</p><p>St. Petersburg</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>д.м.н., профессор кафедры микробиологии; старший научный сотрудник лаборатории молекулярно-биологических технологий</p><p>Санкт-Петербург</p></bio><xref ref-type="aff" rid="aff1"/><xref ref-type="aff" rid="aff2"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Freylikhman</surname><given-names>O. A.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Фрейлихман</surname><given-names>О. А.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>Olga A. Freylikhman, PhD (Biology), Head of the Laboratory of Molecular Biological Techniques</p><p>197101, St. Petersburg, Mira str., 14.</p><p>Phone: +7 (812) 232-01-08 (office).</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>Фрейлихман Ольга Александровна, к.б.н., зав. лабораторией молекулярно-биологических технологий </p><p>197101, Санкт-Петербург, ул. Мира, 14.</p><p>Тел.: 8 (812) 232-01-08 (служебн.).</p></bio><email>olga1-7@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff2"/></contrib></contrib-group><aff-alternatives id="aff1"><aff><institution xml:lang="en">S.M. Kirov Military Medical Academy</institution></aff><aff><institution xml:lang="ru">ФГБВОУ ВО Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова МО РФ</institution></aff></aff-alternatives><aff-alternatives id="aff2"><aff><institution xml:lang="en">St. Petersburg Pasteur Institute</institution></aff><aff><institution xml:lang="ru">ФБУН НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Пастера</institution></aff></aff-alternatives><pub-date date-type="pub" iso-8601-date="2019-12-01" publication-format="electronic"><day>01</day><month>12</month><year>2019</year></pub-date><volume>9</volume><issue>5-6</issue><issue-title xml:lang="en"/><issue-title xml:lang="ru"/><fpage>648</fpage><lpage>654</lpage><history><date date-type="received" iso-8601-date="2018-10-24"><day>24</day><month>10</month><year>2018</year></date><date date-type="accepted" iso-8601-date="2019-06-28"><day>28</day><month>06</month><year>2019</year></date></history><permissions><copyright-statement xml:lang="en">Copyright ©; 2019, Sivolodskii E.P., Freylikhman O.A.</copyright-statement><copyright-statement xml:lang="ru">Copyright ©; 2019, Сиволодский Е.П., Фрейлихман О.А.</copyright-statement><copyright-year>2019</copyright-year><copyright-holder xml:lang="en">Sivolodskii E.P., Freylikhman O.A.</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="ru">Сиволодский Е.П., Фрейлихман О.А.</copyright-holder><ali:free_to_read xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/"/><license><ali:license_ref xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/">https://creativecommons.org/licenses/by/4.0</ali:license_ref></license></permissions><self-uri xlink:href="https://iimmun.ru/iimm/article/view/769">https://iimmun.ru/iimm/article/view/769</self-uri><abstract xml:lang="en"><p>The aim of the study was to identify an optimal research target for detection of <italic>Klebsiella michiganensis</italic> isolates, determine their genetic and phenotypic characteristics necessary for identification. Here, we examined 11 <italic>Klebsiella oxytoca</italic> strains, lacking (atypical, negative) a marker 5-aminosalicylate decarboxylase (detected by the chromogenic reaction by 5-aminosalicylic acid) unique for the genus <italic>Klebsiella</italic> bacteria. They were selected for genetic analysis subsequent to a phenotypic characterization of <italic>K. oxytoca</italic> clinical isolates, collected in within 2015–2018 period in medical institutions in St. Petersburg. Two <italic>K. oxytoca</italic> and two <italic>Raoultella ornithinolytica</italic> clinical strains displaying typical properties were used as a control. The presence of 5-aminosalicylate decarboxylase was detected by the chromogenic reaction with the “Klebsiella 5-ASK CHROME C” nutrient medium (Pasteur Institute, St. Petersburg). Substrate utilization as the sole carbon source was detected on a solid minimal synthetic medium added with 2 g/L substrate during incubation for 72 hours at 37°C. Biochemical bacteria features were studied by the microvolume method with the “Rapid-Entero” test system (Pasteur Institute, St. Petersburg). Genetic strain characterization was performed by estimating <italic>16S rRNA, gyrA, rpoB</italic> by using a routine PCR with primer sequences described before. Two <italic>rpoB</italic> gene fragments with a total length 834 bp, 16S <italic>rRNA</italic> gene fragment — 387 bp, and <italic>gyrA</italic> gene fragment — 441 bp were amplified followed by their sequencing by Singer on an ABI 3130 automatic capillary sequencer (Applied Biosystems, USA) and subsequently determined similarity levels. Amplification pattern for <italic>pehX</italic> gene PCR fragments was performed by using a method described elsewhere with two primer pairs flanking fragment AD with a 513 bp length and 344 bp CD-long motifs. While examining 11 clinical bacterial strains identified earlier as <italic>Klebsiella oxytoca</italic>, lacking (atypical, negative) a 5-aminosalicylate decarboxylase (detected by the chromogenic reaction by 5-aminosalicylic acid) unique for the genus <italic>Klebsiella</italic>, molecular techniques identified 9 <italic>K. michiganensis</italic> strains and 1 strain highly homologous to <italic>Klebsiella kielensis</italic> based on the <italic>rpoB</italic> gene nucleotide sequence, confirming its high informative value. We used the methods for estimating a similarity level for sequenced fragments of 16S <italic>rRNA</italic> genes (fragment length 387 bp), <italic>gyrA</italic> gene (fragment length 441 bp), <italic>rpoB</italic> gene (<italic>rpoB-b</italic> and <italic>rpoB-e</italic> with a total fragments length 834 bp), and the analysis of marker amplicon patterns for <italic>pehX</italic> gene (AD, CD). It was shown that for the 4 <italic>K. oxytoca</italic> strains, 99–100% similarity to <italic>K. michiganensis</italic> was identified for all fragments in the sequenced genes. Moreover, similarity of all 9 strains detected with <italic>K. michiganensis</italic> was revealed only in the <italic>rpoB</italic> gene, hereby allowing to recommend it as the most informative approach. The <italic>pehX</italic> gene encoding polygalacturonase was verified by PCR in the majority of <italic>K. michiganensis</italic> strains, pointing that this approach is not rational for their identification (distinguish with K. oxytoca). The most informative for the phenotypic identification of <italic>K. michiganensis</italic> are were assays characterized by a common profile for the majority of strains: lack of 5-aminosalicylate decarboxylase, lack of utilized histamine, dulcitol, tricarballylic acid; positive for indole production, as well as D-melezitose and putrescine utilization.</p></abstract><trans-abstract xml:lang="ru"><p>Цель исследования — выявить оптимальный объект поиска изолятов <italic>Klebsiella michiganensis</italic>, определить их генетические и фенотипические характеристики, необходимые для идентификации. Объектом исследования были 11 штаммов <italic>Klebsiella oxytoca</italic>, атипичные (отрицательные) по уникальному для клебсиелл маркеру 5-аминосалицилат декарбоксилазе. Они были отобраны для генетического исследования после фенотипического изучения клинических изолятов <italic>K. oxytoca</italic>, выделенных в 2015–2018 гг. в лечебных учреждениях Санкт-Петербурга. В контроле использовали по два клинических штамма <italic>K. oxytoca</italic> и <italic>Raoultella ornithinolytica</italic> с типичными свойствами. Наличие 5-аминосалицилат декарбоксилазы определяли по хромогенной реакции на питательной среде «Клебсиелла 5-АСК ХРОМ С» (НИИЭМ им. Пастера, Санкт-Петербург). Утилизацию субстратов в качестве единственного источника углерода выявляли на плотной минимальной синтетической среде с 2 г/л субстрата при инкубации посевов в течение 72 ч при 37°С. Биохимические признаки бактерий изучали микрообъемным методом тест-системой «Рапид-Энтеро» (НИИЭМ им. Пастера, Санкт-Петербург). Для генетической характеристики штаммов использовали гены <italic>16S rRNA, gyrA, rpoB, pehX</italic>. Амплификацию фрагментов генов <italic>16S rRNA, gyrA, rpoB </italic>проводили методом стандартной ПЦР с использованием праймеров, имеющих описанные ранее последовательности. Были амплифицированы два фрагмента гена <italic>rpoB</italic>, общей длиной 834 п.н., фрагмент гена <italic>16SrRNA</italic> длиной 387 п.н., фрагмент гена <italic>gyrA</italic> длиной 441 п.н. Амплифицированные фрагменты секвенировали по Сенгеру на автоматическом капиллярном секвенаторе ABI 3130 (Applied Biosystems, США) с последующим применением методов определения уровней сходства секвенированных фрагментов генов. ПЦР фрагментов гена <italic>pehX</italic> для определения паттерна его амплификации проводили по ранее описанной методике с использованием двух пар праймеров, фланкирующих фрагмент AD длиной 513 п.н. и CD длиной 344 п.н. При изучении 11 штаммов бактерий, идентифицированных ранее как <italic>K. oxytoca</italic>, атипичных (негативных) по маркеру 5-аминосалицилат декарбоксилазе, были выявлены генетическим методом 9 штаммов <italic>K. michiganensis</italic>, 1 штамм-мутант <italic>K. oxytoca</italic> и 1 штамм с высокой степенью гомологии с <italic>Klebsiella kielensis</italic> по нуклеотидной последовательности гена <italic>rpoB</italic>, что подтверждает высокую информативность этого объекта исследования. У 4 штаммов K. oxytoca выявлено 99–100% сходства с <italic>K. michiganensis</italic> по всем фрагментам секвенированных генов. Только секвенирование гена <italic>rpoB</italic> обнаружило сходство всех 9 выявленных штаммов с <italic>K. michiganensis</italic>, что позволяет рекомендовать этот подход как наиболее информативный. Наличие гена <italic>pehX</italic>, кодирующего полигалактуроназу, подтверждено методом ПЦР у большинства штаммов <italic>K. michiganensis</italic>, поэтому это исследование нецелесообразно для их идентификации (дифференциации с <italic>K. oxytoca</italic>). Наиболее информативными для фенотипической идентификации <italic>K. michiganensis</italic> являются тесты, по которым большинство штаммов имеют единый профиль: отсутствие 5-аминосалицилат декарбоксилазы, утилизации гистамина, дульцитола, трикарбаллиловой кислоты; наличие продукции индола, утилизации D-мелицитозы, путресцина.</p></trans-abstract><kwd-group xml:lang="en"><kwd>Klebsiella michiganensis</kwd><kwd>Klebsiella kieltnsis</kwd><kwd>Klebsiella oxytoca</kwd><kwd>unique Klebsiella enzyme 5-aminosalicylate decarboxylase</kwd><kwd>rpoB gene sequencing</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>Klebsiella michiganensis</kwd><kwd>Klebsiella kielensis</kwd><kwd>Klebsiella oxytoca</kwd><kwd>уникальный фермент клебсиелл 5-АСК декарбоксилаза</kwd><kwd>секвенирование гена rpoB</kwd></kwd-group><funding-group/></article-meta></front><body></body><back><ref-list><ref id="B1"><label>1.</label><mixed-citation>1. Сиволодский Е.П. Специфическое свойство бактерий рода Klebsiella — цветная реакция с 5-аминосалициловой кислотой в питательной среде // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1988. № 12. С. 26–29.</mixed-citation></ref><ref id="B2"><label>2.</label><mixed-citation>2. Сиволодский Е.П. Хромогенная синтетическая питательная среда «Клебсиелла 5-АСК ХРОМ С» для выделения и идентификации клебсиелл // Клиническая лабораторная диагностика. 2015. Т. 60, № 5. С. 48–51.</mixed-citation></ref><ref id="B3"><label>3.</label><mixed-citation>3. Brisse S., Verhoef J. Phylogenetic diversity of Klebsiella pneumoniae and Klebsiella oxytoca clinical isolates revealed by randomly amplified polymorphic DNA, gyrA and parC genes sequencing and ribotyping. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2001, vol. 51, pp. 915–924. doi: 10.1099/00207713-51-3-915</mixed-citation></ref><ref id="B4"><label>4.</label><mixed-citation>4. Granier S., Plaisance L., Leflon-Guibout V., Lagier E., Morand S., Goldstein F., Nicolas-Chanoine M. Recognition of two genetic groups in the Klebsiella oxytoca taxon on the basis of chromosomal β-lactamase and housekeeping gene sequences as well as ERIC-1R PCR typing. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2003, vol. 53 (pt. 3), pp. 661–668. doi: 10.1099/ijs.0.02408-0</mixed-citation></ref><ref id="B5"><label>5.</label><mixed-citation>5. Kovtunovych G., Lytvynenko T., Negrutska V., Lar O., Brisse S., Kozyrovska N. Identification of Klebsiella oxytoca using a specific PCR assay targeting the polygalacturonase pehX gene. Res. Microbiol., 2003, vol. 154, pp. 587–592. doi: 10.1016/S0923-2508(03)00148-7</mixed-citation></ref><ref id="B6"><label>6.</label><mixed-citation>6. Liao T.L., Lin A.C., Chen E., Huang T.W., Liu Y.M., Chang Y.H., Lei J.F., Lauderdale T.L., Wang J.T., Chang S.L., Tsai S.F., Chen Y.T. Complete genome sequence of Klebsiella oxytoca E718, a New Delhi metallo-β-lactamase-1-producing nosocomial strain. J. Bacteriol., 2012, vol. 194, no. 19, pp. 5454. doi: 10.1128/JB.01216-12</mixed-citation></ref><ref id="B7"><label>7.</label><mixed-citation>7. Passet V., Brisse S. Description of Klebsiella grimontii sp. nov. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2018, vol. 68, pp. 377–381. doi: 10.1099/ijsem.0.002517</mixed-citation></ref><ref id="B8"><label>8.</label><mixed-citation>8. Saha R., Farrance Ch.E., Verghese B., Hong S., Donofrio R. Klebsiella michiganensis sp. nov. a new bacterium isolated from a tooth brust holder. Curr. Microbiol., 2013, vol. 66, pp. 72–78. doi: 10.1007/s00284-012-0245-x</mixed-citation></ref><ref id="B9"><label>9.</label><mixed-citation>9. Zheng B., Xu H., Ya X., Lv T., Jiang X., Cheng H., Zhang J., Chen Y., Huang C., Xiao Y. Identification and genomic characterization of a RPC-2-, NDM-1and NDM-5-producing Klebsiella michiganensis isolate. J. Antimicrob. Chemother., 2018, vol. 73, no. 2, pp. 536–538. doi: 10.1093/jac/dkx415</mixed-citation></ref></ref-list></back></article>
