<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE root>
<article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/" article-type="other" dtd-version="1.2" xml:lang="en"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">Russian Journal of Infection and Immunity</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="en">Russian Journal of Infection and Immunity</journal-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>Инфекция и иммунитет</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn publication-format="print">2220-7619</issn><issn publication-format="electronic">2313-7398</issn><publisher><publisher-name xml:lang="en">SPb RAACI</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="publisher-id">1517</article-id><article-id pub-id-type="doi">10.15789/2220-7619-ROT-1517</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="en"><subject>ORIGINAL ARTICLES</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="ru"><subject>ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="article-type"><subject></subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title xml:lang="en">Phenotype remodeling in neutrophilic granulocyte subsets CD64<sup>-</sup>CD32<sup>+</sup>CD16<sup>+</sup>CD11B<sup>+</sup>NG, CD64<sup>+</sup>CD32<sup>+</sup>CD16<sup>+</sup>CD11B<sup>+</sup>NG in <italic>de novo</italic> experimental model of viral-bacterial infection <italic>in vitro</italic></article-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>Ремоделлинг фенотипа субпопуляций нейтрофильных гранулоцитов CD64<sup>-</sup>CD32<sup>+</sup>CD16<sup>+</sup>CD11B<sup>+</sup>Hr CD64<sup>+</sup>CD32<sup>+</sup>CD16<sup>+</sup>CD11B<sup>+</sup>Hr в созданной <italic>de novo</italic> экспериментальной модели вирусно-бактериальной инфекции в системе <italic>in vitro</italic></trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Nesterova</surname><given-names>I. V.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Нестерова</surname><given-names>И. В.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>Irina V. Nesterova - PhD, MD (Medicine), Professor, Department of Allergology and Immunology, PFUR; Head Researcher, Department of Clinical and Experimental Immunology and Molecular Biology of the Central Research Laboratory Kuban SMUR.</p><p>117198, Moscow, Miklukho-Maklaya str., 6, Phone: +7 (916) 187-73-41</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>Нестерова Ирина Вадимовна - доктор медицинских наук, профессор кафедры аллергологии и иммунологии, ФГАБОУ ВО РУДН; главный научный сотрудник отдела клинической и экспериментальной иммунологии и молекулярной биологии ЦНИЛ ФГБОУ ВО Кубанский ГМУ.</p><p>117198, Москва, ул. Миклухо-Маклая, 6, Тел.: 8 (916) 187-73-41</p></bio><email>inesterova1@yandex.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/><xref ref-type="aff" rid="aff2"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Chudilova</surname><given-names>G. A.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Чудилова</surname><given-names>Г. А.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>PhD (Biology), Associate Professor, Department of Clinical Immunology, Allergology and Laboratory Diagnostics of FCE and RS, Head of the Department of Clinical and Experimental Immunology and Molecular Biology of the Central Research Laboratory.</p><p>Krasnodar</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>Кандидат биологических наук, доцент кафедры клинической иммунологии, аллергологии и лабораторной диагностики ФПК и ППС, зав. отелом клинической и экспериментальной иммунологии и молекулярной биологии ЦНИЛ.</p><p>Краснодар</p></bio><email>chudilova2015@yandex.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff2"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Rusinova</surname><given-names>T. V.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Русинова</surname><given-names>Т. В.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>PhD (Biology), Researcher, Department of Clinical and Experimental Immunology and Molecular Biology of the Central Research Laboratory.</p><p>Krasnodar</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>Кандидат биологических наук, научный сотрудник отдела клинико-экспериментальной иммунологии и молекулярной биологии ЦНИЛ.</p><p>Краснодар</p></bio><email>rusinova.tv@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff2"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Pavlenko</surname><given-names>V. N.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Павленко</surname><given-names>В. Н.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>PhD Student, Department of Clinical Immunology, Allergology and Laboratory Diagnostics of FCE and RS, Investigator (Biologist), Department of Clinical Experimental Immunology and Molecular Biology of the Central Research Laboratory.</p><p>Krasnodar</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>Аспирант кафедры клинической иммунологии, аллергологии и лабораторной диагностики ФПК и ППС, лаборант-исследователь отдела клинико-экспериментальной иммунологии и молекулярной биологии ЦНИЛ.</p><p>Краснодар</p></bio><email>pavlenkoevi2016@gmail.com</email><xref ref-type="aff" rid="aff2"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Yutskevich</surname><given-names>Ya. A.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Юцкевич</surname><given-names>Я. А.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="en"><p>Junior Researcher, Department of Clinical Experimental Immunology and Molecular Biology of the Central Research Laboratory.</p><p>Krasnodar</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>Младший научный сотрудник отдела клинико-экспериментальной иммунологии и молекулярной биологии ЦНИЛ.</p><p>Краснодар</p></bio><email>yana.yutskevich@gmail.com</email><xref ref-type="aff" rid="aff2"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Barova</surname><given-names>N. K.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Барова</surname><given-names>Н. К.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>PhD (Medicine), Assistant, Department of Pediatric Surgical Diseases.</p><p>Krasnodar</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>Кандидат медицинских наук, ассистент кафедры хирургических болезней детского возраста.</p><p>Краснодар</p></bio><email>barovank@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff2"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Tarakanov</surname><given-names>V. A.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Тараканов</surname><given-names>В. А.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="en"><p>PhD, MD (Medicine), Professor, Head of the Department of Pediatric Surgical Diseases.</p><p>Krasnodar</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>Доктор медицинских наук, профессор, зав. кафедрой хирургических болезней детского возраста.</p><p>Краснодар</p></bio><email>vatarakanov@yandex.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff2"/></contrib></contrib-group><aff-alternatives id="aff1"><aff><institution xml:lang="en">People’s Friendship University of Russia</institution></aff><aff><institution xml:lang="ru">ФГАБОУ ВО Российский университет дружбы народов Министерства образования и науки России</institution></aff></aff-alternatives><aff-alternatives id="aff2"><aff><institution xml:lang="en">Kuban State Medical University of Russia</institution></aff><aff><institution xml:lang="ru">ФГБОУ ВО Кубанский государственный медицинский университет Минздрава России</institution></aff></aff-alternatives><pub-date date-type="pub" iso-8601-date="2021-02-28" publication-format="electronic"><day>28</day><month>02</month><year>2021</year></pub-date><volume>11</volume><issue>1</issue><issue-title xml:lang="en"/><issue-title xml:lang="ru"/><fpage>101</fpage><lpage>110</lpage><history><date date-type="received" iso-8601-date="2020-06-24"><day>24</day><month>06</month><year>2020</year></date><date date-type="accepted" iso-8601-date="2020-07-13"><day>13</day><month>07</month><year>2020</year></date></history><permissions><copyright-statement xml:lang="en">Copyright ©; 2021, Nesterova I.V., Chudilova G.A., Rusinova T.V., Pavlenko V.N., Yutskevich Y.A., Barova N.K., Tarakanov V.A.</copyright-statement><copyright-statement xml:lang="ru">Copyright ©; 2021, Нестерова И.В., Чудилова Г.А., Русинова Т.В., Павленко В.Н., Юцкевич Я.А., Барова Н.К., Тараканов В.А.</copyright-statement><copyright-year>2021</copyright-year><copyright-holder xml:lang="en">Nesterova I.V., Chudilova G.A., Rusinova T.V., Pavlenko V.N., Yutskevich Y.A., Barova N.K., Tarakanov V.A.</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="ru">Нестерова И.В., Чудилова Г.А., Русинова Т.В., Павленко В.Н., Юцкевич Я.А., Барова Н.К., Тараканов В.А.</copyright-holder><ali:free_to_read xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/"/><license><ali:license_ref xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/">https://creativecommons.org/licenses/by/4.0</ali:license_ref></license></permissions><self-uri xlink:href="https://iimmun.ru/iimm/article/view/1517">https://iimmun.ru/iimm/article/view/1517</self-uri><abstract xml:lang="en"><p>A search for new targeted therapeutic strategies based on examining immunopathogenetic mechanisms for emerging co-infections is relevant and may further contribute not only to optimizing choice of immunotropic drugs, but also to achieving positive clinical and immunological remission for abnormal infectious processes. Previously, our studies found that recurrent viral-bacterial respiratory infections are associated with dysfunction of neutrophilic granulocytes (NG) with varying degree of intensity in altered effector properties. NG dysfunctions are often associated with diverse phenotypic profiles characterized by varying density for expression level of functionally significant trigger receptors. The aim of the study was to pinpoint phenotype transformation in CD64<sup>-</sup>CD32<sup>+</sup>CD16<sup>+</sup>CD11b<sup>+</sup>, CD64<sup>+</sup>CD32<sup>+</sup>CD16<sup>+</sup>CD11b<sup>+</sup> neutrophilic granulocytes in experimental model of viral-bacterial infection in vitro. We examined 52 peripheral blood samples collected from 13 healthy adult volunteers. Viral, bacterial and virus-bacterial infection was modelled in vitro by incubating blood-derived cell samples with formyl-methionyl-leucyl-phenylalanine (fMLP), double-stranded RNA (dsRNA) or in combination followed by assessing changes in immunophenotyping of CD64<sup>-</sup>CD32<sup>+</sup>CD16<sup>+</sup>CD11b<sup>+</sup>NG, CD64<sup>+</sup>CD32<sup>+</sup>CD16<sup>+</sup>CD11b<sup>+</sup>NG by using using MAbs CD16-ECD, CD64-FITC, CD32-PE, CD11b-PC5 conjugates (Beckman Coulter International SA, France). It was demonstrated that NGs from healthy adult volunteers were dominated by CD64<sup>-</sup>CD32<sup>+</sup>CD16<sup>+</sup>CD11b<sup>+</sup>NG as well as minor subset СD64<sup>+</sup>CD32<sup>+</sup>CD16<sup>+</sup>CD11b<sup>+</sup> NG varying in expression density of membrane molecules. Percentage of the minor subset СD64<sup>+</sup>CD16+CD32<sup>+</sup>CD11b<sup>+</sup> NG was significantly increased after exposure with dsRNA, fMLP and dsRNA+fMLP compared to untreated samples. Comparative analysis revealed that various immunotropic agents differed in affecting expression of surface receptor molecules CD16, CD32 and unidirectional effects, but of varying magnitude altering CD11b marker both in major and minor subsets. Preincubation with dsRNA followed by adding fMLP allowed to find that they co-stimulated expression of surface receptors in both NG subsets. We generated an experimental model of viral-bacterial co-infection in vitro by using fMLP and dsRNA and observed types of phenotype transformation in CD64<sup>-</sup>CD32<sup>+</sup>CD16<sup>+</sup>CD11b<sup>+</sup> NG and CD64<sup>+</sup>CD32<sup>+</sup>CD16<sup>+</sup>CD11b<sup>+</sup> NG subsets. This model can be used to evaluate transformation of other NG subset phenotypes, NG functional activity, features of NET formation as well as impact of various immunotropic agents on NG.</p></abstract><trans-abstract xml:lang="ru"><p>Поиск новых таргетных терапевтических стратегий, базирующихся на изучении иммунопатогене-тических механизмов возникновения коинфекций, является актуальным и может в дальнейшем способствовать не только оптимизации выбора иммунотропных лекарственных средств, но и достижению позитивной клинико-иммунологической ремиссии нетипично протекающих инфекционных процессов. Ранее нашими исследованиями было установлено, что возвратные вирусно-бактериальные респираторные инфекции ассоциированы дисфункциями нейтрофильных гранулоцитов (НГ) с разной степенью выраженности нарушений их эффекторных свойств. Зачастую дисфункции НГ сопряжены с различными фенотипическими профилями, характеризующимися разными уровнями и плотностью функционально значимых триггерных рецепторов. Целью исследования было уточнение вариантов трансформации фенотипа субпопуляций CD64<sup>—</sup>CD32<sup>+</sup>CD16<sup>+</sup>CD11b<sup>+</sup>Hr, CD64<sup>+</sup>CD32<sup>+</sup>CD16<sup>+</sup>CD11b<sup>+</sup>Hr в созданной экспериментальной модели вирусно-бактериальной коинфекции in vitro. Исследовано 52 образца периферической крови 13 здоровых взрослых добровольцев в возрасте от 21 до 32 лет. Для воспроизведения условий вирусной, бактериальной и вирусно-бактериальной инфекции образцы инкубировали с формил-метионил-лейцил-фенилаланин (fMLP), двухцепочечной РНК (дцРНК) и совместно, затем определяли фенотипические характеристики субпопуляций CD64-CD32<sup>+</sup>CD16<sup>+</sup>CD11b<sup>+</sup>Hr, CD64<sup>+</sup>CD32<sup>+</sup>CD16<sup>+</sup>CD11b<sup>+</sup>Hr с использованием конъюгатов МКАТ CD16-ECD, CD64-FITC, CD32-PE, CD11b-PC5 (Beckman Coulter International S.A., Франция). Анализ полученных данных продемонстрировал, что НГ здоровых взрослых лиц представлены мажорной субпопуляцией CD64<sup>-</sup>CD16<sup>+</sup>CD32<sup>+</sup>CD11b<sup>+ </sup>НГ и минорной субпопуляцией CD64<sup>+</sup>CD16<sup>+</sup>CD32<sup>+</sup>CD11b<sup>+</sup> НГ с разной плотностью мембранных молекул. Минорная субпопуляция CD64<sup>+</sup>CD16<sup>+</sup>CD32<sup>+</sup>CD11b<sup>+</sup> НГ значительно увеличилась под влиянием дцРНК, fMLP и дцРНК + fMLP по сравнению с интактными образцами. Сравнительный анализ моновлияния иммунотропных субстанций позволил выявить их разные эффекты в отношении действия на поверхностные рецепторные молекулы CD16, CD32 и однонаправленные, но разной интенсивности на CD11b, как в мажорной, так и в минорной субпопуляциях. Преинкубация с дцРНК с последующим добавлением fMLP в группе исследования позволила выявить эффекты совместного стимулирующего влияния субстанций на уровни поверхностных рецепторов обеих субпопуляции НГ. Нами была создана экспериментальная модель вирусно-бактериальной коинфекции в системе in vitro с использованием fMLP и дцРНК и установлены варианты трансформации фенотипа субпопуляций CD64<sup>-</sup>CD32<sup>+</sup>CD16<sup>+</sup>CD11b<sup>+</sup>Hr и CD64<sup>+</sup>CD32<sup>+</sup>CD16<sup>+</sup>CD11b<sup>+</sup>Hr Данная модель может быть использована для оценки вариантов трансформации фенотипа других субпопуляций НГ, изучения функциональной активности НГ, особенностей формирования NET, влияния на НГ различных иммунотропных субстанций.</p></trans-abstract><kwd-group xml:lang="en"><kwd>neutrophilic granulocytes</kwd><kwd>phenotype</kwd><kwd>subpopulation</kwd><kwd>coinfection</kwd><kwd>experimental model</kwd><kwd>fMLP</kwd><kwd>dsRNA</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>нейтрофильные гранулоциты</kwd><kwd>фенотип</kwd><kwd>субпопуляция</kwd><kwd>коинфекция</kwd><kwd>экспериментальная модель</kwd><kwd>fMLP</kwd><kwd>дцРНК</kwd></kwd-group><funding-group><funding-statement xml:lang="en">Russian Foundation for Basic Research</funding-statement></funding-group></article-meta></front><body></body><back><ref-list><ref id="B1"><label>1.</label><mixed-citation>1.	Абакумова Т.В., Генинг Т.П., Долгова Д.Р., Антонеева И.И., Песков А.Б., Генинг С.О. Фенотип циркулирующих нейтрофилов на разных стадиях неоплазии шейки матки // Медицинская иммунология. 2019. Т. 21, № 6. С. 1127—1138. doi: 10.15789/1563-0625-2019-6-1127-1138</mixed-citation></ref><ref id="B2"><label>2.</label><mixed-citation>2.	Балмасова И.П., Малова Е.С., Сепиашвили Р.И. Вирусно-бактериальные коинфекции как глобальная проблема современной медицины // Вестник РУДН. Серия: Медицина. 2018. Т. 22, № 1. С. 29—42. doi: 10.22363/2313-0245-2018-22-1-29-42</mixed-citation></ref><ref id="B3"><label>3.</label><mixed-citation>3.	Балмасова И.П., Сепиашвили Р.И., Малова Е.С., Ефратова Е.П., Ющук Н.Д. Коинфекция вирусами иммунодефицита человека и гепатита С как модель иммунного ответа на патогены иммунотропного действия // Аллергология и иммунология. 2019. Т. 20, № 1. С. 5—9.</mixed-citation></ref><ref id="B4"><label>4.</label><mixed-citation>4.	Долгушин И.И., Мезенцева Е.А., Савочкина А.Ю., Кузнецова Е.К. Нейтрофил как «многофункциональное устройство» иммунной системы // Инфекция и иммунитет. 2019. Т. 9, № 1. С. 9—38 doi: 10.15789/2220-7619-2019-1-9-38</mixed-citation></ref><ref id="B5"><label>5.</label><mixed-citation>5.	Долгушин И.И. Нейтрофильные гранулоциты: новые лица старых знакомых // Бюллетень сибирской медицины. 2019. Т. 18 (1). С. 30—37. doi: 10.20538/1682-0363-2019-1-30-37</mixed-citation></ref><ref id="B6"><label>6.</label><mixed-citation>6.	Егоров А.Ю. Проблема бактериальных осложнений при респираторных вирусных инфекциях // Microbiology Independent Research Journal. 2018. Т. 5, № 1. С. 1—11. doi: 10.18527/2500-2236-2018-5-1-1-11</mixed-citation></ref><ref id="B7"><label>7.</label><mixed-citation>7.	Ивардава М.И. Место иммуномодуляторов в лечении острой респираторной инфекции у часто болеющих детей // Вопросы современной педиатрии. 2011. Т. 10, № 3. С. 103—107.</mixed-citation></ref><ref id="B8"><label>8.</label><mixed-citation>8.	Киселева Е.П. Новые представления о противоинфекционном иммунитете // Инфекция и иммунитет. 2011. Т. 1, № 1. С. 9—14. doi: 10.15789/2220-7619-2011-1-9-14</mixed-citation></ref><ref id="B9"><label>9.</label><mixed-citation>9.	Лобзин Ю.В., Рычкова С.В., Скрипченко Н.В., Усков А.Н., Федоров В.В. Динамика инфекционной заболеваемости у детей в Российской Федерации в 2017—2018 годах // Медицина экстремальных ситуаций. 2019. Т. 21, № 3. С. 340—350.</mixed-citation></ref><ref id="B10"><label>10.</label><mixed-citation>10.	Нестерова И.В., Колесникова Н.В., Чудилова Г.А., Ломтатидзе Л.В., Ковалева С.В., Евглевский А.А., Нгуен Т.З.Л. Новый взгляд на нейтрофильные гранулоциты: переосмысление старых догм. Часть 1 // Инфекция и иммунитет. 2017. Т. 7, № 3. С. 219—230. doi: 10.15789/2220-7619-2017-3-219-230</mixed-citation></ref><ref id="B11"><label>11.</label><mixed-citation>11.	Нестерова И.В., Колесникова Н.В., Чудилова Г.А., Ломтатидзе Л.В., Ковалева С.В., Евглевский А.А., Нгуен Т.З.Л. Новый взгляд на нейтрофильные гранулоциты: переосмысление старых догм. Часть 2 // Инфекция и иммунитет. 2018. Т. 8, № 1. С. 7—18. doi: 10.15789/2220-7619-2018-1-7-18</mixed-citation></ref><ref id="B12"><label>12.</label><mixed-citation>12.	Нестерова И.В., Колесникова Н.В., Чудилова Г.А., Ломтатидзе Л.В., Ковалева С.В., Евглевский А.А. Нейтрофильные гранулоциты: новый взгляд на «старых игроков» на иммунологическом поле // Иммунология. 2015. Т. 36, № 4. С. 257— 265.</mixed-citation></ref><ref id="B13"><label>13.</label><mixed-citation>13.	Нестерова И.В., Нгуен Т.З., Халтурина Е.О., Хайдуков С.В., Гурьянова С.В. Модулирующие эффекты глюкозаминил-мурамилдипептида на трансформированный фенотип субпопуляции IFNa/eR1+IFNYr+TLR4+ нейтрофильных гранулоцитов пациентов с хроническими герпесвирусными инфекциями в эксперименте in vitro // Российский иммунологический журнал. 2018. Т. 12 (21), № 3. С. 379—384.</mixed-citation></ref><ref id="B14"><label>14.</label><mixed-citation>14.	Пинегин Б.В., Дагиль Ю.А., Воробьева Н.В., Пащенков М.В. Влияние азоксимера бромида на формирование внеклеточных нейтрофильных ловушек // Русский медицинский журнал. 2019. Т. 27, № 1 (II). С. 42—46.</mixed-citation></ref><ref id="B15"><label>15.</label><mixed-citation>15.	Bourgoin P., Biechele G., Ait Belkacem I., Morange P.E., Malergue F. Role of the interferons in CD64 and CD169 expressions in whole blood: relevance in the balance between viral- or bacterial-oriented immune responses. Immun. Inflamm. Dis., 2020, vol. 8, no. 1, pp. 106—123. doi: 10.1002/iid3.289</mixed-citation></ref><ref id="B16"><label>16.</label><mixed-citation>16.	Bournazos S., Wang T.T., Ravetch J.V. The role and function of Fcy receptors on myeloid cells. Microbiol. Spectr., 2016, vol. 4, no. 6. doi:10.1128/microbiolspec.MCHD-0045-2016</mixed-citation></ref><ref id="B17"><label>17.</label><mixed-citation>17.	Brinkmann V., Reichard U., Goosmann C., Fauler B., Uhlemann Y., Weiss D.S., Weinrauch Y., Zychlinsky A. Neutrophil extracellular traps kill bacteria. Science, 2004, vol. 303, no. 5663, pp. 1532—1535. doi: 10.1126/science.1092385</mixed-citation></ref><ref id="B18"><label>18.</label><mixed-citation>18.	Cortjens B., Ingelse S.A., Calis J.C., Vlaar A.P., Koenderman L., Bem R.A. van Woensel J.B. Neutrophil subset responses in infants with severe viral respiratory infection. Clin.Immunol., 2017, vol. 176, pp. 100—106. doi: 10.1016/j.clim.2016.12.012</mixed-citation></ref><ref id="B19"><label>19.</label><mixed-citation>19.	Dumitru C.A., Moses K., Trellakis S., Lang S., Brandau S. Neutrophils and granulocytic myeloid-derived suppressor cells: immunophenotyping, cell biology and clinical relevance in human oncology. Cancer Immunol. Immunother., 2012, vol. 61, no. 8, pp. 1155-1167. doi: 10.1007/s00262-012-1294-5</mixed-citation></ref><ref id="B20"><label>20.</label><mixed-citation>20.	El-Madbouly A.A., El Sehemawy A.A., Eldesoky N.A., Abd Elgalil H.M., Ahmed A.M. Utility of presepsin, soluble triggering receptor expressed on myeloid cells-1, and neutrophil CD64 for early detection of neonatal sepsis. Infect. Drug Resist., 2019, vol. 12, pp. 311-319. doi: 10.2147/IDR.S191533</mixed-citation></ref><ref id="B21"><label>21.</label><mixed-citation>21.	El-Raggal N.M., El-Barbary M.N., Youssef M.F., El-Mansy H.A. Neutrophil-surface antigens CD11b and CD64 expression: a potential predictor of early-onset neonatal sepsis. Egypt J. Pediatr. Allergy Immunol., 2004, vol. 2, no. 2, pp. 90-100. doi: 10.1097/INF.0b013e318256fb07</mixed-citation></ref><ref id="B22"><label>22.</label><mixed-citation>22.	Griffiths Е.С., Pedersen A.B., Fenton A., Petchey O.L. The nature and consequences of coinfection in humans. J. Infect., 2011, vol. 63, no. 3, pp. 200-206. doi: 10.1016/j.jinf.2011.06.005</mixed-citation></ref><ref id="B23"><label>23.</label><mixed-citation>23.	Grunwell J.R., Giacalone V.D., Stephenson S. Margaroli C., Dobosh B.S., Brown M.R., Fitzpatrick A.M., Tirouvanziam R. Neutrophil dysfunction in the airways of children with acute respiratory failure due to lower respiratory tract viral and bacterial coinfections. Scient. Rep., 2019, vol. 9: 2874. doi: 10.1038/s41598-019-39726-w</mixed-citation></ref><ref id="B24"><label>24.</label><mixed-citation>24.	Hoffmeyer F., Witte K., Schmidt R.E. The high-affinity FcyRI on PMN: regulation of expression and signal transduction. Immunology, 1997, vol. 92, pp. 544-552. doi: 10.1046/j.1365-2567.1997.00381.x</mixed-citation></ref><ref id="B25"><label>25.</label><mixed-citation>25.	Ishikawa H., Fukui T., Ino S., Sasaki H., Awano N., Kohda Ch., Tanaka K. Influenza virus infection causes neutrophil dysfunction through reduced G-CSF production and an increased risk of secondary bacteria infection in the lung. Virology, 2016, vol. 499, pp. 23-29. doi: 10.1016/j.virol.2016.08.0252016</mixed-citation></ref><ref id="B26"><label>26.</label><mixed-citation>26.	Kwon Y.S., Park S.H., Kim M.A., Kim H.J., Park J.S., Lee M.Y., Lee C.W., Dauti S., Choi W.I. Risk of mortality associated with respiratory syncytial virus and influenza infection in adults. BMC Infect. Dis., 2017, vol. 17 (1): 785. doi: 10.1186/s12879-017-2897-4</mixed-citation></ref><ref id="B27"><label>27.</label><mixed-citation>27.	Lande R., Ganguly D., Facchinetti V., Frasca L., Conrad C., Gregorio J., Meller S., Chamilos G., Sebasigari R., Riccieri V., Bassett R., Amuro H., Fukuhara S., Ito T., Liu Y.J., Gilliet M. Neutrophils activate plasmacytoid dendritic cells by releasing self-DNA-peptide complexes in systemic lupus erythematosus. Sci. Transl. Med., 2011, vol. 3, no. 73: 73ra19. doi: 10.1126/sci-translmed.3001180</mixed-citation></ref><ref id="B28"><label>28.</label><mixed-citation>28.	Lau D., Mollnau H., Eiserich J.P., Freeman B.A., Daiber A., Gehling U.M., Brummer J., Rudolph V., Munzel T., Heitzer T., Meinertz T., Baldus S. Myeloperoxidase mediates neutrophil activation by association with CD11b/CD18 integrins. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 2005, vol. 102, no. 2, pp. 431-436. doi: 10.1073/pnas.0405193102</mixed-citation></ref><ref id="B29"><label>29.</label><mixed-citation>29.	Li S., Huang X., Chen Z., Zhong H., Peng Q., Deng Y., Qin X., Zhao J. Neutrophil CD64 expression as a biomarker in the early diagnosis of bacterial infection: a metaanalysis. Int. J. Infect. Dis., 2013, vol. 17, no. 1, pp. 12-23. doi: 10.1016/j.ijid.2012.07.017</mixed-citation></ref><ref id="B30"><label>30.</label><mixed-citation>30.	Mantovani A., Cassatella M., Costantini C., Jaillon S. Neutrophils in the activation and regulation of innate and adaptive immunity. Nat. Rev. Immunol, 2011, vol. 11, pp. 519-531. doi: 10.1038/nri3024</mixed-citation></ref><ref id="B31"><label>31.</label><mixed-citation>31.	Nailwal H., Chan F.K. Necroptosis in anti-viral inflammation. Cell Death Differ., 2019, vol. 26, no. 1, pp. 4-13. doi: 10.1038/s41418-018-0172-x</mixed-citation></ref><ref id="B32"><label>32.</label><mixed-citation>32.	Nimmerjahn F., Ravetch J.V. Fc gamma receptors as regulators of immune responses. Nat. Rev. Immunol., 2008, vol. 8, no. 1, pp. 34-47.</mixed-citation></ref><ref id="B33"><label>33.</label><mixed-citation>33.	Penaloza H.F., Salazar-Echegarai F.J., Bueno S.M. Interleukin 10 modulation of neutrophil subsets infiltrating lungs during Streptococcus pneumoniae infection. Biochem. Biophys. Rep., 2018, vol. 13, pp. 12-16. doi: 10.1016/j.bbrep.2017.11.004</mixed-citation></ref><ref id="B34"><label>34.</label><mixed-citation>34.	Rollet-Labelle E., Gilbert C., Naccache P.H. Modulation of human neutrophil responses to CD32 cross-linking by serine/threo-nine phosphatase inhibitors: cross-talk between serine/threonine and tyrosine phosphorylation. J. Immunol., 2000, vol. 164, no. 2, pp. 1020-1028. doi: 10.4049/jimmunol.164.2.1020</mixed-citation></ref><ref id="B35"><label>35.</label><mixed-citation>35.	Sharma-Chawla N., Sender V., Kershaw O., Gruber A.D., Volckmar J., Henriques-Normark B., Stegemann-Koniszewski S., Bruder D. Influenza A Virus infection predisposes hosts to secondary infection with different Streptococcus pneumoniae serotypes with similar outcome but serotype-specific manifestation. Infect. Immun., 2016, vol. 84, no. 12, pp. 3445-3457. doi: 10.1128/IAI.00422-16</mixed-citation></ref><ref id="B36"><label>36.</label><mixed-citation>36.	Tamassia N., Cassatella M.A., Bazzoni F. Fast and accurate quantitative analysis of cytokine gene expression in human neutrophils. Methods Mol. Biol., 2014, vol. 1124, pp. 451-467. doi: 10.1007/978-1-62703-845-4_279</mixed-citation></ref><ref id="B37"><label>37.</label><mixed-citation>37.	Tang F.S.M., Van Ly D., Spann K., Reading P.C., Burgess J.K., Hartl D., Baines K.J., Oliver B.G. Differential neutrophil activation in viral infections: enhanced TLR-7/8-mediated CXCL8 release in asthma. Respirology, 2016, vol. 21, no. 1, pp. 172-179. doi: 10.1111/resp.12657</mixed-citation></ref><ref id="B38"><label>38.</label><mixed-citation>38.	Tan T.L., Ahmad N.S., Nasuruddin D.N., Ithnin A., Tajul Arifin K., Zaini I.Z., Wan Ngah W.Z. CD64 and group II secretory phospholipase A2 (sPLA2-IIA) as biomarkers for distinguishing adult sepsis and bacterial infections in the emergency department. PLoS One, 2016, vol. 11, no. 3: e0152065. doi: 10.1371/journal.pone.0152065</mixed-citation></ref><ref id="B39"><label>39.</label><mixed-citation>39.	Unkeless J.C., Shen Z., Lin C.W., De Beus E. Function of human Fc gamma RIIA and Fc gamma RIIIB. Semin. Immunol., 1995, vol. 7, no. 1, pp. 37-44. doi: 10.1016/1044-5323(95)90006-3</mixed-citation></ref><ref id="B40"><label>40.</label><mixed-citation>40.	Van Spriel А.В., Leusen J.H., van Egmond M.W. Mac-1 (CD11b/CD18) is essential for Fc receptor-mediated neutrophil cytotoxicity and immunologic synapse formation. Blood, 2001, vol. 97, no. 8, pp. 2478-2486. doi: 10.1182/blood.V97.8.2478</mixed-citation></ref><ref id="B41"><label>41.</label><mixed-citation>41.	Youinou P., Durand V., Renaudineau Y., Pennec Y.L., Saraux A., Jamin C. Pathogenic effects of anti-Fc gamma receptor IIIb (CD16) on polymorphonuclear neutrophils in non-organ-specific autoimmune diseases. Autoimmun. Rev., 2002, vol. 1, no. 1-2, pp. 13-19. doi:10.1016/s1568-9972(01)00002-7</mixed-citation></ref></ref-list></back></article>
