Pathogenic potential of bacteria of the genus Aeromonas

Cover Page


Cite item

Full Text

Abstract

Introduction. Bacteria of the genus Aeromonas are widespread in the environment, including marine and freshwater ecosystems, therapeutic mud, and wastewater. In recent years, human diseases caused by Aeromonas spp. have been increasingly reported, especially in individuals with weakened immune system. Being resistant to multiple drugs, these bacteria isolated from water bodies, fish, and seafood on fish farms pose a potential threat to aquaculture production and their spread throughout the environment. This review on study results assessing biological properties of Aeromonas bacteria, systematizing data on the phenotypic and molecular genetic mechanisms of their pathogenicity, defines a strategy for an interdisciplinary approach to diagnose and prevent Aeromonas infection. The objective of this review is to summarize and analyze data on the biochemical and molecular genetic characteristics of Aeromonas bacteria and determine their clinical and sanitary-epidemiological significance. Materials and methods. Literature sources for this review were selected from the PubMed and Web of Science databases, and the eLIBRARY.ru scientific electronic library website. Initially, 98 scientific articles published between 2019 and 2025 were included in the work, covering the results from studies on the biological properties and prevalence of Aeromonas bacteria in patient biomaterials with bacterial infections, as well as their prevalence in environmental objects. The final version of the review included 65 references. Results. The scientific data presented here indicate a high frequency of detection of Aeromonas spp. in various environmental objects and those possessing pathogenicity factors. The presence of virulence and antimicrobial resistance determinants confirm their role in the development of human and animal as well as aquatic infections. Due to their ubiquitous distribution, metabolic and genetic characteristics, Aeromonas bacteria have been currently acquiring the status of a new pathogen and an indicator of resistance and virulence genes. Conclusion. The conducted analysis assessing results of studies on issues of identification, determination of phenotypic and genotypic characteristics, including antibiotic resistance underlying pathogenic potential of bacteria of the genus Aeromonas, suggests a need to further investigate these bacteria in the fields of healthcare, fish farming and agriculture.

Full Text

Введение

Бактерии Aeromonas spp., характеризующиеся повсеместным распространением в объектах окружающей среды, могут вызывать болезни рыб и сельскохозяйственных животных, инфицировать человека. Инфекции, вызванные аэромонадами, более распространены в развивающихся странах и чаще встречаются в сезон дождей, когда соленость воды ниже, чем в «сухой» сезон [18]. Штаммы этих бактерий, обладающие вирулентностью и патогенностью, способны поражать желудочно-кишечный тракт, кожу и мягкие ткани, вызывать сепсис, провоцировать развитие таких заболеваний, как гастроэнтерит, некротический фасциит и мионекроз, трудно поддающихся лечению и способных приводить к летальным исходам [9]. В связи с растущей устойчивостью к антибиотикам, бактерии Aeromonas spp. также представляют серьезную проблему для здравоохранения, экологии и сельского хозяйства.

Все виды Aeromonas могут выступать не только в качестве патогенов, вызывающих различные заболевания животных и человека, но и служить индикаторами загрязнения водных объектов. Несмотря на отсутствие явно выраженных фенотипических признаков антибиотикорезистентности, изоляты Aeromonas spp., обнаруженные в местах купания, могут содержать гены устойчивости к лекарственным препаратам или служить возбудителями инфекций, которые сложно диагностировать и лечить [35].

В последние годы возрастает количество научных публикаций, свидетельствующих об обнаружении бактерий рода Aeromonas в продуктах питания. Бактерии этого рода нередко относят к «эмерджентным» пищевым патогенам. Особенно важно выявление этих бактерий, в том числе обладающих факторами патогенности, в свежих продуктах, готовых к употреблению морепродуктах и питьевой воде. Изучение распространения этих типов изолятов в пищевых продуктах и выявление источников их загрязнения представляется актуальной задачей, направленной на разработку эффективного мониторинга циркуляции Aeromonas spp. в объектах окружающей среды [49].

Известно, что бактерии рода Aeromonas способствуют возникновению фурункулеза и сепсиса у рыб и моллюсков, значительно сокращающих их популяцию. Быстрый рост и интенсификация аквакультуры повышают риски бактериальных заболеваний культивируемых объектов (рыб, ракообразных, моллюсков, водорослей), для профилактики и лечения которых используются антимикробные препараты. Неизбирательное системное использование антибиотиков способствует селекции резистентных микроорганизмов, что представляет серьезную угрозу производственной безопасности, здоровью человека и сопровождается экономическими потерями [5]. Массовая заболеваемость и смертность рыб на фермах, вызванная устойчивыми к антибиотикам бактериями рода Aeromonas, является серьезной проблемой разведения и выращивания водных организмов [7, 8, 17].

Поскольку колонии бактерий Aeromonas spp. и представителей семейства Enterobacteriaceae на некоторых питательных средах могут иметь сходные морфологические признаки (цвет, форма, размер), определение бактерий рода Aeromonas по фенотипическим признакам (культуральным, морфологическим) представляется проблематичным [26]. Биохимические свойства различных видов рода Aeromonas варьируются, затрудняя их внутривидовую идентификацию, что приводит к неверному определению родовой и видовой принадлежности [1].

Таким образом, изучение бактерий рода Aeromonas является актуальной междисциплинарной задачей, находящейся на стыке экологии, микробиологии, эпидемиологии и инфектологии. Исследование их биологических свойств, включая молекулярно-генетические методы, позволяет выявить гены, кодирующие антибиотикорезистентность и вирулентность. Учитывая возможность горизонтального переноса генов, Aeromonas spp. могут служить объектами изучения передачи генов, связанных с факторами патогенности. Углубленный анализ результатов исследований, касающихся проблем возникновения оппортунистических инфекций, вызванных аэромонадами в сферах здравоохранения, рыбоводства и сельского хозяйства, позволит определить направление дальнейшего изучения этих бактерий.

Таксономия и биологические свойства Aeromonas spp.

Изначально род Aeromonas входил в состав семейства Vibrionaceae также, как и роды Vibrio, Photobacterium и Plesiomonas. Однако, за последние 20 лет таксономия аэромонад менялась. Результаты филогенетических исследований свидетельствуют о том, что род Aeromonas составляет монофилетическую группу класса Gammaproteobacteria, поэтому входит в семейство Aeromonadaceae [13]. В настоящее время род Aeromonas представлен 38 видами согласно базе данных NCBI (The National Center for Biotechnology Information).

Бактерии рода Aeromonas — грамотрицательные, факультативно-анаэробные неспорообразующие палочки, оксидазоположительные. Во второй половине XX века виды бактерий рода Aeromonas были разделены на мезофильные и психрофильные. В мезофильную группу вошли подвижные штаммы, растущие при более высокой температуре (35–37°C) и вызывающие инфекционные заболевания человека; в психрофильную (растущие при температуре 22–28°С) — неподвижные штаммы, вызывающие заболевания и гибель рыб [26].

Для выделения бактерий рода Aeromonas образцы исследуемого материала высевают на питательные среды: кровяной агар, агар TCBS (тиосульфат-цитратный агар с сахарозой и смесью желчных солей), Hektoen Enteric Agar (HE) [16]. Большинство штаммов Aeromonas растет на триптиказном соевом агаре при 25°C, образуют колонии от коричневого до желтовато-коричневого цвета. Редкие штаммы видов A. bestiarum, A. media и A. eucrenophila образовывают колонии коричневого и темно-коричневого цветов [13]. Виды Aeromonas sobria и Aeromonas hydrophila могут расти на среде с повышенным содержанием хлорида натрия (до 3%), они способны катаболизировать глюкозу и другие углеводы, вырабатывая кислоты и часто газы. По способности к расщеплению L-арабинозы и эскулина дифференциируют виды A. hydrophila и A. veronii, которые продуцируют каталазу, оксидазу, нитраты, ДНКазу, желатиназу и индол [7, 10, 42]. Миоинозитол в качестве источника углерода может использоваться бактериями A. bestiarum, A. bivalvium, A. caviae, A. dhakensis, A. media, A. veronii. Он способствует выживанию бактерий в водной среде и повышению вирулентности [61].

Различные виды бактерий рода Aeromonas фенотипически и генотипически неоднородны. Вариабельность биохимических тестов Aeromonas spp. затрудняет определение видов, поэтому генотипирование является основным методом идентификации. Описаны клинические исследования, предлагающие ПЦР-тесты с хроматографией ДНК для идентификации [14, 18, 31].

Род Aeromonas обладает большим разнообразием и изменчивостью O-антигена, определяющего серогруппу. Наиболее распространенными серогруппами, приводящими к осложнениям заболеваний у людей являются O:11, O:16, O:18 и O:34. Кроме того, штаммы серогруппы O:34 нередко связаны с раневыми инфекциями человека и септицемией у рыб [31].

Мезофильные виды бактерий рода Aeromonas, являющиеся патогенами млекопитающих и человека, в частности, способны к образованию биопленок за счет выработки α-глюкана, обеспечивающего патогенность бактерий и формирование множественной лекарственной устойчивости [18, 31]. Поверхностная молекула липополисахарида разных видов Aeromonas, участвующая в прикреплении и распространении бактерий, способна вызывать острую иммунную реакцию организма, приводя к поражению органов и систем [11, 52].

Клиническое значение Aeromonas spp.

Колонизация человека бактериями рода Aeromonas возможна при употреблении воды из природных источников [16, 32, 38, 62] или контаминированных продуктов питания [46, 54]. Риск проникновения патогенных бактерий в организм человека существует при выполнении медицинских процедур (гирудотерапия, хирургические вмешательства), повышающих вероятность раневых инфекций [11, 18].

Благодаря наличию факторов вирулентности и способности образовывать биопленки Aeromonas spp. вызывают многие желудочно-кишечные заболевания. Согласно исследованиям, у пациентов, инфицированных Aeromonas, могут возникать боли в животе, диарея, тошнота, лихорадка, обезвоживание, специфические признаки пристеночного кишечного кровотечения [18, 29, 34].

Помимо заболеваний ЖКТ, аэромонады способны поражать кожу, подкожно-жировую клетчатку и мягкие ткани. Обладая способностью к адгезии, они адсорбируются на раневых поверхностях и благодаря ферментативной активности разрушают эпителиальные клетки. Это способствует нагноениям, некрозам тканей и проникновению бактериальной инфекции в кровь [38, 45]. По данным научной литературы, к бактериям, вызывающим септицемию, относятся А. hydrophila, A. caviae, A. veronii, A. jandaei, A. veronii и A. schubertii. Более редкими заболеваниями, вызванными Aeromonas spp., являются аспирационная пневмония, кератит, эндофтальмит, неонатальный менингит [18].

Факторы патогенности Aeromonas spp.

Вирулентные штаммы бактерий рода Aeromonas могут быть обнаружены практически в любом субстрате: почве, воде, биологическом материале живых организмов [4, 17]. Патогенез инфекций, вызванных Aeromonas, сложен и на сегодняшний день изучен частично. Одним из важных аспектов бактерий этого рода является их вирулентность, характеризующаяся многофакторностью, предполагающей их роль в патогенезе инфекционного процесса. Для выявления активных токсинов в бактериях Aeromonas предложены ПЦР-тесты, вместе с тем, имеются указания на их низкую специфичность. Хотя многие штаммы, выделенные из различных источников, несут эти гены, лишь немногие из них вырабатывают токсины, активные в отношении эукариотических клеток [49].

Патогенный потенциал штаммов бактерий рода Aeromonas обусловлен множеством факторов вирулентности: токсинами, структурными компонентами, ферментами и системами их секреции [6, 55]. Присутствие этих факторов вирулентности позволяет бактериям проникать и колонизировать ткани организма хозяина, преодолевать механизмы иммунного ответа, что приводит к развитию воспалительного процесса [26].

К токсическим факторам вирулентности Aeromonas spp. относятся гемолизины (α-гемолизин, β-гемолизин), цитотоксины, энтеротоксины. Аэромонады обладают гемолитической активностью благодаря наличию генов hlyA и aerA. Гемолизин вызывает лизис эритроцитов, разрушая клеточную мембрану.

Ген act кодирует цитотоксический энтеротоксин, выполняющий цитотоксическую, гемолитическую и энтеротоксическую функции. Цитотонические энтеротоксины (гены ast, alt) играют важную роль в возникновении диареи. Шига-токсины (Stx1 и Stx2) имеют белковую структуру, способствуют апоптозу инфицируемых клеток за счет способности к связыванию с поверхностью клеток и ферментативной активности. Экспрессируемый аэролизин образует отверстия в клеточной мембране, нарушая ее проницаемость, что в конечном итоге приводит к осмотическому лизису клеток [18].

Важными факторами вирулентности Aeromonas spp. являются структурные компоненты, к которым относятся белки и соответствующие им гены: адгезины (пили IV типа — flp IV), полярные жгутики — флагеллины (flaA, flaB, flaG, flaH и flaJ), капсульные белки и другие вспомогательные структурные компоненты (maf-5) [18, 44]. Среди изученных факторов вирулентности описаны ферменты: протеазы — сериновая протеаза (aspA); эластаза (ahpB) и липазы (pla и plc, sat), вызывающие осложнения заболеваний; ДНКаза; энолаза — гликолитический фермент, экспрессируемый на поверхности клеток, который связывается с человеческим плазминогеном, приводящим к образованию плазмина, расщепляющего белки плазмы [18].

Описанные выше факторы вирулентности входят в состав систем белковой секреции, изучение которых необходимо для понимания общей картины патогенеза и причин развития вызванных бактериями рода Aeromonas заболеваний человека и животных. Система секреции II типа связана с высвобождением во внешнюю среду протеаз, амилаз, ДНКаз и аэролизина. Система секреции III типа чаще встречающаяся в клинических изолятах, чем в изолятах из окружающей среды. Система секреции VI типа позволяет внедрять факторы вирулентности в клетки-хозяева посредством специальных белков, обладающих противомикробными свойствами благодаря способности к формированию пор [18, 43].

Результаты исследования генов вирулентности бактерий рода Aeromonas, изолированных из образцов воды и рыбы, выявили в этих штаммах наличие комплексов генов aer, fla, ahyB, lip, act, ser, hly, altA, eno, asa1, aexT, ahh1 и epa, вызвавших гибель рыб [25, 30, 48]. Большинство генов, связанных с вирулентностью, являются хромосомными, что подразумевает их функциональное фундаментальное значение, либо их закрепление после горизонтального переноса генов. Динамика адаптивной эволюции посредством изменений в последовательности генов, их регуляции, экспрессии, потери или приобретения соответствует явлению патоадаптации, которое предположительно повышает приспособленность микроба к новой экологической нише [55].

Фенотипическая резистентность бактерий рода Aeromonas к антибиотикам

Во многих странах существует проблема высокого содержания антибиотикорезистентных и мультирезистентных штаммов Aeromonas в природных объектах и объектах аквакультуры [61]. Разнообразие видов Aeromonas, устойчивых к множеству лекарственных препаратов, выделенных на рыбных фермах, представляет собой серьезную угрозу для производства рыбы [14]. Проблемы идентификации и постоянно меняющаяся таксономия видов Aeromonas, объясняют сложность определения антибиотикорезистентности [47].

Изоляты бактерий рода Aeromonas, выделенные из водных организмов проявляли повсеместно высокую природную устойчивость к β-лактамам, включая пенициллины (ампициллин, амоксициллин) и цефалоспорины первого/второго поколений (цефазолин, цефокситин), поскольку многие из них являются продуцентами β-лактамаз. Исключение составил вид A. ichthiosmia, чувствительный к амоксициллину [12]. Исследования чувствительности Aeromonas spp. к карбапенемам выявили как чувствительные, так и резистентные штаммы, что указывает на видовые различия и возможное формирование новых механизмов резистентности. Вместе с тем наблюдается значительная устойчивость к другим классам антимикробных препаратов: высокий уровень резистентности у всех видов Aeromonas выявлен к препарату группы тетрациклинов окситетрациклину, у 65–74% бактерий обнаружена настораживающе высокая устойчивость к колистину (полимиксину B), считающемуся препаратом «резерва», у большинства видов (более 60%) отмечается резистентность к ко-тримоксазолу (триметоприм-сульфаметоксазолу). В то же время наименьший, часто ниже 20–25%, уровень резистентности Aeromonas зафиксирован к фторхинолонам (ципрофлоксацину, офлоксацину) и аминогликозидам (гентамицину, тобрамицину), а в одном из исследований была продемонстрирована 100% чувствительность к азтреонаму (монобактаму) [14, 17, 27, 39, 47, 59, 64].

У изолятов, выделенных из клинических образцов, обнаружена устойчивость к налидиксовой кислоте, тетрациклину, цефалоспоринам 3-го поколения, карбапенемам и колистину [28, 37, 38, 45, 47]. Бактерии, выделенные из сточных вод и водоемов рыбоводческих хозяйств, проявляли устойчивость к налидиксовой кислоте, ципрофлоксацину, норфлоксацину, линкомицину, ванкомицину, азтреонаму, цефепиму, карбапенемам и полимиксину [8, 12, 63, 64].

Важно отметить, что неоднократное выявление устойчивости Aeromonas к колистину, резервному антибиотику, может говорить о неконтролируемом применении антибиотиков, способствующем появлению устойчивых форм бактерий Aeromonas [41, 45, 58]. В дальнейшем это может затруднять антибиотикотерапию аэромонадной инфекции и приводить к ее тяжелым последствиям [28].

Профили устойчивости к антибиотикам указывают на влияние источников воды, загрязненных в результате деятельности человека [27]. В последние годы многие исследования выявили связь между использованием антибиотиков и эволюцией генов устойчивости, а также их распространенностью [19].

Генотипическая резистентность Aeromonas spp.

Бактерии Aeromonas spp. способны вырабатывать β-лактамазы классов: B (металло-β-лактамазы/MBL), C (цефалоспориназы) и D (пенициллиназы). Имеются сведения о наличии β-лактамаз у некоторых видов: A. hydrophila вырабатывает β-лактамазы классов B, C и D; A. caviae — C и D; A. veronii — B и D; A. schubertii — D; A. trota — C [18]. В настоящее время у многих видов Aeromonas все чаще обнаруживаются гены множественной лекарственной устойчивости [24], в том числе гены устойчивости к карбапенемам и колистину, что вызывает беспокойство в связи с применением их при лечении пациентов в тяжелых случаях. Обнаружение нескольких плазмид с генами множественной резистентности в штаммах может говорить о возможном их горизонтальном переносе [21, 22, 56, 58].

Показано, что перенос генов в изолятах Aeromonas spp. осуществляется в основном посредством конъюгации и трансформации, при которых пили IV типа играют основную роль. Исследование семи штаммов Aeromonas, продуцирующих ESBL, и двух штаммов, продуцирующих ampCBL, продемонстрировало возможность передачи генов устойчивости к антибиотикам бактериям E. coli [18].

Изоляты Aeromonas spp., выделенные из морской экосистемы и обладающие множеством генов, связанных с устойчивостью к тяжелым металлам, а также клинически значимых генов устойчивости к противомикробным препаратам, таких как mcr-3 (обеспечивающий устойчивость к колистину) и blaOXA (связанный с устойчивостью к бета-лактамам), демонстрируют их высокую адаптивность и наличие патогенного потенциала [21].

Таким образом, обнаружение генов AMR (antimicrobial resistance), плазмид и транспозонов в изолятах Aeromonas spp., выделенных из водной среды, рыб и животных, способствует пониманию роли Aeromonas spp. в распространении их в окружающей среде. Результаты этих исследований определяют необходимость разработки эффективного мониторинга, направленного на ограничение распространения в различных экосистемах Aeromonas spp., обладающих AMR, в том числе резистентности к колистину [24]. Характеристика факторов патогенности бактерий рода Aeromonas, изолированных из различных экологических и клинических источников, свидетельствует об их минимальных различиях.

Санитарно-эпидемиологическое значение Aeromonas spp.

Патогенность Aeromonas spp. для пойкилотермных животных и млекопитающих, в том числе человека, представляет серьезную угрозу для окружающей среды и здоровья населения, особенно в условиях растущего уровня устойчивости к антибиотикам. Основными резервуарами для распространения антибиотикорезистентных популяциях бактерий и генов, несущих факторы патогенности, служат очистные сооружения, являющиеся их потенциальным источником в водных экосистемах. Высокая концентрация бактерий, сосуществующих с сублетальными концентрациями антибиотиков на протяжении всего процесса очистки сточных вод, обеспечивает оптимальные условия для формирования резистентности и переноса генов устойчивости другим микроорганизмам в окружающей среде.

Среди популяций аэромонад, выделенных из хлорированных сточных вод, отмечается ежегодное увеличение показателей множественной лекарственной устойчивости, что подтверждает наличие водных факторов передачи бактериальных инфекций человеку. Это подчеркивает острую необходимость исследований потенциальной патогенности Aeromonas spp. и разработки схем мониторинга устойчивости бактерий Aeromonas к антибиотикам в природных водных резервуарах и антропогенных источниках загрязнения [15, 51, 53]. В частности, в Нидерландах факты обнаружения бактерий рода Aeromonas при исследовании питьевой воды послужили основанием для включения их в качестве дополнительного показателя оценки качества питьевой воды. Для определения этого показателя образцы воды высевали на агар с ампициллином и декстрином, посевы культивировали при температуре 30°C [57].

Помимо водных объектов, многие виды бактерий рода Aeromonas (A. veronii, A. hydrophila, A. sorbia, A. jandaei, A. allosaccharophila, A. trota, A. caviae, A. dhakensis A. enteropelogenes, A. salmonicida, A. bestiarum), часто встречающиеся у рыб и других водных организмов, способны вызывать у них различные заболевания [17, 23, 61, 64]. Инфекция, вызываемая Aeromonas, поражает широкий спектр видов рыб, в том числе употребляемых в пищу, выращиваемых на фермах [10, 60]. Самым распространенным заболеванием в рыбоводстве, вызванным гипервирулентными штаммами рода Aeromonas, является аэромоноз, приводящий к массовой гибели рыб. Помимо аэромоноза описаны случаи септицемии у водных организмов, фурункулеза, воспаления и кровоизлияний в различных частях тела рыб [3, 17, 24, 27, 40, 50, 61]. Это приводит к замедлению роста, увеличению заболеваемости и смертности выращиваемых организмов на фермах, а также к повышению производственных затрат, снижению доходов и продовольственной безопасности [14]. Отмечена сезонная динамика повышения вирулентности Aeromonas spp. в весенне-летний период за счет загрязнения водоемов органическими веществами, что повышает заболеваемость рыб [1].

Для диагностики аэромонад на предприятиях, осуществляющих разведение товарных видов рыб, обычно используются микробиологические методы, существенным недостатком которых являются сроки получения результатов. Кроме того, микробиологические методы диагностики не всегда позволяют объективно оценить патогенный потенциал аэромонад. В этой связи существует необходимость разработки методов экспресс-диагностики, позволяющих своевременно выявлять присутствие аэромонад и определять их этиологическую значимость [2]. Вместе с тем известно, что штаммы бактерий рода Aeromonas обладают генами (fla, lip, aerA, act, alt), которые могут быть использованы в качестве целевых биомаркеров при разработке диагностических систем для выявления патогенных штаммов бактерий рода Aeromonas в среде и продуктах питания [4].

Заключение

Род Aeromonas привлекает все большее внимание научного сообщества благодаря своим уникальным метаболическим и генетическим возможностям, повсеместному распространению в водной и почвенной средах, статусу нового патогена и индикатора AMR в рамках концепции «Единое здоровье» [20, 33, 36].

Высокая антропогенная нагрузка на объекты окружающей среды способствует росту числа людей, контактирующих с возбудителями и подвергающихся риску инфицирования. Носители и переносчики различных возбудителей инфекций обусловливают возможность сочетанной патологии у человека.

Инфицирование организма человека бактериями рода Aeromonas происходит при употреблении воды из природных источников и при попадании на поврежденные кожу и слизистые оболочки, что может приводить к серьезным заболеваниям. Частое выявление вирулентных и антибиотикорезистентных, в особенности мультирезистентных, штаммов в клиническом материале вызывает все большее беспокойство. Идентификация бактерий Aeromonas spp. по фенотипическим признакам затруднена вследствие сходства культуральных и биохимических свойств как внутри рода Aeromonas, так и с представителями других родов семейства Enterobacteriaceae и Aeromonas spp.

Появляется все больше доказательств в пользу необходимости активного мониторинга Aeromonas, включающего метаанализ, позволяющего использовать их в качестве индикаторного вида для AMR. При этом взаимосвязь между Aeromonas в рекреационных и сточных водах, а также влияние этой взаимосвязи на вероятность контаминации людей в процессе отдыха (купание в различных водоемах) остаются недостаточно изученными.

В обзоре дана характеристика фенотипических и молекулярно-генетических свойств бактерий рода Aeromonas. Особый интерес в изучении Aeromonas spp. представляет наличие патогенного потенциала, в частности их устойчивость к противомикробным препаратам. Несмотря на многочисленные иностранные исследования, в нашей стране вопрос распространения бактерий рода Aeromonas с множественной лекарственной устойчивостью в клиническом материале и объектах окружающей среды изучен недостаточно. Исследование фенотипических признаков антибиотикорезистентности и генома бактерий Aeromonas spp. для выявления маркеров устойчивости к лекарственным препаратам позволит усовершенствовать методы идентификации и создать схемы мониторинга бактерий рода Aeromonas в объектах окружающей среды и биоматериале пациентов с целью профилактики бактериальных инфекций человека и животных.

Дополнительная информация

Конфликт интересов. Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией настоящей статьи.

×

About the authors

Sophia M. Logacheva

Tyumen Region Infection Pathology Research Institute

Email: info@tniikip.rospotrebnadzor.ru
ORCID iD: 0009-0005-1804-5498
SPIN-code: 3441-1100

Junior Researcher, Clinical Bacteriology Group

Russian Federation, Tyumen

Lyubov V. Kataeva

Tyumen Region Infection Pathology Research Institute

Author for correspondence.
Email: KataevaLV@Tniikip.rospotrebnadzor.ru
ORCID iD: 0000-0001-9966-8454
SPIN-code: 7639-8300
Scopus Author ID: 36958670900

DSc (Medicine), Head Researcher, Head of the Bacteriogical Laboratory

Russian Federation, Tyumen

Ksenia B. Stepanova

Tyumen Region Infection Pathology Research Institute

Email: info@tniikip.rospotrebnadzor.ru
ORCID iD: 0000-0002-5420-0919
SPIN-code: 1967-8499
Scopus Author ID: 23767533600

DSc (Medicine), Associate Professor, Director

Russian Federation, Tyumen

Tatiana F. Stepanova

Tyumen Region Infection Pathology Research Institute

Email: info@tniikip.rospotrebnadzor.ru
ORCID iD: 0000-0002-6289-6274
SPIN-code: 1212-5143
Scopus Author ID: 7007079186

DSc (Medicine), Professor, Head Researcher

Russian Federation, Tyumen

References

  1. Басанкина В.М., Пруцаков С.В., Басанкин А.В. Аэромоноз рыб: эпизоотологические особенности, клинические признаки, патологоанатомические изменения // Ветеринария Кубани. 2019. № 2. С. 21–23. [Basankina V.M., Prutsakov S.V., Basankin A.V. Aeromonosis of fish: epizootiological features, clinical signs, and pathological changes. Veterinariya Kubani = Kuban Veterinary Bulletin, 2019, no. 2, pp. 21–23. (In Russ.)] doi: 10.33861/2071-8020-2019-2-22-24
  2. Васильева О.В., Ульшина Д.В., Волынкина А.С., Писаренко С.В., Сирица Ю.В., Гнусарева О.А., Яценко Н.А., Куличенко А.Н. Опыт применения метода метагеномного секвенирования по фрагментам гена 16S рРНК для детекции и идентификации возбудителей природно-очаговых инфекций // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2025. Т. 102, № 2. С. 201–212. [Vasilieva O.V., Ul’shina D.V., Volynkina A.S., Pisarenko S.V., Siritsa Yu.V., Gnusareva O.A., Yatsenko N.A., Kulichenko A.N. Experience of applying the metagenomic sequencing method on fragments of the 16S rRNA gene for the detection and identification of natural focal infection pathogens. Zhurnal mikrobiologii, epidemiologii i immunobiologii = Journal of Microbiology, Epidemiology and Immunobiology, 2025, vol. 102, no. 2, pp. 201–212. (In Russ.)] doi: 10.36233/0372-9311-629
  3. Витомскова Е.А. Бактериальные болезни рыб открытых водоемов крайнего северо-востока России // Journal of Agriculture and Environment. 2024. № 9(49). [Vitomskova E.A. Bacterial diseases of fish in open water bodies in the Far North-East of Russia. Journal of Agriculture and Environment, 2024, no. 9(49). (In Russ.)] doi: 10.60797/JAE.2024.49.10
  4. Доколин Д.А. Скрининг генетических биомаркеров для обнаружения патогенных аэромонад в продуктах питания и окружающей среде // Международная научно-практическая конференция молодых ученых и специалистов отделения сельскохозяйственных наук Российской академии наук. 2024. № 1. С. 74–78. [Dokolin D.A. Screening of genetic biomarkers for detecting pathogenic Aeromonas in food and the environment. International Scientific and Practical Conference of Young Scientists and Specialists of the Department of Agricultural Sciences of the Russian Academy of Sciences, 2024, no. 1, pp. 74–78. (In Russ.)]
  5. Доколин Д.А., Егоров Д.О., Флерова Е.А., Зайцева Ю.В. Исследование резистентности микроорганизмов в системе аквакультуры Oncorhynchus mykiss // Ветеринария и кормление. 2023. № 5. С. 22–26. [Dokolin D.A., Egorov D.O., Flerova E.A., Zaitseva Yu.V. Investigation of microbial resistance in the aquaculture system Oncorhynchus mykiss. Veterinariya i kormlenie = Veterinary Medicine and Feeding, 2023, no. 5, pp. 22–26. (In Russ.)] doi: 10.30917/ATT-VK-1814-9588-2023-5-6
  6. Доколин Д.А., Зайцева Ю.В. Бактерии рода Aeromonas как потенциальный источник инфекций у рыб и земноводных // Экология и общество. 2020. № 23. С. 255–256. [Dokolin D.A., Zaitseva Yu.V. Bacteria of the genus Aeromonas as a potential source of infections in fish and amphibians. Ekologiya i obshchestvo = Ecology and Society, 2020, no. 23, pp. 255–256. (In Russ.)]
  7. Ломакин А.А., Феоктистова Н.А., Сульдина Е.В., Нафеев А.А. Разработка и апробация схемы выделения и бактериологической идентификации Aeromonas hydrophila // Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. 2024. № 2(54). С. 148–156. [Lomakin A.A., Feoktistova N.A., Suldina E.V., Nafeev A.A. Development and validation of a scheme for isolation and bacteriological identification of Aeromonas hydrophila. Vestnik Ul’yanovskoi gosudarstvennoi sel’skokhozyaistvennoi akademii = Bulletin of the Ulyanovsk State Agricultural Academy, 2024, no. 2(54), pp. 148–156. (In Russ.)] doi: 10.18286/1816-4501-2024-1-117-124
  8. Ломакин А.А., Феоктистова Н.А., Мастиленко А.В., Минаева А.Н. Изучение профилей чувствительности бактерий рода Aeromonas (A. hydrophila, A. veronii, A. caviae, A. salmonicida), выделенных из объектов ветеринарно-санитарного надзора // Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. 2023. № 3(63). С. 120–126. [Lomakin A.A., Feoktistova N.A., Mastilenko A.V., Minaeva A.N. Study of the sensitivity profiles of Aeromonas bacteria (A. hydrophila, A. veronii, A. caviae, A. salmonicida) isolated from veterinary and sanitary surveillance objects. Vestnik Ul’yanovskoi gosudarstvennoi sel’skokhozyaistvennoi akademii = Bulletin of the Ulyanovsk State Agricultural Academy, 2023, no. 3(63), pp. 120–126. (In Russ.)] doi: 10.18286/1816-4501-2023-3-120-126
  9. Минаева А.Н., Ломакин А.А., Васильев Д.А., Шестаков А.Г. Общая характеристика бактерий вида Aeromonas veronii // Евразийский союз ученых. 2021. № 2(83). С. 7–9. [Minaeva A.N., Lomakin A.A., Vasil’ev D.A., Shestakov A.G. General characteristics of the Aeromonas veronii species. Evraziiskii soyuz uchenykh = Eurasian Union of Scientists, 2021, no. 2(83), pp. 7–9. (In Russ.)]
  10. Родионова А.В., Сульдина Е.В., Васильев Д.А. Изучение устойчивости к некоторым физическим и химическим факторам бактерий рода Aeromonas // Аграрная наука и образование на современном этапе развития: опыт, проблемы и пути их решения: материалы XI Междунар. науч.-практ. конф. 2021. № 2. С. 379–385. [Rodionova A.V., Suldina E.V., Vasil’ev D.A. Study of the resistance of bacteria of the genus Aeromonas to some physical and chemical factors. Agricultural science and education at the present stage of development: experience, problems and solutions: Proceedings of the XI International scientific and practical conference, 2021, no. 2, pp. 379–385. (In Russ.)]
  11. Чезганова Е.А., Ефимова О.С., Сахарова В.М., Ефимова А.Р., Созинов С.А., Исмагилов З.Р., Брусина Е.Б. Дополнительный резервуар госпитальных микроорганизмов в медицинских организациях // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2021. Т. 98, № 3. С. 266–275. [Chezganova E.A., Efimova O.S., Sakharova V.M., Efimova A.R., Sozinov S.A., Ismagilov Z.R., Brusina E.B. The additional reservoir of hospital environment microorganisms at healthcare facilities. Zhurnal mikrobiologii, epidemiologii i immunobiologii = Journal of Microbiology, Epidemiology and Immunobiology, 2021, vol. 98, no. 3, pp. 266–275. (In Russ.)] doi: 10.36233/0372-9311-120
  12. Яковенко П.П., Тищенко А.С., Максим Е.А., Кощаев А.Г., Алферов Д.О., Калошкина И.М. Оценка антагонистической активности и антибиотикорезистентности эпизоотически значимых видов аэромонад // Ветеринария Кубани. 2023. № 5. С. 43–45. [Yakovenko P.P., Tishchenko A.S., Maksim E.A., Koshchaev A.G., Alferov D.O., Kaloshkina I.M. Assessment of the antagonistic activity and antibiotic resistance of epizootically significant species of Aeromonas. Veterinariya Kubani = Kuban Veterinary Bulletin, 2023, no. 5, pp. 43–45. (In Russ.)] doi: 10.33861/2071-8020-2023-5-43-45
  13. Abbott S.L., Cheung W.K., Janda J.M. The genus Aeromonas: biochemical characteristics, atypical reactions, and phenotypic identification schemes. J. Clin. Microbiol., 2003, vol. 41, no. 6, pp. 2348–2357. doi: 10.1128/JCM.41.6.2348-2357.2003
  14. Adah D.A., Saidu L., Oniye S.J., Adah A.S., Daodu O.B., Ola-Fadunsin S.D. Molecular characterization and antibiotics resistance of Aeromonas species isolated from farmed African catfish Clarias gariepinus Burchell, 1822. BMC Vet. Res., 2024, vol. 20, no. 1: 16. doi: 10.1186/s12917-023-03860-5
  15. Adah D.A., Saidu L., Oniye S.J., Raji M.A., Adah A.S., Daodu O.B., Obisesan O.M. Multivariate analyses of water quality indices and incidence of Aeromonas species in water from different holding facilities in Kwara State, Nigeria. BMC Vet. Res., 2025, vol. 21, no. 1: 381. doi: 10.1186/s12917-025-04830-9
  16. Akbari M., Hadi N., Moradi F. Aeromonas veronii biovar sobria intestinal infection in a child girl after eating freshwater fish and drinking from a natural river in Southern Fars Province, Iran. IDCases, 2025, vol. 40: e02245. doi: 10.1016/j.idcr.2025.e02245
  17. Behera B.K., Parida S.N., Kumar V., Swain H.S., Parida P.K., Bisai K., Dhar S., Das B.K. Aeromonas veronii is a lethal pathogen isolated from gut of infected Labeo rohita: molecular insight to understand the bacterial virulence and its induced host immunity. Pathogens, 2023, vol. 12, no. 4: 598. doi: 10.3390/pathogens12040598
  18. Bhowmick U.D., Bhattacharjee S. Bacteriological, clinical and virulence aspects of Aeromonas-associated diseases in humans. Pol. J. Microbiol., 2018, vol. 67, no. 2, pp. 137–149. doi: 10.21307/pjm-2018-020
  19. Bing-Yao S., Wen H., Hui-Xin Y., Dan-Yang T., Pan-Yang J., Kang W., Cai-Gen Y., Xue-Hong S. Increased susceptibility to Aeromonas hydrophila infection in grass carp with antibiotic-induced intestinal dysbiosis. Aquaculture, 2022, vol. 552: 737969. doi: 10.1016/j.aquaculture.2022.737969
  20. Bojar B.E., Craig A.T., Leduc A., Blumenthal M., May B., Ahmed A.S., Cahak C., Beattie R., Skwor T. Similar antimicrobial resistance and virulence profiles among Aeromonas isolates from recreational beaches, post-chlorinated wastewater and clinical samples in Milwaukee, Wisconsin USA. Sci. Total Environ., 2025, vol. 970: 179035. doi: 10.1016/j.scitotenv.2025.179035
  21. Canellas A.L.B., Mello M.P., Paranhos R., Laport M.S. Genomic signatures of resistance and adaptability in Aeromonas and Pseudomonas from a Brazilian Hope Spot. Braz. J. Microbiol., 2025, vol. 56, no. 3, pp. 1641–1651. doi: 10.1007/s42770-025-01706-w
  22. Chen Y.W., Su Y.C., Chen W.Y., Wu J.H., Chen J.W., Shu-Li Su S.L., Chen C.S., Tsai P.F., Ko W.C., Chen P.L. Comprehensive genomic analysis of antimicrobial resistance in Aeromonas dhakensis. Microb. Drug Resist., 2025, vol. 31, no. 4, pp. 97–106. doi: 10.1089/mdr.2024.0212
  23. Duarte M.L.O., Rodrigues D.L.N., de Lima G.B.V., Ariute J.C., Gouveia G.V., Gouveia J.J.S., Vasco Azevedo V., Brenig B., Guédon E., Tavares G.C., Costa M.M., Pereira U.P., Aburjaile F.F. In silico characterization of resistance and virulence genes in Aeromonas jandaei strains isolated from Oreochromis niloticus in Brazil. Microorganisms, 2025, vol. 13, no. 5: 1094. doi: 10.3390/microorganisms13051094
  24. Dubey S., Ager-Wick E., Kumar J., Karunasagar I., Iddya Karunasagar I., Bo Peng B., Evensen O., Sørum H., Hetron M., Munang’andu H. Aeromonas species isolated from aquatic organisms, insects, chicken, and humans in India show similar antimicrobial resistance profiles. Front. Microbiol., 2022, vol. 13: 1008870. doi: 10.3389/fmicb.2022.1008870
  25. Engert C.J., Medina-Morillo M., Sotil G., Aguinaga J.Y. Isolation, characterisation and virulence of Aeromonas spp. from peruvian rainbow trout: first description of A. popoffii-associated mortality. J. Fish Dis., 2025: e14158. doi: 10.1111/jfd.14158
  26. Fernández-Bravo A., Figueras M.J. An update on the genus Aeromonas: taxonomy, epidemiology, and pathogenicity. Microorganisms, 2020, vol. 8, no. 1: 129. doi: 10.3390/microorganisms8010129
  27. Fuentes-Valencia M.A., Osornio-Esquivel J.L., Martínez Palacios C.A., Contreras-Ávila J.L., Barriga-Tovar E., Ingle-de la Mora G., Arellano-Torres A., Baizabal-Aguirre V.M., Bravo-Patiño A., Cajero-Juárez M., Valdez Alarcón J.J. Bacterial and parasite co-infection in Mexican golden trout (Oncorhynchus chrysogaster) by Aeromonas bestiarum, Aeromonas sobria, Plesiomonas shigelloides and Ichthyobodo necator. BMC Vet. Res., 2022, vol. 18, no. 1: 137. doi: 10.1186/s12917-022-03208-5
  28. Gonzalez-Avila L.U., Loyola-Cruz M.A., Hernández-Cortez C., Bello-López J.M., Castro-Escarpulli G. Colistin resistance in Aeromonas spp.. Int. J. Mol. Sci., 2021, vol. 22, no. 11: 5974. doi: 10.3390/ijms22115974
  29. Guio Oros J.F., Cobos E.A., Reyes J.V., Leal J.A. Large bone defects in the tibia secondary to Aeromonas hydrophila infection in open fractures: Report of two cases. Trauma Case Rep., 2025, vol. 56: 101143. doi: 10.1016/j.tcr.2025.101143
  30. Hu H., Weng X., Pang G., Xiaobing Li X., Xia J., Gao X., He J., Li J., Qian D. Identification, pathogenicity, and antimicrobial resistance analysis of bacterial pathogenesis Aeromonas hydrophila from hybrid sturgeon (Huso dauricus ♀ × A. schrenckii ♂) in Zhejiang, China. Microorganisms, 2025, vol. 13, no. 2: 278. doi: 10.3390/microorganisms13020278
  31. Hu L., Wang X., Li Q. Methodology and application of multiplex PCR-dipstick DNA chromatography for the detection of eight respiratory bacterial pathogens. Front. Cell Infect. Microbiol., 2025, vol. 15: 1558612. doi: 10.3389/fcimb.2025.1558612
  32. Hutchinson L.E., Franke J.D., Mailey B.A. Necrotizing fasciitis secondary to lake water inoculation with Aeromonas sobria. Medicine (Baltimore), 2021, vol. 100, no. 10: e24981. doi: 10.1097/MD.0000000000024981
  33. Jones D.C., LaMartina E.L., Lewis J.R., Dahl A.J., Nadig N., Szabo A., Newton R.J., Skwor T.A. One health and global health view of antimicrobial susceptibility through the «Eye» of Aeromonas: systematic review and meta-analysis. Int. J. Antimicrob. Agents, 2023, vol. 62, no. 2: 106848. doi: 10.1016/j.ijantimicag.2023.106848
  34. Kietsiri P., Sornsakrin S., Nou S., Oransathid W., Peerapongpaisarn D., Oransathid W., Nobthai P., Wassanarungroj P., Gonwong S., Sakpaisal P., Khemnu N., Sok S., Vannara S., Sivhour C., Krang S., Sovann L., Sovannarith E., Lurchachaiwong W., Chaudhury S., Ruamsap N., Lertsethtakarn P. Understanding the etiology of diarrheal illness in Cambodia in a case-control study from 2020 to 2023. Gut Pathog., 2025, vol. 17, no. 1: 32. doi: 10.1186/s13099-025-00709-0
  35. Kosikowska U., Stec J., Andrzejczuk S., Mendrycka M., Pietras-Ożga D., Stępień-Pyśniak D. Plasmid-mediated fluoroquinolone resistance genes in quinolone-susceptible Aeromonas spp. phenotypes isolated from recreational surface freshwater reservoir. Front. Cell Infect. Microbiol., 2022, vol. 12: 885360. doi: 10.3389/fcimb.2022.885360
  36. Lamy B., Baron S., Barraud O. Aeromonas: the multifaceted middleman in the One Health world. Curr. Opin. Microbiol., 2022, vol. 65, pp. 24–32. doi: 10.1016/j.mib.2021.09.012
  37. Li Y., Yu K., Du X., Aixia Yan, Wang M., Kang Y., Li S., Wang Y., Wang L., Liu S., Peng T., Li J., Wang D., Zhenzhou Huang Z. Characterization of Aeromonas Strains Isolated from Adult Patients with Diarrhea and Aquatic Environments — Beijing Municipality, China, 2016–2022. China CDC Wkly, 2025, vol. 7, no. 4, pp. 121–129. doi: 10.46234/ccdcw2025.019
  38. Liu Y., Chen P., Lin F. Clinical characteristics and antibiotic sensitivity & resistance analysis of cases of orthopedic infections caused by Aeromonas hydrophila. BMC Musculoskelet. Disord., 2025, vol. 26, no. 1: 560. doi: 10.1186/s12891-025-08806-6
  39. Makridin A.S., Supova A.V., Kapustin A.V. Comprehensive bacteriological research of medical leeches of the species Hirudo verbana carena with pathology of the gastrointestinal tract. Global Issues Conference 2024: Veterinary Medicine, Biology, Biotechnology, Agriculture, Pedagogical and Philological Sciences, 2024, pp. 321–328.
  40. Mancilla M., Ojeda A., Yuivar Y., Maritza Grandón, Grothusen H., Oyarzún M., Bisquertt A., Ugalde J.A., Fuentes F., Ibarra P., Bustos P. Major antigenic differences in Aeromonas salmonicida isolates correlate with the emergence of a new strain causing furunculosis in Chilean salmon farms. Front. Cell Infect. Microbiol., 2025, vol. 15: 1508135. doi: 10.3389/fcimb.2025.1508135
  41. McDonald N.L., Wareham D.W., Bean D.C. Aeromonas and mcr-3: a critical juncture for transferable polymyxin resistance in gram-negative bacteria. Pathogens, 2024, vol. 13, no. 11: 921. doi: 10.3390/pathogens13110921
  42. Mendoza-Barberá E., Merino S., Tomás J. Surface glucan structures in Aeromonas spp. Mar. Drugs, 2021, vol. 19, no. 11: 649. doi: 10.3390/md19110649
  43. Michova H., Pliva J., Jirsova A., Kamanova J. Cytotoxicity induced by Aeromonas schubertii is orchestrated by a unique set of type III secretion system effectors. Vet. Res., 2025, vol. 56, no. 1: 113. doi: 10.1186/s13567-025-01548-2
  44. Mizaeva T., Alieva K., Zulkarneev E., Mukhamedova D., Kassenova A., Kairatkyzy A., Zhakupbekova Z., Zhumadilov K. Antibacterial Activity of Rainbow Trout Plasma: In Vitro Assays and Proteomic Analysis. Animals (Basel), 2023, vol. 13, no. 22: 3565. doi: 10.3390/ani13223565
  45. Montalvo E., Veiga F., Rodríguez H., Traglia G., Vay C., Almuzara M. Identificación y sensibilidad antibiótica de aislamientos de Aeromonas spp. en un Hospital Universitario de la ciudad de Buenos Aires. Rev. Argent. Microbiol., 2025, vol. 57, no. 2, pp. 105–113. doi: 10.1016/j.ram.2024.11.001
  46. Moradi F., Hadi N., Bazargani A., Abdi F., Ghorbanian N. Aeromonas characteristics in Iran, Southwest Asia; a systematic review and meta-analysis on epidemiology, reservoirs and antibiotic resistance profile from aquatic environments to human society during 2000–2023. BMC Vet. Res., 2025, vol. 21, no. 1: 107. doi: 10.1186/s12917-024-04431-y
  47. Neil B., Cheney G.L., Rosenzweig J.A., Sha J., Chopra A.K. Antimicrobial resistance in aeromonads and new therapies targeting quorum sensing. Appl. Microbiol. Biotechnol., 2024, vol. 108, no. 1: 205. doi: 10.1007/s00253-024-13055-z
  48. Nokhwal A., Vaid R.K., Anand T., Verma R., Gulati R. Aeromonas species diversity, virulence characteristics, and antimicrobial susceptibility patterns in village freshwater aquaculture ponds in North India. Antibiotics (Basel), 2025, vol. 14, no. 3: 294. doi: 10.3390/antibiotics14030294
  49. Pintor-Cora A., Tapia O., Elexpuru-Zabaleta M., Ruiz de Alegría C., Rodríguez-Calleja J.M., Santos J.A., Ramos-Vivas J. Cytotoxicity and antimicrobial resistance of Aeromonas strains isolated from fresh produce and irrigation water. Antibiotics (Basel), 2023, vol. 12, no. 3: 511. doi: 10.3390/antibiotics12030511
  50. Pu W., Guo G., Yang N., Li Q., Yin F., Wang P., Zheng J., Zeng J. Three species of Aeromonas (A. dhakensis, A. hydrophila and A. jandaei) isolated from freshwater crocodiles (Crocodylus siamensis) with pneumonia and septicemia. Lett. Appl. Microbiol., 2019, vol. 68, no. 3, pp. 212–218. doi: 10.1111/lam.13112
  51. Reyes-Rodríguez N.E., Talavera-González J.M., de-Anda F.R.G., Varela-Guerrero J.A., Zepeda-Velázquez A.P., Vega-Sánchez V. Aeromonas, an opportunistic pathogen present in wastewater in Tulancingo, Mexico. J. Water Health, 2025, vol. 23, no. 3, pp. 336–349. doi: 10.2166/wh.2025.242
  52. Seike S., Kobayashi H., Ueda M., Takahashi E., Okamoto K., Yamanaka H. Outer membrane vesicles released from Aeromonas strains are involved in the biofilm formation. Front. Microbiol., 2021, vol. 11: 613650. doi: 10.3389/fmicb.2020.613650
  53. Skwor T., Stringer S., Haggerty J., Johnson J., Duhr S., Johnson M., Seckinger M., Stemme M. Prevalence of potentially pathogenic antibiotic-resistant Aeromonas spp. in treated urban wastewater effluents versus recipient riverine populations: a 3-year comparative study. Appl. Environ. Microbiol., 2020, vol. 86, no. 3: e02053-19. doi: 10.1128/AEM.02053-19
  54. Tabassum T., Islam A., Andalib K.M.S., Sarker B., Mia M., Ahmed K.S., Hossain H., Habib A. Antibacterial activity of Ocimum tenuiflorum against drug resistant bacteria isolated from raw beef. J. Microbiol. Biotechnol., 2025, vol. 35: e2409028. doi: 10.4014/jmb.2409.09028
  55. Talagrand-Reboul E., Colston S.M., Graf J., Lamy B., Jumas-Bilak E. Comparative and evolutionary genomics of isolates provide insight into the pathoadaptation of Aeromonas. Genome Biol. Evol., 2020, vol. 12, no. 5, pp. 535–552. doi: 10.1093/gbe/evaa055
  56. Uechi K., Nishiyama N., Arakaki W., Nakano A., Uechi A., Nakamura T., Yamamoto K., Maeda S. An evaluation of the modified carbapenem inactivation method (mCIM) in conjunction with EDTA or sodium mercaptoacetate, for detecting metallo β-lactamase production for Aeromonas species harboring blaCphA. J. Infect. Chemother., 2025, vol. 31, no. 4: 102678. doi: 10.1016/j.jiac.2025.102678
  57. Van Bel N., van der Wielen P., Wullings B., van Rijn J., van der Mark E., Ketelaars H., Hijnen W. Aeromonas species from non-chlorinated distribution systems and their competitive planktonic growth in drinking water. Appl. Environ. Microbiol., 2021, vol. 87, no. 5: e02867-20. doi: 10.1128/AEM.02867-20
  58. Wang Y., Hou N., Rasooly R., Gu Y., He X. Prevalence and genetic analysis of chromosomal mcr-3/7 in Aeromonas from U.S. animal-derived samples. Front. Microbiol., 2021, vol. 12: 667406. doi: 10.3389/fmicb.2021.667406
  59. Wang X., Pan J., Chen L., Li R. Prevalence, virulence-related genes and antimicrobial resistance of Aeromonas spp. from loach Misgurnus anguillicaudatus with skin ulcer and healthy controls in Southern China. Aquaculture, 2022, vol. 552: 738040. doi: 10.1016/j.aquaculture.2022.738040
  60. Xiong C., Liu K., Wu Y., Ai Y., Yu Y., Mabrok M., Abu-Elala N., Li L., Xu H., Li Y., Ye H., Mei H., Wu R. Decreased pathogenicity of triple-mutant of Aeromonas hydrophila flgK, flgL, flgE suggests its potential as a live attenuated vaccine for Carassius auratus. Fish Shellfish Immunol., 2025, vol. 165: 110486. doi: 10.1016/j.fsi.2025.110486
  61. Xu T., Rasmussen-Ivey C.R., Moen F.S., Fernández-Bravo A., Lamy B., Beaz-Hidalgo R., Khan C.D., Escarpulli G.C., Yasin I.S.M., Figueras M.J., Azzam-Sayuti M., Karim M.M., Alam K.M.M., Le T.T.T., Phuong Thao N.H., Addo S., Duodu S., Ali S., Latif T., Mey S., Somony T., Liles M.R. A global survey of hypervirulent Aeromonas hydrophila (vAh) identified vAh strains in the lower Mekong River basin and diverse opportunistic pathogens from farmed fish and other environmental sources. Microbiol. Spectr., 2023, vol. 11, no. 2: e03705-22. doi: 10.1128/spectrum.03705-22
  62. Yonezu M., Imamoto T. A fatal case of necrotizing soft tissue infection caused by Aeromonas hydrophila starting in the thigh. Cureus, 2025, vol. 17, no. 2: e78446. doi: 10.7759/cureus.78446
  63. Zdanowicz M., Mudryk Z.J., Perliński P. Abundance and antibiotic resistance of Aeromonas isolated from the water of three carp ponds. Vet. Res. Commun., 2020, vol. 44, no. 1, pp. 9–18. doi: 10.1007/s11259-020-09768-x
  64. Zhang J., Qiao D., Wang H., Zhao X., Jiang X., Zhu L., Zhang J., Li L., Kong X., Pei C. Mixed infection in common carp (Cyprinus carpio) caused by Aeromonas veronii, Aeromonas hydrophila, Plesiomonas shigelloides, and Citrobacter freundii. Animals (Basel), 2025, vol. 15, no. 6: 805. doi: 10.3390/ani15060805

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download

Copyright (c) 2026 Logacheva S.M., Kataeva L.V., Stepanova K.B., Stepanova T.F.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: серия ПИ № ФС 77 - 64788 от 02.02.2016.