Russian Journal of Infection and ImmunityRussian Journal of Infection and ImmunityИнфекция и иммунитет2220-76192313-7398SPb RAACI148110.15789/2220-7619-MCO-1481ORIGINAL ARTICLESОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИSplenic morphometric characteristics in infectious mononucleosis (ultrasonic study)Морфометрическая характеристика селезенки при инфекционном мононуклеозе (ультразвуковое исследование)https://orcid.org/0000-0002-4535-9805PerepelitsaS. A.ПерепелицаС. А.
Russian Federation

Svetlana A. Perepelitsa - PhD, MD (Medicine), Professor of the Department of Surgery, Imannuel Kant Baltic Federal University; Leading Researcher, Laboratory of Cell Pathology in Critical Conditions, V.A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, Federal Research and Clinical Center of Intensive Care Medicine and Rehabilitology.

236041, Kaliningrad, A. Nevskiy str., 14.

Phone: +7 (401) 246-15-30

Перепелица Светлана Александровна – доктор медицинских наук, профессор кафедры хирургических дисциплин БФУ им. И. Канта; ведущий научный сотрудник лаборатории патологии клетки при критических состояниях НИИ общей реаниматологии им. В.А. Неговского ФНКЦ РР.

236041, Калининград, ул. А. Невского, 14.

Тел.: 8 (401) 246-15-30

sveta_perepeliza@mail.ruPerminovaL. A.ПерминоваЛ. А.
Russian Federation

PhD (Medicine), Associate Professor, Department of Therapy, Imannuel Kant Baltic Federal University.

Kaliningrad.

Кандидат медицинских наук, доцент кафедры терапии.

Калининград.

perminova72@mail.ruStepanyanI. A.СтепанянИ. А.
Russian Federation

PhD Student, Assistant, Department of Fundamental Medicine, Imannuel Kant Baltic Federal University; Doctor of Ultrasound Diagnostics, Infectional Hospital of the Kaliningrad Region.

Kaliningrad.

Аспирант и ассистент кафедры фундаментальной медицины БФУ им. И. Канта; врач ультразвуковой диагностики, Инфекционная больница Калининградской области.

Калининград.

lublumedicinu@mail.ruZakharE. V.ЗахарЕ. В.
Russian Federation

Infectious Disease Doctor, 1st Infectious Department, Infectional Hospital of the Kaliningrad Region.

Kaliningrad.

Врач-инфекционист 1 инфекционного отделения.

Калининград.

nf-bol@infomed39.ruImannuel Kant Baltic Federal UniversityБалтийский федеральный университет имени Иммануила КантаV.A. Negovsky Research Institute of General Reanimatology, Federal Research and Clinical Center of Intensive Care Medicine and RehabilitologyНИИ общей реаниматологии им. В.А. Неговского ФНКЦ РРInfectional Hospital of the Kaliningrad RegionИнфекционная больница Калининградской области230620211135565640605202022052020Copyright ©; 2020, Perepelitsa S.A., Perminova L.A., Stepanyan I.A., Zakhar E.V.Copyright ©; 2020, Перепелица С.А., Перминова Л.А., Степанян И.А., Захар Е.В.2020Perepelitsa S.A., Perminova L.A., Stepanyan I.A., Zakhar E.V.Перепелица С.А., Перминова Л.А., Степанян И.А., Захар Е.В.https://creativecommons.org/licenses/by/4.0https://iimmun.ru/iimm/article/view/1481

The spleen is a secondary immune and the largest organ of the reticuloendothelial system, actively involved during infectious mononucleosis. Clinically, assessing a degree of organ involvement in the pathological process seems unlikely. As a rule, only palpation and percussion are used to determine the size of the spleen, which represents a late and subjective sign of potential splenomegaly. Ultrasound examination provides ample opportunities to estimate the spleen size during infectious mononucleosis. Our study was aimed at identifying morphometric and Doppler ultrasound changes in the spleen in patients with infectious mononucleosis. Materials and methods. There were enrolled 24 patients with infectious mononucleosis to be compared with 30 healthy medical institute students in control group. All participants underwent splenic ultrasound examination. Spleen echotexture and contour clarity together with measuring linear dimensions: length, width, and thickness were analyzed. Splenic artery and vein velocity parameters were measured at the gates of the spleen. Elastographic window for fibroelastometry was positioned within the window for standard grayscale examination. Measurements were performed at 5 or more points of the spleen parenchyma at least 4—5 mm away from the capsular zone and the zone of large vessels. Based on the morphometric measurements obtained, the mass, spleen mass coefficient (SMC), as well as the spleen mass/body height ratio and spleen mass/body surface area ratio were calculated. Results. We found that patients with infectious mononucleosis had the length, thickness and weight of the spleen significantly greater than those observed in control group. However, the mass of the spleen varies widely and justified to calculate the CMS as an objective criterion to assess the size of the spleen. It was revealed that infectious mononucleosis may proceed in one of the three variants of the splenic response: decreased size, CMR < 1.5; normal size, CMR ranged from 1.5 to 4; splenomegaly, CMR > 4. Splenomegaly is associated with increased organ stiffness, peak blood flow velocity and pressure in v. lienalis, as well as periportal lymphadenopathy. Identified changes are characteristics of young patients. Conclusion. Ultrasound examination of the spleen is of high diagnostic value for patients with infectious mononucleosis allowing highly accurate assessment state of the immune organs in the acute disease period. At the preclinical stage, gradation of splenomegaly is possible depending on its intensity, assessed hemodynamics and organ stiffness.

Селезенка является вторичным иммунным и самым крупным органом ретикуло-эндотелиальной системы, активно вовлекаемым в процесс при инфекционном мононуклеозе. Как правило, для диагностики спленомегалии используется только пальпаторное и перкуторное определение размеров селезенки, что является поздним и субъективным признаком вероятной спленомегалии. Ультразвуковое исследование дает широкие возможности в изучении ответа селезенки на течение инфекционного мононуклеоза. Целью настоящего исследования было выявление морфометрических и допплерографических изменений селезенки у пациентов с инфекционным мононуклеозом. Материалы и методы. Было обследовано 24 пациента с инфекционным мононуклеозом, составивших группу исследования. В контрольную группу вошли 30 здоровых студентов медицинского института. Всем участникам проводилось ультразвуковое исследование селезенки. Оценивались эхоструктура органа, четкость контура, измерялись линейные размеры: длина, ширина, толщина селезенки. Измерения скоростных показателей в селезеночной артерии и вене проводилось в области ворот селезенки. Позиционирование эластографического окна при фиброэластометрии выполнялось в окне стандартного серошкального исследования. Измерения производились в 5 и более точках паренхимы селезенки с отступом от капсулярной зоны и зоны крупных сосудов не менее чем на 4—5 мм. На основании полученных морфометрических измерений были проведены расчеты массы и коэффициента массы селезенки (КМС), отношения массы селезенки к росту и площади поверхности тела. Результаты. В исследовании установлено, что у пациентов с инфекционным мононуклеозом длина, толщина и масса селезенки статистически значимо превышают соответствующие показатели здоровых лиц. Тем не менее масса органа варьирует в широких пределах, в связи с чем был выполнен расчет КМС, который является объективным критерием оценки размеров селезенки. Установлено, что при инфекционном мононуклеозе имеется три варианта ответа селезенки: уменьшение (КМС менее 1,5); сохранение нормальной величины (КМС находится в диапазоне от 1,5 до 4); спленомегалия (КМС более 4). Спленомегалия ассоциирована с повышением жесткости органа, пиковой скорости кровотока и давления в v. lienalis, а также с перипортальной лимфаденопатией. Выявленные изменения характерна для пациентов молодого возраста. Заключение. Ультразвуковое исследование селезенки имеет высокую диагностическую ценность для пациентов с инфекционным мононуклеозом. С помощью данного метода возможно точно оценить состояние иммунных органов в остром периоде болезни. На доклиническом этапе возможна градация спленомегалии в зависимости от степени ее выраженности, оценка гемодинамики и жесткости органа.

infectious mononucleosisspleenultrasoundsplenomegalyspleen massspleen mass coefficientинфекционный мононуклеозселезенкаультразвукспленомегалиямасса селезенкикоэффициент массы селезенки1. Бондаренко А.Л., Савиных М.В., Савиных Н.А., Калужских Т.И., Хлебникова Н.В., Малкова Л.В., Рябова Н.В. Возрастные отличия инфекционного мононуклеоза Эпштейна—Барр вирусной этиологии // Журнал инфектологии. 2018. Т. 10, № 1. С. 36-41. doi: 10.22625/2072-6732-2018-10-1-36-412. Возгомент О.В., Пыков М.И., Зайцева Н.В. Новые подходы к ультразвуковой оценке размеров селезенки у детей // Ультразвуковая и функциональная диагностика. 2013. № 6. С. 56-62.3. Касымова Е.Б., Башкина О.А., Галимзянов Х.М. Ключевые вопросы диагностики и лечения инфекционного мононуклеоза // Астраханский медицинский журнал. 2016. Т. 11, № 3. С. 38-44.4. Михнева С.А., Гришина Ю.Ю., Кухтевич Е.В., Мартынов Ю.В. Инфекционный мононуклеоз: характеристика проявлений эпидемического процесса // Инфекционные болезни: новости, мнение, обучение. 2017. № 5. С. 61-64. doi: 10.24411/2305-3496-2017-000865. Перепелица С.А., Алексеева С.В., Возгомент О.В. Ранние ультразвуковые признаки спленомегалии у новорожденных // Общая реаниматология. 2019. Т. 15, № 4. С. 58-66. doi: 10.15360/1813-9779-2019-4-58-666. Соломай Т.В. Динамика заболеваемости и территориальное распределение инфекционного мононуклеоза // Здравоохранение Российской Федерации. 2019. Т. 63, № 4. С. 186-192.7. Шайхуллина Л.Р., Валишин Д.А., Хунафина Д.Х., Хасанова Г.М., Галиева А.Т., Кутлугужина Ф.Г., Ишмухаметова А.Р. Клиническое течение инфекционного мононуклеоза в Республике Башкортостан // Международный академический вестник. 2016. Т. 15, № 3. С. 20-22.8. Alaoui C.R., Rami M., Khatalla K., Elmadi A., Bouabdellah Y. Spontaneous rupture of the spleen in a child. Pan. Afr. Med. J., 2019, vol. 32: 184. doi: 10.11604/pamj.2019.32.184.42609. Balfour H.H., Dunmire S.K., Hogquist K.A. Infectious mononucleosis. Clin. Transl Immunology, 2015, vol. 4, no. 2: e33. doi: 10.1038/cti.2015.110. Balfour H.H., Odumade O.A., Schmeling D.O., Mullan B.D., Ed J.A., Knight J.A., Vezina H.E., Thomas W., Hogquist K.A. Behavioral, virologic, and immunologic factors associated with acquisition and severity of primary Epstein-Barr virus infection in university students. J. Infect. Dis., 2013, no. 207, pp. 80-88. doi: 10.1093/infdis/jis64611. Barnwell J., Deol P.S. Atraumatic splenic rupture secondary to Epstein-Barr virus infection. BMJ Case Rep., 2017: bcr2016218405. doi: 10.1136/bcr-2016-21840512. Bartlett A., Williams R., Hilton M. Splenic rupture in infectious mononucleosis: a systematic review of published case reports. Injury, 2016, vol. 47, no. 3, pp. 531-538. doi: 10.1016/j.injury.2015.10.07113. Cohen J.I. Epstein-Barr virus vaccines. Clin. Transl. Immunology, 2015, vol. 4, no. 1: e32. doi: 10.1038/cti.2014.2714. Dunmire S.K., Hogquist K.A., Balfour H.H. Infectious Mononucleosis. Curr. Top. Microbiol. Immunol., 2015, no. 390, pp. 211240. doi: 10.1007/978-3-319-22822-8_915. Dunmire S.K., Verghese P.S., Balfour H.H. Jr. Primary Epstein-Barr virus infection. J. Clin. Virol., 2018, no. 102, pp. 84-92. doi: 10.1016/j.jcv.2018.03.00116. Ebell M.H. Epstein-Barr virus infectious mononucleosis. Am. Fam. Physician, 2004, vol. 70, no. 7, pp. 1279-1287.17. Farukhi S.N., Fox J.C. The role of ultrasound in the management and diagnosis of infectious mononucleosis. Crit. Ultrasound. J., 2014, vol. 6, no. 1: 4. doi: 10.1186/2036-7902-6-418. Fourcade G., Germi R., Guerber F., Lupo J., Baccard M., Seigneurin A., Semenova T., Morand P., Epaulard O. Evolution of EBV seroprevalence and primary infection age in a French hospital and a city laboratory network, 2000-2016. PLoS One, 2017, vol. 12, no. 4: e0175574. doi: 10.1371/journal.pone.0175574.19. Heo D.H., Baek D.Y., Oh S.M., Hwang J.H., Lee C.S., Hwang J.H. Splenic infarction associated with acute infectious mononucleosis due to Epstein-Barr virus infection. Med. Virol., 2017, vol. 89, no. 2, pp. 332-336. doi: 10.1002/jmv.2461820. Hocqueloux L., Causse X., Valery A., Jandali J.-C., Maitre O., Soin C., Buret J., Ouane F., Niang M., Mille C., Prazuck T., Guinard J., Guigon A. The high burden of hospitalizations for primary EBV infection: a 6-year prospective survey in a French hospital. Clin. Microbiol. Infect., 2015, vol. 21, no. 11: 1041.e1-7. doi: 10.1016/j.cmi.2015.07.01521. Izranov V., Palvanova U., Gordova V., Perepelitsa S., Morozov S. Ultrasound criteria of splenomegaly. The Radiologist, 2019, vol. 1, no. 1002, pp. 3—6.22. Lennon P., Crotty M., Fenton J.E. Infectious mononucleosis. BMJ, 2015, 350: h1825. doi: 10.1136/bmj.h182523. Li Y., George A., Arnaout S., Wang J.P., Abraham G.M. Splenic infarction: an under-recognized complication of infectious mononucleosis? Open Forum Infect. Dis., 2018, vol. 5, no. 3: ofy041. doi: 10.1093/ofid/ofy04124. Machado C., Salgado J.M., Monjardino L. The unexpected finding of a splenic infarction in a patient with infectious mononucleosis due to Epstein-Barr virus. BMJ Case Rep., 2015, 2015: bcr2015212428. doi: 10.1136/bcr-2015-21242825. Naviglio S., Abate M.V., Chinello M., Ventura A. Splenic infarction in acute infectious mononucleosis. J. Emerg. Med., 2016, vol. 50 (1): e11-3. doi: 10.1016/j.jemermed.2015.09.01926. Pelizzo G., Guazzotti M., Klersy C., Nakib G., Costanzo F., Andreatta E., Bassotti G., Calcaterra V. Spleen size evaluation in children: time to define splenomegaly for pediatric surgeons and pediatricians. PLoS One, 2018, vol. 13 (8): e0202741. doi: 10.1371/journal.pone.020274127. Sergent S.R., Johnson S.M., Ashurst J., Johnston G. Epstein-Barr virus-associated atraumatic spleen laceration presenting with neck and shoulder pain. Am. J. Case. Rep., 2015, no. 16, pp. 774-777. doi: 10.12659/ajcr.89391928. Suzuki Y., Kakisaka K., Kuroda H., Sasaki T., Takikawa Y. Splenic infarction associated with acute infectious mononucleosis. Korean. J. Intern. Med., 2018, vol. 33, no. 2, pp. 451—452. doi: 10.3904/kjim.2016.39429. Rostgaard K., Balfour H.H., Jarrett R., Erikstrup C., Pedersen O., Ullum H., Nielsen L.P., Voldstedlund M., Hjalgrim H. Primary Epstein-Barr virus infection with and without infectious mononucleosis. PLoS One, 2019, vol. 14 (12): e0226436. doi: 10.1371/journal.pone.022643630. Rotbain E.C., Hansen D.L., de Muckadell O.S., Wibrand F., Meldgaard Lund A., Frederiksen H. Splenomegaly — diagnostic validity, work-up, and underlying causes. PLoS One, 2017, vol. 12 (11): e0186674. doi: 10.1371/journal.pone.018667431. Wemel A.C., Mayet A., Bellier S., Bigaillon C., Rapp C., Ficko C. Severe infectious mononucleosis in immunocompetent adults. Med. Mal. Infect., 2017, vol. 47, no. 8, pp. 540—545. doi: 10.1016/j.medmal.2017.09.009