<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE root>
<article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/" article-type="research-article" dtd-version="1.2" xml:lang="en"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">Russian Journal of Infection and Immunity</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="en">Russian Journal of Infection and Immunity</journal-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>Инфекция и иммунитет</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn publication-format="print">2220-7619</issn><issn publication-format="electronic">2313-7398</issn><publisher><publisher-name xml:lang="en">SPb RAACI</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="publisher-id">17627</article-id><article-id pub-id-type="doi">10.15789/2220-7619-PAG-17627</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="en"><subject>ORIGINAL ARTICLES</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="ru"><subject>ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="article-type"><subject>Research Article</subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title xml:lang="en">Phenotypic and genetic analysis of <italic>Klebsiella pneumoniae</italic> strains isolated from community-acquired pneumonia patients in Rostov-on-Don in 2021–2023</article-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>Фенотипический и генетический анализ штаммов <italic>Klebsiella pneumoniae</italic>, выделенных от больных внебольничной пневмонией в г. Ростове-на-Дону в 2021–2023 гг.</trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Rykova</surname><given-names>Violetta A.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Рыкова</surname><given-names>Виолетта Александровна</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>PhD (Biology), Researcher, Laboratory of Natural Focal and Zoonotic Infections</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>к.б.н., научный сотрудник лаборатории природно-очаговых и зоонозных инфекций</p></bio><email>violletryk@gmail.com</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Podladchikova</surname><given-names>O. N.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Подладчикова</surname><given-names>О. Н.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>PhD (Chemistry), Senior Researcher, Laboratory of Natural Focal and Zoonotic Infections</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>к.х.н., старший научный сотрудник лаборатории природно-очаговых и зоонозных инфекций</p></bio><email>violletryk@gmail.com</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Anisimova</surname><given-names>A. S.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Анисимова</surname><given-names>А. С.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>Junior Researcher, Laboratory of Natural Focal and Zoonotic Infections</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>младший научный сотрудник лаборатории природно-очаговых и зоонозных инфекций</p></bio><email>violletryk@gmail.com</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Aronova</surname><given-names>N. V.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Аронова</surname><given-names>Н. В.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>PhD (Biology), Senior Researcher, Laboratory of Natural Focal and Zoonotic Infections</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>к.б.н., старший научный сотрудник лаборатории природно-очаговых и зоонозных инфекций</p></bio><email>violletryk@gmail.com</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Vodopyanov</surname><given-names>A. S.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Водопьянов</surname><given-names>А. С.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>PhD (Medicine), Leading Researcher, Molecular Biology Laboratory of Natural Focal and Zoonotic Infections</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>к.м.н., ведущий научный сотрудник лаборатории молекулярной биологии природно-очаговых и зоонозных инфекций</p></bio><email>violletryk@gmail.com</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Temyakova</surname><given-names>S. Yu.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Темякова</surname><given-names>С. Ю.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>Junior Researcher, Molecular Biology Laboratory of Natural Focal and Zoonotic Infections</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>младший научный сотрудник лаборатории молекулярной биологии природно-очаговых и зоонозных инфекций</p></bio><email>violletryk@gmail.com</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Gudueva</surname><given-names>E. N.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Гудуева</surname><given-names>Е. Н.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>Junior Researcher, Laboratory “Collection of Pathogenic Microorganisms”</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>младший научный сотрудник лаборатории «Коллекция патогенных микроорганизмов»</p></bio><email>gudueva_en@antiplague.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib></contrib-group><aff-alternatives id="aff1"><aff><institution xml:lang="en">Rostov-on-Don Scientific Research Anti-Plague Institute of Rospotrebnadzor</institution></aff><aff><institution xml:lang="ru">ФКУЗ Ростовский-на-Дону противочумный институт Роспотребнадзора</institution></aff></aff-alternatives><pub-date date-type="preprint" iso-8601-date="2024-08-13" publication-format="electronic"><day>13</day><month>08</month><year>2024</year></pub-date><pub-date date-type="pub" iso-8601-date="2024-12-25" publication-format="electronic"><day>25</day><month>12</month><year>2024</year></pub-date><volume>14</volume><issue>6</issue><issue-title xml:lang="en"/><issue-title xml:lang="ru"/><fpage>1104</fpage><lpage>1116</lpage><history><date date-type="received" iso-8601-date="2024-03-26"><day>26</day><month>03</month><year>2024</year></date><date date-type="accepted" iso-8601-date="2024-08-09"><day>09</day><month>08</month><year>2024</year></date></history><permissions><copyright-statement xml:lang="en">Copyright ©; 2024, Rykova V.A., Podladchikova O.N., Anisimova A.S., Aronova N.V., Vodopyanov A.S., Temyakova S.Y., Gudueva E.N.</copyright-statement><copyright-statement xml:lang="ru">Copyright ©; 2024, Рыкова В.А., Подладчикова О.Н., Анисимова А.С., Аронова Н.В., Водопьянов А.С., Темякова С.Ю., Гудуева Е.Н.</copyright-statement><copyright-year>2024</copyright-year><copyright-holder xml:lang="en">Rykova V.A., Podladchikova O.N., Anisimova A.S., Aronova N.V., Vodopyanov A.S., Temyakova S.Y., Gudueva E.N.</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="ru">Рыкова В.А., Подладчикова О.Н., Анисимова А.С., Аронова Н.В., Водопьянов А.С., Темякова С.Ю., Гудуева Е.Н.</copyright-holder><ali:free_to_read xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/"/><license><ali:license_ref xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/">https://creativecommons.org/licenses/by/4.0</ali:license_ref></license></permissions><self-uri xlink:href="https://iimmun.ru/iimm/article/view/17627">https://iimmun.ru/iimm/article/view/17627</self-uri><abstract xml:lang="en"><p><italic>Introduction.</italic> Here, we present a study of 33 <italic>Klebsiella pneumoniae</italic> strains isolated in Rostov-on-Don in 2021–2023 from patients with community-acquired pneumonia. The bacterial strains were analyzed according to the traits known to be linked to hypervirulence. The aim of the study was to compare of the strains by analyzing phenotypic (siderophore activity, hypermucoviscosity, bacteriophage sensitivity) and genotypic (presence of plasmids, siderophore genes, and <italic>rmpA</italic> and <italic>rmpA2</italic> genes) properties.<italic> Materials and methods.</italic> Assessment of bacteriophage sensitivity, hypermucoviscosity using “string test”, siderophore activity on chrome azurol S containing plates, high-molecular weight plasmids content, and whole-genome sequencing. <italic>Results.</italic> Sequencing of 11 strains differing in mucoviscosity allowed to establish that all hypermucoviscous strains contained the <italic>rmp</italic>A gene, whereas the <italic>rmp</italic>A2 gene was either absent or contained single nucleotide insertions or deletions, leading to a reading frame shift. The same mutations in <italic>rmp</italic>A2 were observed in non-mucoviscous strains, all of which lacked the <italic>rmp</italic>A gene. The strains differed by the presence of four siderophore clusters, the number of which did not correlate with the siderophore activity. The lack of <italic>rmp</italic>A and salmochelin biosynthesis genes but presence of its receptor gene in the non-mucoviscous strains suggest that they have deletions, leading to the loss of the hypermucoviscous phenotype. A study of 33 strains showed that they were able to dissociate, forming dark and light colonies, which were observed in both hypermucoviscous and non-hypermucoviscous strains. In dark but not light clones obtained from hypermucoviscous strains, this property was preserved. In contrast, both clone variants of non-hypermucoviscous strains retained this property. An analysis of different clones of 17 strains showed that dark vs light clones had reduced siderophore activity and bacteriophage sensitivity. The clone genomes did not differ in the siderophore clusters, but <italic>rmp</italic>A was revealed only in the dark clones of hypermucoviscous strains. In non-mucoviscous strains, this gene was not found in both clones, whereas differences in siderophore activity and bacteriophage sensitivity were preserved. <italic>Conclusion. K. pneumoniae</italic> hypermucoviscosity phenotype is associated with the presence of at least the <italic>rmp</italic>A, while intact <italic>rmp</italic>A2 is not required. The differences in the colony morphology, clone siderophore activity, and bacteriophage sensitivity are not related to <italic>rmp</italic>A and <italic>rmp</italic>A2, but rather result from an unknown yet mechanism.</p></abstract><trans-abstract xml:lang="ru"><p><italic>Введение.</italic> В статье представлено исследование 33 штаммов <italic>Klebsiella pneumoniae</italic>, выделенных в Ростове-на-Дону в 2021–2023 гг. от пациентов с внебольничной пневмонией. Штаммы были проанализированы в соответствии с признаками, которые, как известно, связаны с гипервирулентностью. Проведено сравнение штаммов по фенотипическим (сидерофорная активность, гипермукоидность, чувствительность к бактериофагу) и генотипическим (плазмидный профиль, наличие генов сидерофоров и <italic>rmp</italic>A и <italic>rmp</italic>A2) свойствам. <italic>Материалы и методы.</italic> При проведении исследования были использованы следующие методы: определение чувствительности к бактериофагу, гипермукоидности с помощью «стринг-теста», сидерофорной активности на среде, содержащей хромазурол S, содержания плазмид и полногеномное секвенирование. <italic>Результаты.</italic> Секвенирование 11 штаммов, различающихся по мукоидности, показало, что все гипермукоидные штаммы содержали <italic>rmp</italic>A, в то время как <italic>rmp</italic>A2 либо отсутствовал, либо содержал одиночные инсерции или делеции нуклеотидов, что приводило к сдвигу рамки считывания. Те же мутации в гене <italic>rmp</italic>A2 наблюдались у немукоидных штаммов, у них отсутствовал <italic>rmp</italic>A. Штаммы отличались по набору из четырех сидерофорных кластеров, количество которых не коррелировало с сидерофорной активностью. Отсутствие у штаммов, не обладающих гипермукоидностью, <italic>rmp</italic>A и генов биосинтеза салмохелина при сохранении гена его рецептора указывает на наличие делеций, приводящих к потере гипермукоидности. Исследование 33 штаммов показало, что они способны диссоциировать, образуя колонии двух типов: темные и светлые, которые наблюдались как у гипермукоидных, так и у немукоидных штаммов. Темные клоны гипермукоидных штаммов это свойство сохраняли, в то время как светлые клоны его утрачивали. Оба варианта немукоидных штаммов сохраняли свойство немукоидности. Анализ разных 17 штаммов показал, что их темные клоны обладали сниженной сидерофорной активностью и чувствительностью к бактериофагу по сравнению со светлыми. Геномы разных клонов не отличались по сидерофорным кластерам, но <italic>rmp</italic>A был обнаружен только в темных клонах гипермукоидных штаммов. У немукоидных штаммов этот ген отсутствовал в обоих клонах, в то время как различия в сидерофорной активности и чувствительности к бактериофагу сохранялись. <italic>Заключение.</italic> Гипермукоидность<italic> K. pneumoniae</italic> связана с наличием <italic>rmp</italic>A, в то время как <italic>rmp</italic>A2 не является обязательным. Различия клонов по морфологии колоний, сидерофорной активности и чувствительности к бактериофагу не связаны с <italic>rmp</italic>A/<italic>rmp</italic>A2, а скорее обусловлены пока неизвестным механизмом.</p></trans-abstract><kwd-group xml:lang="en"><kwd>Klebsiella pneumoniae</kwd><kwd>siderophore activity</kwd><kwd>plasmids</kwd><kwd>hypermucoviscosity</kwd><kwd>phage sensitivity</kwd><kwd>whole-genome sequencing</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>Klebsiella pneumoniae</kwd><kwd>сидерофорная активность</kwd><kwd>плазмиды</kwd><kwd>гипермукоидный фенотип</kwd><kwd>фагочувствительность</kwd><kwd>полногеномное секвенирование</kwd></kwd-group><funding-group/></article-meta></front><body></body><back><ref-list><ref id="B1"><label>1.</label><mixed-citation>Агеевец В.A., Агеевец И.В., Сидоренко С.В. Конвергенция множественной резистентности и гипервирулентности у Klebsiella pneumoniae // Инфекция и иммунитет. 2022. Т. 12, № 3. C. 450–460. [Ageevets V.A., Ageevets I.V., Sidorenko S.V. Convergence of multiple resistance and hypervirulence in Klebsiella pneumonia. Infektsiya i immunitet = Russian Journal of Infection and Immunity, 2022, vol. 12, no. 3, pp. 450–460. (In Russ.)] doi: 10.15789/2220-7619-COM-1825</mixed-citation></ref><ref id="B2"><label>2.</label><mixed-citation>Анисимова А.С., Павлович Н.В., Аронова Н.В., Цимбалистова М.В., Гудуева Е.Н., Пасюкова Н.И., Теплякова Е.Д., Носков А.К. Биологические свойства и антибиотикорезистентность Klebsiella pneumoniae и ее роль в этиологической структуре возбудителей внебольничных пневмоний // Антибиотики и химиотерапия. 2023. Т. 68, № 5–6. С. 11–18. [Anisimova A.S., Pavlovich N.V., Aronova N.V., Tsimbalistova M.V., Gudueva E.N., Pasyukova N.I., Teplyakova E.D., Noskov A.K. Biological properties and antibiotic resistance of Klebsiella pneumonia and its role in the etiological structure of community-acquired pneumonia pathogens. Antibiotiki i khimioterapiya = Antibiotics and Chemotherapy, 2023, vol. 68 (5–6), pp. 11–18. (In Russ.)] doi: 10.37489/0235-2990-2023-68-5-6-11-18</mixed-citation></ref><ref id="B3"><label>3.</label><mixed-citation>Водопьянов А.С., Трухачев А.Л., Подладчикова О.Н., Писанов Р.В. СontigSearcher — программа для анализа результатов полногеномного секвенирования, определение наличия последовательностей различных генов в контигах, полученных при секвенировании, выявления INDEL-мутаций. Свидетельство о государственной регистрации программы для ЭВМ № 2018611348 от 01.02.2018. [Vodopyanov A.S., Trukhachev A.L., Podladchikova O.N., Pisanov R.V. ContigSearcher — a program for analyzing the results of whole-genome sequencing, determining the presence of sequences of various genes in the contigues obtained during sequencing, and detecting INDEL mutations. Certificate of state registration of the computer program No. 2018611348 dated 02/01/2018. (In Russ.)]</mixed-citation></ref><ref id="B4"><label>4.</label><mixed-citation>Кузнецова Д.А., Водопьянов А.С., Подладчикова О.Н., Рыкова В.А., Трухачев А.Л. «SiderophoreAnalyzer» — программа для выявления генов, отвечающих за синтез сидерофоров, в полногеномных нуклеотидных последовательностях. Свидетельство о государственной регистрации программы для ЭВМ № 2022680676 от 03.08.2022 г. [Kuznetsova D.A., Vodopyanov A.S., Podladchikova O.N., Rykova V.A., Trukhachev A.L. «SiderophoreAnalyzer» — a program for identifying genes responsible for the synthesis of siderophores in whole-genome nucleotide sequences. Certificate of state registration of the computer program No. 2022680676 dated 08/03/2022. (In Russ.)]</mixed-citation></ref><ref id="B5"><label>5.</label><mixed-citation>Методические указания для работы на приборах серии flex компании Bruker Daltonics. Прямое белковое профилирование. М., 2010. [MU for operation on Bruker Daltonics flex series devices “Direct protein profiling”. Moscow, 2010. (In Russ.)]</mixed-citation></ref><ref id="B6"><label>6.</label><mixed-citation>Использование метода времяпролетной масс-спектрометрии с матрично-активированной лазерной десорбцией/ионизацией (MALDI-ToF MS) для индикации и идентификации возбудителей I–II групп патогенности: методические указания МУК 4.2.0089-14. [The use of time-of-flight mass spectrometry with matrix-assisted laser desorption/ionization (MALDI-ToF MS) for the indication and identification of pathogens of pathogenicity groups I–II: Methodological guidelines MUC 4.2.0089-14. (In Russ.)]</mixed-citation></ref><ref id="B7"><label>7.</label><mixed-citation>Чеботарь И.В., Бочарова Ю.А., Подопригора И.В., Шагин Д.А. Почему Klebsiella pneumoniae становится лидирующим оппортунистическим патогеном // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2020. Т. 22, № 1. С. 4–19. [Chebotar I.V., Bocharova Yu.A., Podoprigora I.V., Shagin D.A. The reasons why Klebsiella pneumoniae becomes a leading opportunistic pathogen. Klinicheskaya mikrobiologiya i antimikrobnaya khimioterapiya = Clinical Microbiology and Antimicrobial Chemotherapy, 2020, vol. 22, no. 1, pp. 4–19. (In Russ.)] doi: 10.36488/cmac.2020.1.4-19</mixed-citation></ref><ref id="B8"><label>8.</label><mixed-citation>Bialek-Davenet S., Criscuolo A., Ailloud F., Passet V., Jones L., Delannoy-Vieillard A.S., Garin B., Le Hello S., Arlet G., Nicolas-Chanoine M.H., Decré D., Brisse S. Genomic definition of hypervirulent and multidrug-resistant Klebsiella pneumoniae clonal groups. Emerg. Infect. Dis., 2014, vol. 20, no. 11, рр. 1812–1820. doi: 10.3201/eid2011.140206</mixed-citation></ref><ref id="B9"><label>9.</label><mixed-citation>Dai P., Hu D. The making of hypervirulent Klebsiella pneumoniae. J. Clin. Lab. Anal., 2022, vol. 36, no. 12: e24743. doi: 10.1002/jcla.24743</mixed-citation></ref><ref id="B10"><label>10.</label><mixed-citation>Ernst C.M., Braxton J.R., Rodriguez-Osorio C.A., Zagieboylo A.P., Li L., Pironti A., Manson A.L., Nair A.V., Benson M., Cummins K., Clatworthy A.E., Earl A.M., Cosimi L.A., Hung D.T. Adaptive evolution of virulence and persistence in carbapenem-resistant Klebsiella pneumoniae. Nat. Med., 2020, vol. 26, pp. 705–711. doi: 10.1038/s41591-020-0825-4</mixed-citation></ref><ref id="B11"><label>11.</label><mixed-citation>Guo Y., Wang S., Zhan L., Jin Y., Duan J., Hao Z., Lv J., Qi X., Chen L., Kreiswirth B.N., Wang L., Yu F. Microbiological and clinical characteristics of hypermucoviscous Klebsiella pneumoniae isolates associated with invasive infections in China. Front. Cell. Infect. Microbiol., 2017, vol. 7: 24. doi: 10.3389/fcimb.2017.00024</mixed-citation></ref><ref id="B12"><label>12.</label><mixed-citation>Harada S., Aoki K., Yamamoto S., Ishii Y., Sekiya N., Kurai H., Furukawa K., Doi A., Tochitani K., Kubo K., Yamaguchi Y., Narita M., Kamiyama S., Suzuki J., Fukuchi T., Gu Y., Okinaka K., Shiiki S., Hayakawa K., Tachikawa N., Kasahara K., Nakamura T., Yokota K., Komatsu M., Takamiya M., Tateda K., Doi Y. Clinical and molecular characteristics of Klebsiella pneumoniae isolates causing bloodstream infections in Japan: occurrence of hypervirulent infections in health care. J. Clin. Microbiol., 2019, vol. 57, no. 11: e01206-19. doi: 10.1128/JCM.01206-19</mixed-citation></ref><ref id="B13"><label>13.</label><mixed-citation>Holden V.I., Breen P., Houle S., Dozois C.M., Bachman M.A. Klebsiella pneumoniae siderophores induce inflammation, bacterial dissemination, and HIF-1a stabilization during pneumonia. mBio, 2016, vol. 7, no. 5: e01397-16. doi: 10.1128/mBio.01397-16</mixed-citation></ref><ref id="B14"><label>14.</label><mixed-citation>Imai K., Ishibashi N., Kodana M., Tarumoto N., Sakai J., Kawamura T., Takeuchi S., Taji Y., Ebihara Y., Ikebuchi K., Murakami T., Maeda T., Mitsutake K., Maesaki S. Clinical characteristics in blood stream infections caused by Klebsiellapneumoniae, Klebsiella variicola, and Klebsiella quasipneumoniae: a comparative study, Japan, 2014–2017. BMC Infect. Dis., 2019, vol. 19, no. 1: 946. doi: 10.1186/s12879-019-4498-x</mixed-citation></ref><ref id="B15"><label>15.</label><mixed-citation>Jia X., Zhu Y., Jia P., Liu X., Yu W., Li X., Xu Y., Yang Q. Emergence of a superplasmid coharboring hypervirulence and multidrug resistance genes in Klebsiella pneumoniae poses new challenges to public health. Microbiol. Spectr., 2022, vol. 10, no. 6: e0263422. doi: 10.1128/spectrum.02634-22</mixed-citation></ref><ref id="B16"><label>16.</label><mixed-citation>Kado C.I., Liu S.T. Rapid procedure for detection and isolation of large and small plasmids. J. Bacteriol., 1981, vol. 145, no. 3, pp. 1365–1373. doi: 10.1128/jb.145.3.1365-1373.1981</mixed-citation></ref><ref id="B17"><label>17.</label><mixed-citation>Khadka S., Ring B.E., Walker R.S., Krzeminski L.R., Pariseau D.A., Hathaway M., Mobley H.L.T., Mike L.A. Urine-mediated suppression of Klebsiella pneumoniae mucoidy is counteracted by spontaneous Wzc variants altering capsule chain length. mSphere., 2023, vol. 8, no. 5: e0028823. doi: 10.1128/msphere.00288-23</mixed-citation></ref><ref id="B18"><label>18.</label><mixed-citation>Lam M.M.C., Wyres K.L., Judd L.M., Wick R.R., Jenney A., Brisse S., Holt K.E. Tracking key virulence loci encoding aerobactin and salmochelin siderophore synthesis in Klebsiella pneumonia. Genome Med., 2018, vol. 10, no. 1: 77. doi: 10.1186/s13073-018-0587-5</mixed-citation></ref><ref id="B19"><label>19.</label><mixed-citation>Lawlor M.S., O’Connor C., Miller V.L. Yersiniabactin is a virulence factor for Klebsiella pneumoniae during pulmonary infection. Infect Immun., 2007, vol. 75, no. 3, pp. 1463–1472. doi: 10.1128/IAI.00372-06</mixed-citation></ref><ref id="B20"><label>20.</label><mixed-citation>Mike L.A., Stark A.J., Forsyth V.S., Vornhagen J., Smith S.N., Bachman M.A., Mobley H.L.T. A systematic analysis of hypermucoviscosity and capsule reveals distinct and overlapping genes that impact Klebsiella pneumoniae fitness. PLoS Pathog., 2021, vol. 17, no. 3: e1009376. doi: 10.1371/journal.ppat.1009376</mixed-citation></ref><ref id="B21"><label>21.</label><mixed-citation>Namikawa H., Niki M., Niki M., Oinuma K.I., Yamada K., Nakaie K., Tsubouchi T., Tochino Y., Takemoto Y., Kaneko Y., Kakeya H., Shuto T. Siderophore production as a biomarker for Klebsiella pneumoniae strains that cause sepsis: а pilot study. J. Formos Med. Assoc., 2022, vol. 121, no. 4, pp. 848–855. doi: 10.1016/j.jfma.2021.06.027</mixed-citation></ref><ref id="B22"><label>22.</label><mixed-citation>Nucci A., Janaszkiewicz J., Rocha E.P.C., Rendueles O. Emergence of novel non-aggregative variants under negative frequency-dependent selection in Klebsiella variicola. Microlife, 2023, vol. 4: uqad038. doi: 10.1093/femsml/uqad038</mixed-citation></ref><ref id="B23"><label>23.</label><mixed-citation>Russo T.A., Marr C.M. Hypervirulent Klebsiella pneumoniae. Clin. Microbiol. Rev., 2019, vol. 32, pp. 1–42. doi: 10.1128/CMR.00001-19</mixed-citation></ref><ref id="B24"><label>24.</label><mixed-citation>Russo T.A., Olson R., Macdonald U., Metzger D., Maltese L.M., Drake E.J., Gulick A.M. Aerobactin mediates virulence and accounts for increased siderophore production under iron-limiting conditions by hypervirulent (hypermucoviscous) Klebsiella pneumoniae. Infect. Immun., 2014, vol. 82, no. 6, pp. 2356–2367. doi: 10.1128/IAI.01667-13</mixed-citation></ref><ref id="B25"><label>25.</label><mixed-citation>Russo T.A., Olson R., Fang C.T., Stoesser N., Miller M., MacDonald U., Hutson A., Barker J.H., La Hoz R.M., Johnson J.R. Identification of biomarkers for differentiation of hypervirulent Klebsiella pneumoniae from classical K. pneumoniae. J. Clin. Microbiol., 2018, vol. 56, no. 9: e00776-18. doi: 10.1128/JCM.00776-18</mixed-citation></ref><ref id="B26"><label>26.</label><mixed-citation>Russo T.A., Shon A.S., Beanan J.M., Olson R., MacDonald U., Pomakov A.O., Visitacion M.P. Hypervirulent K. pneumoniae secretes more and more active iron-acquisition molecules than “classical” K. pneumoniae thereby enhancing its virulence. PLoS One, 2011, vol. 6, no. 10: e26734. doi: 10.1371/journal.pone.0026734</mixed-citation></ref><ref id="B27"><label>27.</label><mixed-citation>Schwyn B., Neilands J.B. Universal chemical assay for the detection and determination of siderophores. Anal. Biochem., 1987, vol. 160, no. 1, pp. 47–56. doi: 10.1016/0003-2697(87)90612-9</mixed-citation></ref><ref id="B28"><label>28.</label><mixed-citation>Shukla S., Joshi P., Trivedi P., Akinwotu O., Gajjar D. Genomic islands in Klebsiella pneumoniae. In: Microbial genomic islands in adaptation and pathogenicity. Eds: Mani I., Singh V., Alzahrani K.J., Chu D.T. Springer, Singapore, 2023, pp. 255–278. doi: 10.1007/978-981-19-9342-8_13</mixed-citation></ref><ref id="B29"><label>29.</label><mixed-citation>Walker K.A., Miller V.L. The intersection of capsule gene expression, hypermucoviscosity and hypervirulence in Klebsiella pneumoniae. Curr. Opin. Microbiol., 2020, vol. 54, pp. 95–102. doi: 10.1016/j.mib.2020.01.006</mixed-citation></ref><ref id="B30"><label>30.</label><mixed-citation>Walker K.A., Miner T.A., Palacios M., Trzilova D., Frederick D.R., Broberg C.A., Sepúlveda V.E., Quinn J.D., Miller V.L., Goldberg J.B. A Klebsiella pneumoniae regulatory mutant has reduced capsule expression but retains hypermucoviscosity. mBio, 2019, vol. 10: e00089-19. doi: 10.1128/mBio.00089-19</mixed-citation></ref><ref id="B31"><label>31.</label><mixed-citation>Walker K.A., Treat L.P., Sepúlveda V.E., Miller V.L., Heran Darwin K. The small protein RmpD drives hypermucoviscosity in Klebsiella pneumoniae. mBio, 2020, vol. 11: e01750-20. doi: 10.1128/mBio.01750-20</mixed-citation></ref><ref id="B32"><label>32.</label><mixed-citation>Zhu J., Wang T., Chen L., Du H. Virulence factors in hypervirulent Klebsiella pneumonia. Front. Microbiol., 2021, vol. 12, pp. 1–14. doi: 10.3389/fmicb.2021.642484</mixed-citation></ref></ref-list></back></article>
